CN102482640A - 人胚胎干细胞的分化 - Google Patents
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Abstract
本发明提供促进多能干细胞分化为胰岛素生成细胞的方法。具体地讲,本发明提供移植到动物体内后产生能够生成胰岛素的细胞的方法。
Description
相关专利申请的交叉引用
本发明要求于2009年7月20日提交的系列号为61/226,936的专利申请的优先权。
技术领域
本发明提供促进多能干细胞分化为胰岛素生成细胞的方法。具体地讲,本发明提供移植到动物后产生能够生成胰岛素的细胞的方法。
背景技术
用于I型糖尿病的细胞替代疗法的进展以及可移植胰岛的缺乏已使得注意力集中在开发适于移植物移入的胰岛素生成细胞或β细胞的来源上。一种方法是从多能干细胞例如胚胎干细胞产生功能性β细胞。
在脊椎动物的胚胎发育中,多能干细胞可在称为原肠胚形成的过程中产生包括三个胚层(外胚层、中胚层和内胚层)的细胞群体。诸如甲状腺、胸腺、胰腺、肠和肝脏之类的组织将从内胚层,经由中间阶段发育而来。该过程中的中间阶段是形成定形内胚层。定形内胚层细胞可表达多种标志物,如HNF3β、GATA4、MIXL1、CXCR4和SOX17。
定形内胚层分化成胰腺内胚层导致形成胰腺。胰腺内胚层细胞表达胰-十二指肠同源盒基因Pdx1。在不存在Pdx1时,胰腺形成腹胰芽和背胰芽后不再发育。因而,Pdx1表达标志着胰腺器官发生中的一个关键步骤。除了其他细胞类型,成熟的胰腺还包括外分泌组织和内分泌组织。外分泌和内分泌组织来自胰腺内胚层的分化。
据报道,从小鼠的胚胎细胞衍生出了带有胰岛细胞特征的细胞。例如,Lumelsky等人(Science 292:1389,2001)报道了小鼠胚胎干细胞向类似于胰岛的胰岛素分泌结构的分化。Soria等人(Diabetes 49:157,2000)报道,小鼠胚胎干细胞衍生的胰岛素分泌细胞使链脲佐菌素诱导的糖尿病小鼠血糖恢复正常。
在一个例子中,Hori等人(PNAS 99:16105,2002)公开了用磷酸肌醇3-激酶的抑制剂(LY294002)处理小鼠胚胎干细胞产生了类似β细胞的细胞。
又如,Blyszczuk等人(PNAS 100:998,2003)报道了从组成型表达Pax4的小鼠胚胎干细胞产生产胰岛素的细胞。
Micallef等人报道,视黄酸可以调控胚胎干细胞定向形成PDX1阳性胰腺内胚层。在对应于胚胎的原肠胚形成末期的期间,加入胚胎干细胞分化第4天的培养物中时视黄酸在诱导Pdx1方面最有效(Diabetes 54:301,2005)。
Miyazaki等人报道过表达Pdx1的小鼠胚胎干细胞系。他们的结果显示,外源Pdx1表达在所得的分化细胞中明显增强了胰岛素、生长抑素、葡糖激酶、神经元素3、p48、Pax6和HNF6基因的表达(Diabetes53:1030,2004)。
Skoudy等人报道,激活素A(TGF-β超家族的成员)能上调小鼠胚胎干细胞中的胰腺外分泌基因(p48和淀粉酶)和内分泌基因(Pdx1、胰岛素和胰高血糖素)的表达。使用1nM激活素A时观察到了最大的效果。他们还观察到,胰岛素和Pdx1 mRNA的表达水平不受视黄酸的影响;然而,3nM FGF7处理导致了Pdx1的转录水平升高(Biochem.J.379:749,2004)。
Shiraki等人研究了能特异性增强胚胎干细胞分化成Pdx1阳性细胞的生长因子的作用。他们观察到,TGF-β2可再现地产生更高比例的Pdx1阳性细胞(Genes Cells.2005年6月;10(6):503-16)。
Gordon等人阐明了在不存在血清的情况下和在存在激活素连同Wnt信号转导抑制剂的情况下从小鼠胚胎干细胞诱导brachyury[阳性]/HNF3β[阳性]内胚层细胞(US 2006/0003446A1)。
Gordon等人(PNAS,第103卷,第16806页,2006年)声称:“Wnt和TGF-β/nodal/激活素信号转导同时为前原条的产生所必需”。
然而,胚胎干细胞发育的小鼠模型可能不会完全模拟高等哺乳动物(例如人)中的发育程序。
Thomson等人从人胚泡分离出了胚胎干细胞(Science 282:114,1998)。同时,Gearhart及其同事从胎儿生殖腺组织衍生出了人胚胎生殖(hEG)细胞系(Shamblott等人,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 95:13726,1998)。与可简单通过与白血病抑制因子(LIF)一起培养来防止分化的小鼠胚胎干细胞不一样,人胚胎干细胞必须维持在非常特殊的条件下(美国专利No.6,200,806;WO 99/20741;WO 01/51616)。
D’Amour等人描述了在高浓度激活素和低血清的存在下产生人胚胎干细胞衍生的定形内胚层的富集培养物(Nature Biotechnology2005)。将这些细胞移植到小鼠的肾囊下,导致分化成具有某些内胚层器官的特性的更成熟细胞。在加入FGF-10之后,人胚胎干细胞衍生的定形内胚层细胞可进一步分化成Pdx1阳性细胞(US2005/0266554A1)。
D’Amour等人(Nature Biotechnology-24,1392-1401(2006))声称:“我们已开发出一种将人胚胎干(hES)细胞转化成能够合成胰腺激素如胰岛素、胰高血糖素、生长抑素、胰多肽和生长素释放肽的内分泌细胞的分化方法。该方法通过引导细胞经过通向能表达内分泌激素的细胞的类似定形内胚层、肠管内胚层、胰腺内胚层和内分泌前体的各阶段,来模拟体内胰腺器官发生”。
又如,Fisk等人报道了用于从人胚胎干细胞产生胰岛细胞的系统(US2006/0040387A1)。在这种情况下,分化途径分成三个阶段。首先用丁酸钠和激活素A的组合使人胚胎干细胞向内胚层分化。然后将细胞与TGF-β拮抗剂(如成头蛋白(Noggin))结合EGF或β细胞素一起进行培养,以产生Pdx1阳性细胞。通过烟酰胺诱导终末分化。
在一个例子中,Benvenistry等人声称:“我们得出结论认为,Pdx1的过表达提高了胰腺富集基因的表达,胰岛素表达的诱导可能需要另外的仅存在于体内的信号”(Benvenistry等人,Stem Cells 2006;24:1923-1930)。
又如,Grapin-Botton等人声称:“Ngn3的早期活化几乎完全诱导胰高血糖素阳性细胞,同时耗竭了胰腺祖细胞库。从E11.5开始,PDX-1祖细胞具备了分化成胰岛素[阳性]和PP[阳性]细胞的能力”(JohanssonKA等人,Developmental Cell 12,457-465,2007年3月)。
NGN3在表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞中的表达可降低细胞进一步分化为胰岛素表达细胞的能力。以前的研究已表明,当经历进一步分化时,表达NGN3的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞更有可能产生胰高血糖素表达细胞,而不是胰岛素表达细胞。然而,NGN3表达对于形成胰腺内分泌细胞或胰腺内分泌前体细胞(可形成例如胰高血糖素表达细胞或胰岛素表达细胞的细胞)是必须的。因此,对NGN3的时间调控对于引导胰腺内分泌前体细胞向胰岛素表达细胞分化的最终命运是重要的。
因此,仍然非常需要开发用于建立能扩增以满足当前临床需要,同时又保持分化为胰岛素表达细胞的潜能的多能干细胞系的条件。本发明采取替代方法,通过产生表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群来提高使人胚胎干细胞向胰岛素表达细胞分化的效率,其中所述细胞群共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3。本发明的方法能维持最低水平的NGN3表达直至胰腺内胚层开始向胰腺内分泌前体细胞分化。
发明内容
在一个实施例中,本发明提供了表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群,该细胞群共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3。在一个实施例中,该细胞群移植到动物体内后能够产生C-肽。
在一个实施例中,本发明提供一种方法使多能干细胞群分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群,该细胞群共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3,所述方法包括以下步骤:
a.培养多能干细胞,
b.使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞,以及
c.通过用补充有FGF7的第一培养基处理表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞,然后将所述细胞在补充有FGF7、能够抑制BMP的因子、TGF-β受体激动剂、视黄酸和刺猬蛋白信号传导通路抑制剂的第二培养基中培养,使表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,这些细胞共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3。
附图说明
图1示出了在根据实例1所述方法处理过的细胞中,在第3阶段第4天时,激活素A对NKX6.1、NGN3、PDX1、PTF1α和ARX的表达的影响。收集重复样品用于实时PCR分析。该图表示各基因相对于对照组(浅灰色柱条)的诱导倍数。深灰色柱条表示用FGF7、环巴胺-KAAD、视黄酸、20ng/ml激活素A和成头蛋白处理的细胞。黑色柱条表示用FGF7、环巴胺-KAAD、视黄酸、50ng/ml激活素A和成头蛋白处理过的细胞。
图2示出了免疫荧光图像,显示了NKX6.1(分图a、c和e)和NGN3(分图b、d和f)在下列细胞中的表达:用FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺处理过的细胞(分图a和b)或用FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+20ng/ml激活素A处理过的细胞(分图c和d),以及用FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+Alk5抑制剂II处理过的细胞。
图3示出了免疫荧光图像,显示了PDX1(分图a和c)、CDX2(分图b和d)在下列细胞中的表达:用补充有1%B27+FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+20ng/ml激活素A的DMEM-高葡萄糖处理过的细胞(分图a和b),以及用补充有1%B27+FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+20ng/ml激活素A的DMEM/F12处理过的细胞(分图c和d)。
图4示出了在根据实例1所述方法处理过的细胞中,在第3阶段第4天时,激活素A、激活素B、TGFβ2、GDF11和GDF8对NKX6.1、NGN3和PDX1的表达的影响。收集重复样品用于实时PCR分析。该图表示各基因相对于用FGF7+环巴胺-KAAD+视黄酸+成头蛋白处理过的组的诱导倍数。
图5示出了在根据实例2所述方法处理过的细胞中,在第4阶段第3天时,成头蛋白和A1k5抑制剂II处理对NGN3、NEUROD、NKX2.2和PAX6的表达的影响(分图a),以及对NKX6.1、PDX1和PTF1α(分图b)的表达的影响。收集重复样品用于实时PCR分析。该图表示各基因相对于仅使用基础培养基(DMEM-高葡萄糖+1%B27)的组(浅灰色柱条)的诱导倍数。深灰色柱条表示用成头蛋白和Alk5抑制剂II处理过的细胞。
图6示出了用FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+激活素A处理四天,然后用成头蛋白和Alk5抑制剂II处理三天的细胞的免疫荧光图像,如实例2所述。分图a示出了NKX6.1、NGN3的表达以及NKX6.1和NGN3叠加的表达。分图b示出了PDX1、NGN3的表达以及PDX1和NGN3叠加的表达。
图7示出了在实例3所述处理方案的第4阶段第3天(浅灰色柱条)或第5阶段第3天(深灰色柱条)或第5阶段第7天(黑色柱条)时,细胞中NGN3、PAX4、PDX1、NKX6.1、NEUROD、胰岛素和胰高血糖素的表达。收集重复样品用于实时PCR分析。该图表示各基因相对于第4阶段第1天检测的表达的诱导倍数。
图8示出了免疫荧光图像,显示了在实例3所述处理方案的第5阶段第7天时,细胞中胰岛素、胰高血糖素和NKX6.1的表达。还示出了胰岛素和胰高血糖素表达的叠加,以及胰岛素和NKX6.1表达叠加。
图9示出了在肾囊下接受了本发明细胞的STZ诱导糖尿病SCID-beige小鼠中,血循环人C-肽水平(分图a)和非空腹血糖水平(分图b)。在标示的时间检测了C-肽水平和血糖水平。
具体实施方式
为了以不受限制的方式清晰说明本公开,将本发明的具体实施方式分成下列描述或阐明本发明某些特征、实施例或应用的小节。
定义
干细胞是由它们在单细胞水平上既自我更新又分化产生子代细胞的能力来定义的未分化细胞,包括自我更新祖细胞、非更新祖细胞和末端分化细胞。干细胞还由它们的以下能力来表征:从多个胚层(内胚层、中胚层和外胚层)体外分化成多种细胞谱系的功能细胞的能力,以及在移植后产生多个胚层的组织的能力和在注射到胚泡后基本上促成大多数的组织(如果不是所有的组织的话)的能力。
干细胞根据其发育潜能分为:(1)全能,指能够产生所有的胚胎和胚胎外细胞类型;(2)多能,指能够产生所有的胚胎细胞类型;(3)专能,指能够产生细胞谱系的亚群,但所有细胞谱系都只分布于特定组织、器官或生理系统内(例如造血干细胞(HSC)可产生的后代细胞包括:HSC(自我更新)、局限于血细胞的寡能祖细胞以及作为血液正常组分的所有细胞类型和成分(如血小板));(4)寡能,指能够产生比专能干细胞更有限的细胞谱系亚群;以及(5)单能,指能够产生单一细胞谱系(如生精干细胞)。
分化是未特化的(“未定向的”)或特化不足的细胞获得特化细胞(如神经细胞或肌肉细胞)的特征的过程。分化的细胞或诱导分化的细胞是已经在细胞谱系中占据更特化的(“定向的”)位置的细胞。术语“定向的”当应用到分化的过程时,指在分化途径中已经进行到这么一种程度的细胞:在正常环境下,它会继续分化成特定的细胞类型或细胞类型子集,且在正常环境下不能分化成另一细胞类型或回复到分化不足的细胞类型。去分化指细胞回复到细胞的谱系当中特化(或定向)不足的地位的过程。本文所用的“细胞的谱系”限定细胞的遗传关系,即它来自哪些细胞和它能产生什么细胞。细胞谱系将细胞定位于发育和分化的遗传计划内。谱系特异性标志物指与所关注谱系的细胞的表型明确相关的特征,可用来评估未定向细胞向所关注谱系的分化。
如本文所用,“表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞”或“第1阶段细胞”或“第1阶段”是指表达至少一种下列标志物的细胞:SOX17、GATA4、HNF3β、GSC、CER1、Nodal、FGF8、Brachyury、Mix样同源盒蛋白、FGF4CD48、脱中胚蛋白(eomesodermin,EOMES)、DKK4、FGF17、GATA6、CXCR4、C-Kit、CD99或OTX2。表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞包括原条前体细胞、原条细胞、中内胚层细胞和定形内胚层细胞。
本文所用的“表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞”指表达至少一种下列标志物的细胞:PDX1、HNF1β、PTF1α、HNF6、NKX6.1或HB9。表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞包括胰腺内胚层细胞、原肠管细胞和后前肠细胞。
如本文所用,“定形内胚层”指具有在原肠胚形成过程中从上胚层产生的细胞的特性并形成胃肠道及其衍生物的细胞。定形内胚层细胞表达下列标志物:HNF3β、GATA4、SOX17、Cerberus、OTX2、goosecoid、C-Kit、CD99和MIXL1。
如本文所用,“标志物”是在所关注细胞中差异表达的核酸或多肽分子。关于这一点,差异表达意指阳性标志物的水平增加,而阴性标志物的水平降低。标志物核酸或多肽的可检测水平,在所关注细胞中充分地高于或低于在其他细胞中,使得可使用多种本领域公知的方法中的任何一种将所关注细胞与其他细胞鉴别和区分开来。
如本文所用,“胰腺内分泌细胞”或“胰腺激素表达细胞”指能够表达下列激素中的至少一种的细胞:胰岛素、胰高血糖素、生长抑素和胰多肽。
多能干细胞的分离、扩增和培养
多能干细胞的表征
多能干细胞可以表达一种或多种阶段特异性胚胎抗原(SSEA)3和4,以及可使用称为Tra-1-60和Tra-1-81的抗体检测的标志物(Thomson等人,Science 282:1145,1998)。多能干细胞体外分化导致丧失SSEA-4、Tra 1-60和Tra1-81的表达(如果存在的话),并增加SSEA-1的表达。未分化的多能干细胞通常具有碱性磷酸酶活性,该酶可通过用4%多聚甲醛固定细胞,然后用Vector Red作为底物显影来检测,如生产商所描述(Vector Laboratories,Burlingame Calif)。未分化的多能干细胞通常也表达OCT4和TERT,这可通过RT-PCR检测。
增殖的多能干细胞的另一理想表型是分化成所有三个胚层即内胚层、中胚层和外胚层组织的细胞的潜能。多能干细胞的多能性可例如通过这样来证实:将细胞注射进重症联合免疫缺陷(SCID)小鼠中,用4%多聚甲醛固定所形成的畸胎瘤,然后对它们进行组织学检验以确定是否存在来自三个胚层的细胞类型。作为另外一种选择,可以通过产生胚状体并评估胚状体中三个胚层相关的标志物的存在来确定多能性。
可以使用标准G带技术并与已公布的相应灵长类物种的核型相比较来分析增殖的多能干细胞系的核型。希望获得具有“正常核型”的细胞,其意指细胞为整倍体,其中所有人染色体都存在并且没有明显的改变。
多能干细胞的来源
可使用的多能干细胞的类型包括从妊娠后形成的组织衍生而来的确立多能细胞系,包括在妊娠期间任何时间取得的胚前组织(例如胚泡)、胚胎组织或胎儿组织,所述时间通常是但不一定是在大约10-12周妊娠前。非限制性例子是确立的人胚胎干细胞系或人胚胎生殖细胞系,例如人胚胎干细胞系H1、H7和H9(WiCell)。也可设想的是,在此类细胞的初始建立或稳定期间使用本公开的组合物,在此情况下,源细胞将是直接取自源组织的原代多能细胞。另外合适的是取自已在不存在饲养细胞的情况下培养的多能干细胞群体的细胞。同样合适的是突变型人胚胎干细胞系,例如BG01v(BresaGen,Athens,GA)。
在一个实施例中,人胚胎干细胞根据Thomson等人(美国专利No.5,843,780;Science 282:1145,1998;Curr.Top.Dev.Biol.38:133 ff.,1998;Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.92:7844,1995)所述的方法进行制备。
多能干细胞的培养
在一个实施例中,通常在饲养细胞层上培养多能干细胞,饲养细胞可以多种方式支持多能干细胞。作为另一种选择,在培养系统中培养多能干细胞,所述培养系统基本上不含饲养细胞,但同样支持多能干细胞的增殖而不会进行实质分化。使用通过此前培养另一细胞类型而调理过的培养基来支持多能干细胞在无饲养细胞的培养物中生长而不分化。作为另一种选择,用化学成分确定的培养基来支持多能干细胞在无饲养细胞的培养物中生长而不分化。
例如,Reubinoff等人(Nature Biotechnology 18:399-404(2000))和Thompson等人(Science,1998年11月6日:第282卷,第5391期,第1145-1147页)公开了用小鼠胚胎成纤维细胞饲养细胞层来培养来自人胚泡的多能干细胞系。
Richards等人(Stem Cells 21:546-556,2003)评价了一组共11种不同的人成体、胎儿和新生儿饲养细胞层在支持人多能干细胞培养方面的能力。Richards等人声称:“在成人皮肤成纤维细胞饲养层上培养的人胚胎干细胞系保持了人胚胎干细胞形态并保持了多能性”。
US20020072117公开了可产生支持灵长类多能干细胞在无饲养细胞的培养物中生长的培养基的细胞系。所采用的细胞系是从胚胎组织获得或从胚胎干细胞分化而来的间质细胞系和成纤维细胞样细胞系。US20020072117还公开了所述细胞系作为原代饲养细胞层的用途。
又如,Wang等人(Stem Cells 23:1221-1227,2005)公开了使人多能干细胞在衍生自人胚胎干细胞的饲养细胞层上长期生长的方法。
又如,Stojkovic等人(Stem Cells 200523:306-314,2005)公开了衍生自人胚胎干细胞自发分化的饲养细胞体系。
在另一个例子中,Miyamoto等人(Stem Cells 22:433-440,2004)公开了得自人胎盘的饲养细胞来源。
Amit等人(Biol.Reprod 68:2150-2156,2003)公开了衍生自人包皮的饲养细胞层。
又如,Inzunza等人(Stem Cells 23:544-549,2005)公开了来自人出生后包皮成纤维细胞的饲养细胞层。
US6642048公开了可支持灵长类多能干(pPS)细胞在无饲养细胞的培养物中生长的培养基以及可用于产生这种培养基的细胞系。US6642048声称:“本发明包括从胚胎组织获得或从胚胎干细胞分化而来的间质细胞系和成纤维细胞样细胞系。在本公开中描述并阐明了用于衍生这种细胞系、处理培养基以及用该调理培养基培养干细胞的方法”。
又如,WO2005014799公开了用于哺乳动物细胞维持、增殖和分化的条件培养基。WO2005014799声称:“通过鼠细胞(特别是分化并永生化的转基因肝细胞,称为MMH(Met鼠肝细胞))的细胞分泌活性对根据本发明制备的培养基进行调理”。
又如,Xu等人(Stem Cells 22:972-980,2004)公开了一种从人胚胎干细胞衍生物获得的调理培养基,所述干细胞衍生物已经过遗传修饰而过表达人端粒酶逆转录酶。
又如,US20070010011公开了一种用于维持多能干细胞的化学成分确定的培养基。
一种备选的培养系统采用补充有能促进胚胎干细胞增殖的生长因子的无血清培养基。例如,Cheon等人(BioReprodDOI:10.1095/biolreprod.105.046870,2005年10月19日)公开了一种无饲养细胞的无血清培养系统,其中胚胎干细胞维持在补充有能引发胚胎干细胞自我更新的不同生长因子的未经调理的血清替代(SR)培养基中。
又如,Levenstein等人(Stem Cells 24:568-574,2006)公开了使用补充有bFGF的培养基,在不存在成纤维细胞或调理培养基的情况下长期培养人胚胎干细胞的方法。
又如,US20050148070公开了一种在无血清且无成纤维细胞饲养细胞的成分确定的培养基中培养人胚胎干细胞的方法,该方法包括:在含有白蛋白、氨基酸、维生素、矿物质、至少一种转铁蛋白或转铁蛋白替代品、至少一种胰岛素或胰岛素替代品的培养基中培养干细胞,该培养基基本上无哺乳动物胎儿血清且含有至少约100ng/ml能激活成纤维细胞生长因子信号转导受体的成纤维细胞生长因子,其中该生长因子的供给来源不是仅为成纤细胞饲养层,该培养基支持干细胞在无饲养细胞或调理培养基的情况下以未分化状态增殖。
又如,US20050233446公开了一种用于培养干细胞,包括未分化的灵长类原始干细胞的限定培养基。在溶液中,此培养基与培养中的干细胞相比基本上是等渗的。在给定的培养物中,特定的培养基包含基础培养基和各为一定量的bFGF、胰岛素和抗坏血酸,所述一定量的bFGF、胰岛素和抗坏血酸为支持原始干细胞进行实质上非分化性生长所必需的。
又如,US6800480声称:“在一个实施例中,提供了用于以基本上未分化状态培养灵长类来源的原始干细胞的细胞培养基,其包括低渗透压、低内毒素基础培养基,此培养基对于支持灵长类来源的原始干细胞的生长是有效的。该基础培养基混合了有效支持灵长类来源的原始干细胞生长的营养血清和选自饲养细胞和衍生自饲养细胞的胞外基质组分的基质。该培养基还包含非必需氨基酸、抗氧化剂和选自核苷和丙酮酸盐的第一生长因子”。
又如,US20050244962描述:“在一个方面,本发明提供了一种培养灵长类胚胎干细胞的方法。在基本上不含哺乳动物胎血清(优选也基本上不含任何动物血清)的培养物中,并在存在由不只是成纤维细胞饲养层的来源提供的成纤维细胞生长因子情况下培养干细胞。在优选的形式中,通过添加足量的成纤维细胞生长因子,使得之前为维持干细胞培养物所需的成纤维细胞饲养层变为非必需的”。
在另外的例子中,WO2005065354公开了一种基本上无饲养细胞和无血清的成分确定的等渗培养基,其包含:a.基础培养基;b.bFGF,其量足以支持实质上未分化的哺乳动物干细胞生长;c.胰岛素,其量足以支持实质上未分化的哺乳动物干细胞生长;和d.抗坏血酸,其量足以支持实质上未分化的哺乳动物干细胞生长。
又如,WO2005086845公开了一种维持未分化的干细胞的方法,所述方法包括使干细胞暴露于转化生长因子-β(TGF-β)蛋白家族的成员、成纤维细胞生长因子(FGF)蛋白家族的成员或烟酰胺(NIC),所述成员或烟酰胺的量足以维持细胞处于未分化状态达足以实现所需结果的一段时间。
可将多能干细胞接种至合适的培养基质上。在一个实施例中,合适的培养基质是胞外基质成分,例如衍自基底膜的成分,或者可形成黏着分子受体-配体偶联物的一部分的成分。在一个实施例中,合适的培养基质是MATRIGEL(Becton Dickenson)。MATRIGEL是得自Engelbreth-Holm Swarm肿瘤细胞的可溶性制剂,其在室温下胶凝而形成重构的基底膜。
其他的细胞外基质组分和组分混合物适合作为替代物。取决于所扩增的细胞类型,这可包括单独的层粘连蛋白、纤连蛋白、蛋白聚糖、巢蛋白、硫酸乙酰肝素等或者它们的各种组合。
可在存在可促进细胞存活、增殖和保持理想特性的培养基存在的情况下,以合适的分布将多能干细胞接种于所述基质上。所有这些特性可得益于对接种分布的认真考虑并可容易地由本领域技术人员确定。
合适的培养基可用如下组分制备,例如达尔伯克氏改良伊格尔培养基(DMEM),Gibco货号11965-092;敲除达尔伯克氏改良伊格尔培养基(KO DMEM),Gibco货号10829-018;Ham′s F12/50%DMEM基础培养基;200mM L-谷氨酰胺,Gibco货号15039-027;非必需氨基酸溶液,Gibco 11140-050;β-巯基乙醇,Sigma货号M7522;人重组碱性成纤维细胞生长因子(bFGF),Gibco货号13256-029。
由多能干细胞形成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞
在一个实施例中,本发明提供了由多能干细胞产生表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞的方法,该方法包括以下步骤:
a.培养多能干细胞,
b.使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞,以及
c.使所述表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞。
在本发明的一个方面,表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX-2和NGN3。
多能干细胞向表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞的分化
表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞的形成可通过在进行特定方案之前或之后检测该标志物的存在来确定。多能干细胞通常不表达这类标志物。因而,当细胞开始表达它们时即检测到多能细胞的分化。
可通过本领域的任何方法或通过本发明提出的任何方法,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据D’Amour等人,Nature Biotechnology 23,1534-1541(2005)中公开的方法,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据Shinozaki等人,Development 131,1651-1662(2004)中公开的方法,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据McLean等人,Stem Cells 25,29-38(2007)中公开的方法,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据D’Amour等人,Nature Biotechnology 24,1392-1401(2006)中公开的方法,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可通过将多能干细胞在含有激活素A的培养基中在不存在血清的情况下培养,然后将所述细胞与激活素A和血清一起培养,再然后将所述细胞与激活素A和另一浓度的血清一起培养,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在Nature Biotechnology 23,1534-1541(2005)中进行了公开。
例如,可通过将多能干细胞在含有激活素A的培养基中在不存在血清的情况下培养,然后将所述细胞与激活素A和另一浓度的血清一起培养,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在D’Amour等人,Nature Biotechnology,2005中进行了公开。
例如,可通过将多能干细胞在含有激活素A和Wnt配体的培养基中在不存在血清的情况下培养,然后移除Wnt配体并将所述细胞与激活素A和血清一起培养,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在Nature Biotechnology 24,1392-1401(2006)中进行了公开。
例如,可根据转让给LifeScan,Inc.的系列号为11/736,908的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞,使多能干细胞分化为表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据转让给LifeScan,Inc.的系列号为11/779,311的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞,使多能干细胞分化为表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据系列号为60/990,529的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据系列号为61/076,889的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据系列号为No.61/076,900的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据系列号为61/076,908的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如,可根据系列号为61/076,915的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞,使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞向表达胰腺内胚层谱
系特征性标志物的细胞的分化
在一个实施例中,通过在补充有FGF7的第一培养基中培养表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞,然后将所述细胞在补充有FGF7、能够抑制BMP的因子、TGFβ受体激动剂、视黄酸和刺猬蛋白信号传导通路抑制剂的第二培养基中培养,使表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,这些细胞共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3。
在一个实施例中,FGF7可以按约50pg/ml至约50μg/ml的浓度使用。在一个实施例中,FGF7按50ng/ml的浓度使用。
在一个实施例中,能够抑制BMP的因子为成头蛋白。成头蛋白可以按约500ng/ml至约500μg/ml的浓度使用。在一个实施例中,成头蛋白以100ng/ml的浓度使用。
在一个实施例中,TGFβ受体激动剂选自激活素A、激活素B、TGFβ-I、TGFβ-II、GDF-8和GDF-11。
激活素A可以按约2ng/ml至100ng/ml的浓度使用。在一个实施例中,激活素A按20ng/ml的浓度使用。在一个备选实施例中,激活素A按50ng/ml的浓度使用。
激活素B可以按约2ng/ml至100ng/ml的浓度使用。在一个实施例中,激活素B按20ng/ml的浓度使用。在一个替代实施例中,激活素B按50ng/ml的浓度使用。
TGFβ-I可以按约2ng/ml至100ng/ml的浓度使用。在一个实施例中,TGFβ-I按20ng/ml的浓度使用。在一个替代实施例中,TGFβ-I按50ng/ml的浓度使用。
TGFβ-II可以按约2ng/ml至100ng/ml的浓度使用。在一个实施例中,TGFβ-II以20ng/ml的浓度使用。在一个替代实施例中,TGFβ-II按50ng/ml的浓度使用。
GDF-8可以按约2ng/ml至100ng/ml的浓度使用。在一个实施例中,GDF-8按20ng/ml的浓度使用。在一个替代实施例中,GDF-8按50ng/ml的浓度使用。
GDF-11可以按约2ng/ml至100ng/ml的浓度使用。在一个实施例中,GDF-11按20ng/ml的浓度使用。在一个替代实施例中,GDF-11按50ng/ml的浓度使用。
视黄酸可以按约1nM至约1mM的浓度使用。在一个实施例中,视黄酸按1μM的浓度使用。
在一个实施例中,刺猬蛋白信号传导通路抑制剂为环巴胺-KAAD。环巴胺-KAAD可以按约0.025μM至约2.5μM的浓度使用。在一个实施例中,环巴胺-KAAD按0.25μM的浓度使用。
可通过将处理过的细胞群体暴露于可特异性识别由表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞表达的蛋白质标志物的试剂(如抗体)来确定分化效率。
用于评估蛋白质标志物和核酸标志物在培养的或分离的细胞中的表达的方法是本领域的标准方法。这些方法包括定量逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)、RNA印迹、原位杂交(参见例如“Current Protocolsin Molecular Biology”(Ausubel等人编辑,2001年增刊)),以及免疫测定如切片材料的免疫组织化学分析、蛋白质印迹,以及对于可在完整细胞中接触到的标志物,有流式细胞分析(FACS)(参见例如,Harlow和Lane,Using Antibodies:A Laboratory Manual,New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press(1998))。
多能干细胞的特征是本领域技术人员熟知的,并且其他特征有待继续辨别。多能干细胞标志物包括(例如)一种或多种如下物质的表达:ABCG2、cripto、FOXD3、CONNEXIN43、CONNEXIN45、OCT4、SOX2、Nanog、hTERT、UTF1、ZFP42、SSEA-3、SSEA-4、Tra 1-60、Tra 1-81。
在用本发明方法处理多能干细胞后,可通过使处理过的细胞群体暴露于特异性识别由表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞表达的蛋白质标志物(如CXCR4)来纯化分化的细胞。
适用于本发明的多能干细胞包括例如人胚胎干细胞系H9(NIH代码:WA09)、人胚胎干细胞系H1(NIH代码:WA01)、人胚胎干细胞系H7(NIH代码:WA07)和人胚胎干细胞系SA002(Cellartis,Sweden)。同样适用于本发明的是表达至少一种下列多能细胞特征性标志物的细胞:ABCG2、cripto、CD9、FOXD3、CONNEXIN43、CONNEXIN45、OCT4、SOX2、Nanog、hTERT、UTF1、ZFP42、SSEA-3、SSEA-4、Tra 1-60和Tra 1-81。
定形内胚层谱系特征性标志物选自SOX17、GATA4、HNF3β、GSC、CER1、NODAL、FGF8、Brachyury、Mix样同源盒蛋白、FGF4CD48、脱中胚蛋白(EOMES)、DKK4、FGF17、GATA6、CXCR4、C-Kit、CD99和OTX2。适用于本发明的是表达至少一种定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。在本发明的一个方面,表达定形内胚层系特征性标志物的细胞为原条前体细胞。在另一方面,表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞是中内胚层细胞。在另一方面,表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞是定形内胚层细胞。
胰腺内胚层谱系特征性标志物选自PDX1、HNF1β、PTF1α、HNF6、HB9和PROX1。适用于本发明的是表达至少一种胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞。在本发明的一个方面,表达胰腺内胚层系特征性标志物的细胞为胰腺内胚层细胞。
表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞的形成
在一个实施例中,还可以使由本发明方法产生的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞(共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3)进一步分化为表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
可通过本领域的任何方法或通过本发明提出的任何方法,使表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
例如,可通过将根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞在含有毒蜥外泌肽-4的培养基中进行培养,然后除去含有毒蜥外泌肽-4的培养基,并随后将所述细胞在含有毒蜥外泌肽1、IGF-1和HGF的培养基中进行培养,来使表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在D’Amour等人,Nature Biotechnology,2006中进行了公开。
例如,通过在含有DAPT(Sigma-Aldrich,MO)和毒蜥外泌肽4的培养基中培养表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,使根据本发明方法获得的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在D’Amour等人,Nature Biotechnology,2006中进行了公开。
例如,通在含有毒蜥外泌肽4的培养基中培养表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,使根据本发明方法获得的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在D’Amour等人,NatureBiotechnology,2006中进行了公开。
例如,根据转让给LifeScan,Inc.的系列号为11/736,908的美国专利中公开的方法,通过用抑制Notch信号传导通路的因子处理表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,使根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
例如,根据转让给LifeScan,Inc.的系列号为11/779,311的美国专利中公开的方法,通过用抑制Notch信号传导通路的因子处理表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,使根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
例如,根据转让给LifeScan,Inc.的系列号为60/953,178的美国专利中公开的方法,通过用抑制Notch信号传导通路的因子处理表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,使根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
例如,根据转让给LifeScan,Inc.的系列号为60/990,529的美国专利中公开的方法,通过用抑制Notch信号传导通路的因子处理表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,使根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
胰腺内分泌谱系特征性标志物选自NGN3、NEUROD、ISL1、PDX1、NKX6.1、PAX4、NGN3和PTF-1α。在一个实施例中,胰腺内分泌细胞能够表达以下激素中的至少一种:胰岛素、胰高血糖素、生长抑素和胰多肽。适用于本发明的是表达至少一种胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。在本发明的一个方面,表达胰内分泌系特征性标志物的细胞为胰内分泌细胞。胰内分泌细胞可为表达胰激素的细胞。作为另外一种选择,胰内分泌细胞可为分泌胰激素的细胞。
在本发明的一个方面,胰腺内分泌细胞是表达β细胞谱系特征性标志物的细胞。表达β细胞谱系特征性标志物的细胞可表达PDX1和至少一种下列转录因子:NGN3、NKX2.2、NKX6.1、NEUROD、ISL1、HNF3β、MAFA、PAX4和PAX6。在本发明的一个方面,表达β细胞谱系特征性标志物的细胞是β细胞。
疗法
在一个方面,本发明提供了一种用于治疗患有1型糖尿病,或有发展1型糖尿病风险的患者的方法。在一个实施例中,本方法涉及对多能干细胞进行培养,使多能干细胞体外分化成β-细胞谱系,以及将β-细胞谱系的细胞移植到患者体内。在一个替代实施例中,本方法涉及对多能干细胞进行培养,使多能干细胞体外分化成表达胰腺内胚层细胞谱系特征性标志物的细胞(共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3),以及将所述共表达PDX1、NKX6.1但不表达CDX2和NGN3的胰腺内胚层谱系的细胞移植到患者体内。
在另一个方面,本发明提供了一种用于治疗患有2型糖尿病,或有发展2型糖尿病风险的患者的方法。在一个实施例中,本方法涉及对多能干细胞进行培养,使多能干细胞体外分化成β-细胞谱系,以及将β-细胞谱系的细胞移植到患者体内。在一个替代实施例中,本方法涉及对多能干细胞进行培养,使多能干细胞体外分化成表达胰腺内胚层细胞谱系特征性标志物的细胞(共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3),以及将所述共表达PDX1、NKX6.1但不表达CDX2和NGN3的胰腺内胚层谱系的细胞移植到患者体内。
如果合适,可用有利于该植入细胞存活和功能的药剂或生物活性剂对患者进行进一步处理。这些试剂可包括(例如)胰岛素、TGF-β家族的成员(包括TGF-β1、2和3)、骨形态发生蛋白(BMP-2、BMP-3、BMP-4、BMP-5、BMP-6、BMP-7、BMP-11、BMP-12和BMP-13)、成纤维细胞生长因子-1和-2、血小板衍生生长因子-AA和-BB、血小板富集血浆、胰岛素生长因子(IGF-I、II)、生长分化因子(GDF-5、GDF-6、GDF-7、GDF-8、GDF-10、GDF-15)、血管内皮细胞衍生生长因子(VEGF)、多效蛋白(pleiotrophin)、内皮素等等。其他药物化合物可包括(例如)烟酰胺、高血糖素样肽-I(GLP-1)和高血糖素样肽-II、GLP-1和2模拟体、毒蜥外泌肽-4、视黄酸、甲状旁腺激素、MAPK抑制剂例如美国已公布的专利申请2004/0209901和美国已公布的专利申请2004/0132729中所公开的化合物。
可使多能干细胞在移植进接受者前分化成胰岛素生成细胞。在一个特定的实施例中,在移植进接受者之前,使多能干细胞完全分化成β-细胞。作为另一种选择,可将多能干细胞以未分化状态或部分分化的状态移植进接受者中。可在该接受者中发生进一步分化。
可将定形内胚层细胞或,作为另一选择,胰腺内胚层细胞,或作为另一种选择,β细胞作为分散细胞进行移植,或可使这些细胞形成簇,可将这些细胞簇输注进肝门静脉内。作为另一种选择,可将细胞设置在生物相容性的可降解聚合物型支持物中、多孔的非可降解性装置中或可进行封装以保护其免受宿主免疫应答的破坏。可将细胞移植进接受者中的合适位置内。植入位点包括(例如)肝脏、天然的胰腺、肾包膜下空间、网膜、腹膜、浆膜下空间、肠、胃或皮下袋。
为了增强植入细胞的进一步分化、存活率或活性,可在施用细胞之前、与之同时或之后施用额外的因子,例如生长因子、抗氧化剂或抗炎剂。在某些实施例中,利用生长因子使所施用的细胞在体内分化。这些因子可由内源性细胞分泌并原位暴露于所施用的细胞。可通过本领域已知的内源生长因子或外源施用的生长因子的任意组合来诱导植入细胞进行分化。
移植中所用的量取决于多种因素,包括患者的状况和对该疗法的响应,并且可由本领域技术人员确定。
在一个方面,本发明提供了一种用于治疗患有糖尿病,或有发展糖尿病风险的患者的方法。该方法涉及培养多能干细胞、使培养的细胞体外分化成β-细胞谱系,以及将该细胞掺入三维支持物中。在移植进患者前,可使细胞在该支持物上体外维持。作为另一种选择,可将容纳有该细胞的支持物直接移植进患者中而无需进行额外的体外培养。可任选将至少一种有利于植入细胞的存活和功能的药剂掺入该支持物中。
适用于本发明目的的支持材料包括可用于组织修复的组织模板、导管、屏障物和贮器。具体地讲,已经在体外和体内用于生物组织重建或再生,以及用于递送趋化剂来诱导组织生长的泡沫、海绵、凝胶、水凝胶、纺织物和非织造结构形式的合成材料和天然材料适用于实践本发明的方法。参见,例如在美国专利5,770,417、美国专利6,022,743、美国专利5,567,612、美国专利5,759,830、美国专利6,626,950、美国专利6,534,084、美国专利6,306,424、美国专利6,365,149、美国专利6,599,323、美国专利6,656,488、美国已公布的专利申请2004/0062753A1、美国专利4,557,264和美国专利6,333,029中所公开的材料。
为了形成掺有药剂的支承体,可在形成支承体前将药剂与聚合物溶液混合。作为另一种选择,可将药剂涂覆于制好的支持物上,优选在存在药物载体的情况下进行。药物可以液体、细分固体或任何其他合适的物理形式存在。作为另一种选择,可将赋形剂添加至支持物中以改变药剂的释放速率。在一个备选实施例中,将至少一种为抗炎化合物的药物化合物(例如在美国专利6,509,369中所公开的化合物)掺入支持物中。
可将至少一种为抗凋亡化合物的药物化合物(例如在美国专利6,793,945中所公开的化合物)掺入支持物中。
可将至少一种为纤维变性抑制剂的药物化合物(例如在美国专利6,331,298中所公开的化合物)掺入支持物中。
支持物还可掺有至少一种能够增强血管生成的药物化合物,例如美国已公布的专利申请2004/0220393和美国已公布的专利申请2004/0209901中所公开的化合物。
支持物还可掺有至少一种为免疫抑制化合物的药物化合物,例如美国已公布的专利申请2004/0171623中所公开的化合物。
支持物还可掺有至少一种为生长因子的药物化合物,例如TGF-β家族的成员(包括TGF-β1、TGF-β2和TGF-β3)、骨形态发生蛋白(BMP-2、BMP-3、BMP-4、BMP-5、BMP-6、BMP-7、BMP-11、BMP-12和BMP-13)、成纤维细胞生长因子-1和-2、血小板衍生生长因子-AA和-BB、血小板富集血浆、胰岛素生长因子(IGF-I、IGF-II)、生长分化因子(GDF-5、GDF-6、GDF-8、GDF-10、GDF-15)、血管内皮细胞衍生生长因子(VEGF)、多效蛋白、内皮素等等。其他药物化合物可包括(例如)烟酰胺、缺氧诱导因子1-α、高血糖素样肽-I(GLP-1)、GLP-1和GLP-2模拟体、毒蜥外泌肽-4、nodal、成头蛋白、NGF、视黄酸、甲状旁腺激素、腱生蛋白-C、弹性蛋白原、凝血酶衍生的肽、凯萨林菌素(cathelicidin)、防御素(defensin)、层粘连蛋白、含有粘附性细胞外基质蛋白例如纤粘蛋白和玻璃粘连蛋白的细胞结合结构域和肝素结合结构域的生物肽、MAPK抑制剂(例如在美国已公布的专利申请2004/0209901和美国已公布的专利申请2004/0132729中所公开的化合物)。
可通过将细胞简单地沉积在该支架上来实现将本发明细胞掺入支架中。细胞可通过简单扩散进入支架中(J.Pediatr.Surg.23(1Pt 2):3-9(1988))。已经发展了若干其他方法来增强细胞接种的效率。例如,已经将转瓶用于将软骨细胞接种于聚乙醇酸支架上(Biotechnol.Prog.14(2):193-202(1998))。用于细胞接种的另一种方法是利用离心,这种离心产生最小的应力给接种的细胞并增强接种效率。例如,Yang等人开发了一种细胞接种方法(J.Biomed.Mater.Res.55(3):379-86(2001)),称为离心细胞固定(Centrifugational Cell Immobilization,CCI)。
本发明通过(但不限于)以下实例进一步说明。
实例
实例1
人多能干细胞向表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞(共表
达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3)的分化
本实例说明,激活素A可与成头蛋白和视黄酸联合使用来促进NKX6.1表达的上调。简言之,将人胚胎干细胞系H1的细胞在MATRIGELTM(1∶30稀释)涂布的平皿和补充有2%BSA、100ng/ml激活素A、20ng/ml WNT-3a、8ng/ml bFGF的RPMI培养基上培养一天,然后用补充有2%BSA、100ng/ml激活素A、8ng/ml bFGF的RPMI培养基再处理两天(第1阶段),接下来
a.用DMEM/F12+2%BSA+50ng/ml FGF7处理三天(第2阶段),然后
b.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+50ng/ml FGF7+0.25mM环巴胺-KAAD+2mM视黄酸(RA)+100ng/ml成头蛋白+20ng/ml激活素A或50ng/ml激活素A处理四天(第3阶段)。
作为对照,用补充有1%B27、50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)和100ng/ml成头蛋白的高葡萄糖DMEM处理单独的细胞群。
在第3阶段的第4天对培养物进行取样,一式两份,然后用实时PCR对胰腺标志物的表达进行分析。
如图1所示出,在第3阶段第4天时,与从未接受激活素A的细胞获得的样品相比,NKX6.1表达有显著增加。由激活素A介导的NKX6.1的表达水平与激活素A的剂量成比例增加。在第3阶段的第4天也观察到了细胞中NGN3表达的下调。为了确定TGF-β通路是否涉及促进共表达PDX1和NKX-6.1的胰腺内胚层细胞的形成,下对细胞进行处理:
在MATRIGEL(按1∶30稀释)涂布的平板上培养人胚胎干细胞系H1的细胞,然后使用以下方案使其分化为胰腺内分泌前体细胞:
a.在补充有2%BSA(目录号:152401,MP Biomedical,Ohio)和100ng/ml激活素A(R&D Systems,MN)加20ng/ml WNT-3a(目录号:1324-WN-002,R&D Systems,MN)加8ng/ml bFGF(目录号:100-18B,PeproTech,NJ)的RPMI培养基(目录号:22400,Invitrogen,Ca)中培养一天,然后用补充有2%BSA和100ng/ml激活素A加8ng/mlbFGF的RPMI培养基再处理两天(第1阶段),接下来
b.用DMEM/F12(目录号:11330,Invitrogen,Ca)+2%BSA+50ng/ml FGF7处理三天(第2阶段),然后
c.处理1:用DMEM(高葡萄糖)+1%B27(Invitrogen,CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2mM视黄酸(RA)和100ng/ml成头蛋白处理四天(第3阶段),或
d.处理2:用DMEM(高葡萄糖)+1%B27(Invitrogen,CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、20ng/ml激活素A处理四天(第3阶段),或
e.处理3:用DMEM(高葡萄糖)+1%B27(Invitrogen,CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、1μM ALK5抑制剂II(Alexis Biochemical)处理四天(第3阶段)。
在第3阶段的第4天对培养物进行取样,一式两份,然后用实时PCR对胰腺标志物的表达进行分析。还平行固定培养物,以进行免疫荧光分析。
表1示出了用本实验的最低条件(处理1)进行归一化时NKX6.1、NGN3和PDX1在第3阶段第4天的相对表达水平。
表1
NGN3 | NKX6.1 | PDX1 | |
处理1 | 1 | 1 | 1 |
处理2 | 0.02 | 5.97 | 1.13 |
处理3 | 5.64 | 0.02 | 0.65 |
处理1(FGF7、视黄酸和成头蛋白)诱导了NKX6.1和NGN3的表达。参见图2中的分图a和b。然而,添加激活素A(处理2)阻断了NGN3的表达,并显著增加了NKX6.1表达细胞的数量。参见图2中的分图c和d。这些数据表明,在形成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群期间,激活TGFβ受体通路将会得到表达胰腺内胚层谱系特征性标志物但不表达NGN3的细胞群。
通过用TGFβ受体抑制剂Alk5抑制剂II来温育细胞证实了这一假设(参见处理3)。将细胞在添加了1%B27(Invitrogen,CA)、50ng/mlFGF7、0.25mM环巴胺-KAAD、2mM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、1mM ALK5抑制剂II的DMEM(高葡萄糖)中进行处理导致了NKX6.1表达水平降低。所观察到的表达水平低于在接受处理1的细胞中观察到的表达水平。参见表1和图2的分图e。另一方面,NGN3表达细胞的数量显著增加。参见表1和图2的分图f。观察到对PDX1表达无显著影响。这些结果表明,成头蛋白、视黄酸和激活素A的组合可协同作用来确定NKN6.1和PDX1表达阳性,而NGN3表达阴性的胰腺前体细胞群。
如图3的分图a和b所示,用DMEM(处理2-DMEM(高葡萄糖)+1%B27(Invitrogen,CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、20ng/ml激活素A)所得到的大部分PDX1表达细胞在第3阶段第4天不表达CDX2。这与通过使用补充有1%B27(Invitrogen,CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、20ng/ml激活素A的DMEM/F12而产生的PDX1表达细胞形成对照,其中大部分的PDX1表达细胞也表达CDX2。参见图3中的分图c和d。
对多种TGFβ受体激动剂进行了检测。在处理2中,用GDF-8、GDF-11、激活素B或TGFβ2替代激活素A都会产生类似的结果:用GDF-8、GDF-11、激活素B或TGFβ2处理四天会导致NKX6.1表达增加和NGN3下调。参见图4的分图a和c。未观察到对PDX1表达的显著影响。参见图4的分图b。
实例2
表达胰腺内胚层谱系特征性标志物(共表达PDX1、NKX6.1,但
不表达CDX2和NGN3)的细胞向胰腺内分泌前体细胞的分化
以前的研究表明,当经历进一步分化时,表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞更有可能产生胰高血糖素表达细胞,而不是胰岛素表达细胞。这可能部分是由于NGN3在胰腺内胚层细胞中的表达。本发明的方法可产生不表达NGN3并因此将更可能分化成胰岛素表达细胞的胰腺内胚层细胞群。然而,NGN3表达对于形成胰腺内分泌细胞或胰腺内分泌前体细胞(可形成例如胰高血糖素表达细胞或胰岛素表达细胞的细胞)是必须的。因此,对NGN3的时间调控对于引导胰腺内分泌前体细胞的最终命运是重要的。
本发明假定NGN3表达应维持在最低水平直至胰腺内胚层开始向胰腺内分泌前体细胞分化。
简言之,将人胚胎干细胞系H1的细胞在含有RPMI培养基+2%BSA+100ng/ml激活素A+20ng/ml WNT-3a+8ng/ml bFGF的MATRIGELTM涂布的平皿(1∶30稀释)上培养一天,然后用RPMI培养基+2%BSA+100ng/ml激活素A+8ng/ml bFGF再处理两天(第1阶段),然后
a.用DMEM/F12+2%BSA+50ng/ml FGF7处理三天(第2阶段),然后
b.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+50ng/ml FGF7+0.25μM环巴胺-KAAD+2μM视黄酸(RA)+100ng/ml成头蛋白+20ng/ml激活素A处理四天(第3阶段),然后
c.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+100ng/ml成头蛋白+1μMALK5抑制剂II处理三天(第4阶段),或
d.只用DMEM-高葡萄糖+1%B27处理三天(第4阶段)。
上述分化方案设计用于测试表达胰腺内胚层谱系特征性标志物(共表达PDX1和NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3)的细胞进一步分化为胰腺内分泌前体细胞的能力。胰腺内分泌前体细胞表达NGN3。
在基础培养基(DMEM-高葡萄糖+1%B27)中简单培养表达胰腺内胚层谱系特征性标志物(共表达PDX1和NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3)的细胞不会导致NGN3表达的诱导。参见图5分图a的浅灰色柱条。相似地,未观察到NEUROD、NKX2.2和PAX6的表达。
与此相反,在存在Alk5抑制剂II的情况下温育的细胞中观察到NGN3表达的显著增加。参见图5分图a的深灰色柱条。还观察到NEUROD、NKX2.2、PAX4和PAX6表达的上调,以及PTF1α表达的增加。参见图5中的分图a和b。Alk5抑制剂II的存在似乎不会影响PDX1或NKX6.1的表达。参见图5中的分图b。
在存在Alk5抑制剂II的情况下PCR检测到的NGN3表达增加也反映在NGN3蛋白存在阳性的细胞的数量增加,如免疫细胞化学所检测到的。参见图6。对图像的分析揭示,大部分NGN3表达细胞也共表达PDX1,但不表达NKX6.1。此外,大部分NKX6.1细胞共表达PDX1。在该阶段,如胰岛素和胰高血糖素的示例性表达情况所证实的,内分泌细胞表达水平最低。我们的结果表明,激活TGF-β通路将有利于共表达PDX1和NKX6.1的细胞群的形成,并且对TGF-β通路的后续抑制将进一步诱导内胚层分化为内分泌前体细胞。
实例3
表达胰腺内胚层谱系特征性标志物(共表达PDX1、NKX6.1,但
不表达CDX2和NGN3)的细胞向胰腺内分泌细胞的分化
本实例设计用于测试表达腺内胚层谱系特征性标志物(共表达PDX1和NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3)的细胞从胰腺内分泌前体细胞进一步分化为胰腺内分泌细胞的能力。
简言之,将人胚胎干细胞系H1的细胞在含有RPMI培养基+2%BSA+100ng/ml激活素A+20ng/ml WNT-3a+8ng/ml bFGF的MATRIGELTM涂布的平皿(1∶30稀释)上培养一天,然后用RPMI培养基+2%BSA+100ng/ml激活素A+8ng/ml bFGF再处理两天(第1阶段),然后
a.用DMEM/F12+2%BSA+50ng/ml FGF7处理三天(第2阶段),然后
b.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+50ng/ml FGF7+0.25μM环巴胺-KAAD+2μM视黄酸(RA)+100ng/ml成头蛋白+20ng/ml激活素A处理四天(第3阶段),或
c.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+50ng/ml FGF7+0.25μM环巴胺-KAAD+2μM视黄酸(RA)+100ng/ml成头蛋白+20ng/ml激活素A处理四天(第3阶段),然后
d.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+100ng/ml成头蛋白+1μMALK5抑制剂II处理三天(第4阶段)
e.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+100ng/ml成头蛋白+1μMALK5抑制剂II+β细胞素20ng/ml处理五至七天(第5阶段)。
NGN3和PAX4的表达从它们在第4阶段第3天的最大水平下降达到第5阶段第7天的更低表达水平。在这段时间内,内分泌标志物,例如胰岛素和胰高血糖素的表达增加。参见图7。这些数据表明,本发明的细胞能够从内分泌前体细胞形成胰腺内分泌细胞。
观察到只表达胰岛素或只表达胰高血糖素,或同时表达胰岛素和胰高血糖素的细胞。参见图8和表2。通过在第5阶段第7天时对培养物进行FACS分析(表2),大约60%的分化胰腺内胚层前体细胞(共表达PDX1和NKX6.1)表达泛内分泌标志物(pan-endocrine marker)突触素。单一胰岛素表达细胞的百分比为10.4%,单一胰高血糖素表达细胞的百分比为5.1%。此外,20%为胰岛素和胰高血糖素共表达细胞。在表达胰岛素而不表达其他胰腺激素的细胞中,60%共表达NKX6.1(成熟β细胞的标志物)。这些数据表明,通过本发明的方法形成了更成熟的胰岛素表达细胞。
表2
胰岛素 | |
胰岛素+ | 10.4% |
胰高血糖素+ | 5.1% |
胰岛素+/胰高血糖素+ | 20% |
突触素+ | 60% |
NKX6.1+ | 52% |
NKX6.1+/胰岛素+ | 6% |
实例4
在STZ诱导的糖尿病重症联合免疫缺陷(SCID)-beige(Bg)小鼠
体内移植本发明的细胞
将人胚胎干细胞系H1的细胞在含有RPMI培养基+0.2%FBS+100ng/ml激活素A+20ng/ml WNT-3a的MATRIGEL涂布的平皿(1∶30稀释)上培养一天,然后用RPMI培养基+0.5%FBS+100ng/ml激活素A再处理两天(第1阶段),接下来
a.用DMEM/F12+2%FBS+50ng/ml FGF7处理三天(第2阶段),然后
b.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+0.25mM环巴胺-KAAD+2μM视黄酸(RA)+100ng/ml成头蛋白+50ng/ml FGF7+20ng/ml激活素A处理四天(第3阶段),然后
c.用DMEM-高葡萄糖+1%B27+100ng/ml成头蛋白+1μMALK5抑制剂II处理四天(第4阶段)。
五至六周龄雄性scid-beige小鼠(C.B-Igh-1b/GbmsTac-Prkdcscid-LystbgN7)从Taconic Farms购得。将小鼠圈养在微隔离笼(microisolator cage)中,自由获得无菌食物和水。在手术准备中,小鼠通过耳部加标签来辨别,称量其体重,并使用手持式血糖仪(One Touch,LifeScan)来测定其血糖。
在移植前两周,对小鼠进行称重,并且连续五天每天给予80mg/kg溶于pH 4.5的乙酸盐缓冲液的链脲佐菌素(Sigma),以诱导糖尿病。监测血糖,只使用血糖>300mg/dL的小鼠作为移植接受者。
用异氟烷和氧气的混合物麻醉小鼠,用小型动物剪毛剪给手术部位剃毛。在手术前经小鼠皮下给予0.1mg.kg Buprenex。使用70%异丙醇和10%聚维酮-碘进行连续清洗,以准备好手术部位。
使用1mg/ml分散酶对第4阶段末的细胞短暂处理5分钟,然后利用1ml玻璃吸管以机械方式刮取这些细胞,随后将它们转移到非贴壁板上培养过夜。在小鼠的手术前准备期间,将这些细胞在1.5mL离心管中离心,移除大部分上清液,留下的量刚好足以收集细胞沉淀物。将细胞收集进Rainin Pos-D正位移移液器中,并倒置该移液器以让细胞通过重力沉降。弃去过量的培养基,留下用于移植的浓集细胞制剂。
为了移植,将24G×3/4″静脉留置管用于穿透肾囊,移除针头。然后在肾囊下推进导管至肾脏的远极。将Pos-D移液枪头牢固置于导管的插孔中,将5百万个细胞从移液器通过肾囊下的导管分配,并递送至肾脏的远极。通过低温烧灼而封闭肾囊,使肾回复至其初始解剖位置。平行地,用Post-D移液枪头将含有5百万个细胞的细胞聚集体加载至50μl装置中。该50μl装置购自TheraCyte,Inc(Irvine,CA)。加入之后,用A型医用聚硅氧烷粘合剂(Dow Corning,目录号129109)对装置进行密封,然后皮下植入SICD/Bg小鼠(第3和4号动物)。通过用5-0vicryl缝线连续缝合来闭合肌肉,并用缝合夹闭合皮肤。在手术后给小鼠皮下给予1.0mg.kg Metacam。使小鼠脱离麻醉并让其完全恢复。
在移植之后,每周称重小鼠一次,每周测量血糖两次。在移植后的多个时间段,从眼眶后窦抽取血液到装有少量肝素的离心管中。离心血液,将血浆置于第二离心管中,在干冰上冷冻,然后在-80℃下保存直至进行人c肽测定。使用Mercodia/ALPCO Diagnotics超敏C肽ELISA(目录号80-CPTHU-E01,Alpco Diagnostics,NH)根据制造商的说明测定人C肽水平。
人C-肽最早在移植后4周的肾囊组的动物血清中检测到,并且其水平随着时间推移而增加(图9的分图a)。在两个月结束时,我们能够检测到显著量的血循环人C-肽,达1.1±0.5ng/ml(图9的分图a)。在移植后近两个月,它们的非空腹血糖水平始终高于400ng/dl。在本研究中,不需要施用胰岛素。移植物来源的胰岛素的血清水平逐渐上升(大于1ng/ml)使得高血糖症逐步减轻。在三个月时,我们在90%的STZ诱导的糖尿病动物中都能够检测到显著量的血循环人C-肽。平均的血循环人C-肽为2±0.96ng/ml(n=8)(图9的分图a)。90%移植有hES细胞衍生的内分泌前体细胞的糖尿病小鼠的血糖水平低于200mg/dl,并且该水平保持不变。在我们通过手术移除移植物后,血糖水平在移植物移除后不久便上升到高血糖水平,这表明移植的人细胞独自负责维持STZ处理小鼠的血糖量正常(图9的分图b)。
本实例说明,PDX1和NKX6.1共表达的细胞群和衍生自PDX-1和NKX6.1共表达细胞群的内分泌祖细胞群,具有在体外进一步分化为胰岛素分泌细胞的潜能。
在整篇文档中引用的出版物据此全文以引用方式并入。尽管上文已结合实例和优选实施例描述了本发明的各个方面,但应当理解本发明的范围不受上述具体实施方式的限定,而受以下在专利法原则下恰当理解的权利要求书的限定。
Claims (1)
1.一种使多能干细胞群分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群的方法,所述表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群共表达PDX-1、NKX-6.1,但不表达CDX-2和NGN-3,所述方法包括下列步骤:
a.培养所述多能干细胞,
b.使所述多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞,以及
c.通过用补充有FGF7的第一培养基处理表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞,然后将所述细胞在补充有FGF7、能够抑制BMP的因子、TGF-β受体激动剂、视黄酸和刺猬蛋白信号传导通路抑制剂的第二培养基中培养,使所述表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞,所述表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞共表达PDX1、NKX6.1,但不表达CDX2和NGN3。
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AU (1) | AU2010276440B2 (zh) |
BR (1) | BR112012001557A2 (zh) |
CA (1) | CA2768644A1 (zh) |
ES (1) | ES2693088T3 (zh) |
GB (1) | GB2485112B (zh) |
HK (1) | HK1170262A1 (zh) |
MX (1) | MX340952B (zh) |
PL (1) | PL2456858T3 (zh) |
RU (1) | RU2540021C2 (zh) |
SG (1) | SG177483A1 (zh) |
WO (1) | WO2011011302A2 (zh) |
ZA (1) | ZA201201221B (zh) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104334719A (zh) * | 2012-06-08 | 2015-02-04 | 詹森生物科技公司 | 人胚胎干细胞向胰腺内分泌细胞的分化 |
CN108220224A (zh) * | 2011-06-21 | 2018-06-29 | 诺沃—诺迪斯克有限公司 | 自多潜能干细胞有效诱导定形内胚层 |
Families Citing this family (27)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DK2993226T3 (da) * | 2008-06-03 | 2021-02-22 | Viacyte Inc | Vækstfaktorer til fremstilling af en definitiv endoderm |
US20100272695A1 (en) * | 2009-04-22 | 2010-10-28 | Alan Agulnick | Cell compositions derived from dedifferentiated reprogrammed cells |
JP6013196B2 (ja) | 2010-03-01 | 2016-10-25 | ヤンセン バイオテツク,インコーポレーテツド | 多能性幹細胞から誘導した細胞を精製するための方法 |
EP2625272B1 (en) | 2010-10-08 | 2015-09-16 | Mina Therapeutics Limited | Methods of inducing insulin production |
KR102203056B1 (ko) | 2011-12-22 | 2021-01-14 | 얀센 바이오테크 인코포레이티드 | 인간 배아 줄기 세포의 단일 인슐린 호르몬 양성 세포로의 분화 |
CN104903440B (zh) | 2012-09-03 | 2018-04-06 | 诺和诺德股份有限公司 | 使用小分子从多能干细胞产生胰内胚层 |
RU2658488C2 (ru) | 2012-12-31 | 2018-06-21 | Янссен Байотек, Инк. | Способ получения клеток, экспрессирующих маркеры, характерные для панкреатических эндокринных клеток |
EP4039798A1 (en) | 2012-12-31 | 2022-08-10 | Janssen Biotech, Inc. | Suspension and clustering of human pluripotent cells |
US8859286B2 (en) * | 2013-03-14 | 2014-10-14 | Viacyte, Inc. | In vitro differentiation of pluripotent stem cells to pancreatic endoderm cells (PEC) and endocrine cells |
KR102580225B1 (ko) | 2013-06-11 | 2023-09-20 | 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 | SC-β 세포 및 조성물 그리고 그 생성 방법 |
CA2930973A1 (en) | 2013-11-22 | 2015-05-28 | Pal SAERTROM | C/ebp alpha short activating rna compositions and methods of use |
US10443042B2 (en) | 2014-12-18 | 2019-10-15 | President And Fellows Of Harvard College | Serum-free in vitro directed differentiation protocol for generating stem cell-derived beta cells and uses thereof |
US10190096B2 (en) | 2014-12-18 | 2019-01-29 | President And Fellows Of Harvard College | Methods for generating stem cell-derived β cells and uses thereof |
CN107614678B (zh) | 2014-12-18 | 2021-04-30 | 哈佛学院校长同事会 | 干细胞来源的β细胞的产生方法及其使用方法 |
US10767164B2 (en) | 2017-03-30 | 2020-09-08 | The Research Foundation For The State University Of New York | Microenvironments for self-assembly of islet organoids from stem cells differentiation |
US10391156B2 (en) | 2017-07-12 | 2019-08-27 | Viacyte, Inc. | University donor cells and related methods |
EP3710021A4 (en) | 2017-11-15 | 2021-08-11 | Semma Therapeutics, Inc. | COMPOSITIONS FOR THE MANUFACTURE OF ISLAND CELLS AND METHODS OF USE |
CA3108275A1 (en) | 2018-08-10 | 2020-02-13 | Vertex Pharmaceuticals Incorporated | Stem cell derived islet differentiation |
US10724052B2 (en) | 2018-09-07 | 2020-07-28 | Crispr Therapeutics Ag | Universal donor cells |
EP3856205A4 (en) * | 2018-09-25 | 2022-06-15 | The Regents of the University of California | PRODUCTION AND ACCUMULATION OF PANCREATIC ENDOCRIN PROGENIOR CELLS |
CN114206407A (zh) | 2019-05-31 | 2022-03-18 | W.L.戈尔及同仁股份有限公司 | 生物相容性膜复合材料 |
JP2022534545A (ja) | 2019-05-31 | 2022-08-01 | ダブリュ.エル.ゴア アンド アソシエイツ,インコーポレイティド | 生体適合性メンブレン複合体 |
AU2020282355B2 (en) | 2019-05-31 | 2023-11-02 | Viacyte, Inc. | A biocompatible membrane composite |
WO2020243668A1 (en) | 2019-05-31 | 2020-12-03 | W. L. Gore & Associates, Inc. | Cell encapsulation devices with controlled oxygen diffusion distances |
CA3150233A1 (en) | 2019-09-05 | 2021-03-11 | Alireza Rezania | UNIVERSAL DONOR CELLS |
CN114375300A (zh) | 2019-09-05 | 2022-04-19 | 克里斯珀医疗股份公司 | 通用供体细胞 |
AU2021414617A1 (en) | 2020-12-31 | 2023-08-10 | Crispr Therapeutics Ag | Universal donor cells |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20060281174A1 (en) * | 2004-03-09 | 2006-12-14 | Gang Xu | Methods for generating insulin-producing cells |
WO2007103282A2 (en) * | 2006-03-02 | 2007-09-13 | Cythera, Inc. | Endocrine precursor cells, pancreatic hormone-expressing cells and methods of production |
WO2009012428A2 (en) * | 2007-07-18 | 2009-01-22 | Lifescan, Inc. | Differentiation of human embryonic stem cells |
WO2009070592A2 (en) * | 2007-11-27 | 2009-06-04 | Lifescan, Inc. | Differentiation of human embryonic stem cells |
Family Cites Families (175)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3209652A (en) * | 1961-03-30 | 1965-10-05 | Burgsmueller Karl | Thread whirling method |
AT326803B (de) * | 1968-08-26 | 1975-12-29 | Binder Fa G | Maschenware sowie verfahren zur herstellung derselben |
US3935067A (en) * | 1974-11-22 | 1976-01-27 | Wyo-Ben Products, Inc. | Inorganic support for culture media |
US4499802A (en) * | 1982-09-29 | 1985-02-19 | Container Graphics Corporation | Rotary cutting die with scrap ejection |
US4537773A (en) * | 1983-12-05 | 1985-08-27 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | α-Aminoboronic acid derivatives |
US4557264A (en) * | 1984-04-09 | 1985-12-10 | Ethicon Inc. | Surgical filament from polypropylene blended with polyethylene |
US5215893A (en) * | 1985-10-03 | 1993-06-01 | Genentech, Inc. | Nucleic acid encoding the ba chain prodomains of inhibin and method for synthesizing polypeptides using such nucleic acid |
US5089396A (en) * | 1985-10-03 | 1992-02-18 | Genentech, Inc. | Nucleic acid encoding β chain prodomains of inhibin and method for synthesizing polypeptides using such nucleic acid |
US4737578A (en) * | 1986-02-10 | 1988-04-12 | The Salk Institute For Biological Studies | Human inhibin |
US5863531A (en) | 1986-04-18 | 1999-01-26 | Advanced Tissue Sciences, Inc. | In vitro preparation of tubular tissue structures by stromal cell culture on a three-dimensional framework |
CA1340581C (en) | 1986-11-20 | 1999-06-08 | Joseph P. Vacanti | Chimeric neomorphogenesis of organs by controlled cellular implantation using artificial matrices |
US5759830A (en) * | 1986-11-20 | 1998-06-02 | Massachusetts Institute Of Technology | Three-dimensional fibrous scaffold containing attached cells for producing vascularized tissue in vivo |
US5567612A (en) | 1986-11-20 | 1996-10-22 | Massachusetts Institute Of Technology | Genitourinary cell-matrix structure for implantation into a human and a method of making |
EP0363125A3 (en) | 1988-10-03 | 1990-08-16 | Hana Biologics Inc. | Proliferated pancreatic endocrine cell product and process |
US5837539A (en) * | 1990-11-16 | 1998-11-17 | Osiris Therapeutics, Inc. | Monoclonal antibodies for human mesenchymal stem cells |
US5449383A (en) * | 1992-03-18 | 1995-09-12 | Chatelier; Ronald C. | Cell growth substrates |
GB9206861D0 (en) * | 1992-03-28 | 1992-05-13 | Univ Manchester | Wound healing and treatment of fibrotic disorders |
CA2114282A1 (en) * | 1993-01-28 | 1994-07-29 | Lothar Schilder | Multi-layered implant |
JP3525221B2 (ja) | 1993-02-17 | 2004-05-10 | 味の素株式会社 | 免疫抑制剤 |
US5523226A (en) * | 1993-05-14 | 1996-06-04 | Biotechnology Research And Development Corp. | Transgenic swine compositions and methods |
GB9310557D0 (en) * | 1993-05-21 | 1993-07-07 | Smithkline Beecham Plc | Novel process and apparatus |
TW257671B (zh) * | 1993-11-19 | 1995-09-21 | Ciba Geigy | |
US6001647A (en) * | 1994-04-28 | 1999-12-14 | Ixion Biotechnology, Inc. | In vitro growth of functional islets of Langerhans and in vivo uses thereof |
US5834308A (en) * | 1994-04-28 | 1998-11-10 | University Of Florida Research Foundation, Inc. | In vitro growth of functional islets of Langerhans |
US6703017B1 (en) * | 1994-04-28 | 2004-03-09 | Ixion Biotechnology, Inc. | Reversal of insulin-dependent diabetes by islet-producing stem cells, islet progenitor cells and islet-like structures |
US6083903A (en) * | 1994-10-28 | 2000-07-04 | Leukosite, Inc. | Boronic ester and acid compounds, synthesis and uses |
KR100252743B1 (ko) | 1994-12-29 | 2000-09-01 | 나가야마 오사무 | Il-6 안타고니스트를 함유하는 항종양제의 작용증강제 |
US5843780A (en) * | 1995-01-20 | 1998-12-01 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Primate embryonic stem cells |
US5718922A (en) * | 1995-05-31 | 1998-02-17 | Schepens Eye Research Institute, Inc. | Intravitreal microsphere drug delivery and method of preparation |
US5908782A (en) * | 1995-06-05 | 1999-06-01 | Osiris Therapeutics, Inc. | Chemically defined medium for human mesenchymal stem cells |
EP1028954B1 (en) | 1997-04-24 | 2003-07-02 | Ortho-McNeil Pharmaceutical, Inc. | Substituted imidazoles useful in the treatment of inflammatory diseases |
AU8476698A (en) * | 1997-07-03 | 1999-01-25 | Osiris Therapeutics, Inc. | Human mesenchymal stem cells from peripheral blood |
AU9393398A (en) * | 1997-09-16 | 1999-04-05 | Egea Biosciences, Inc. | Method for the complete chemical synthesis and assembly of genes and genomes |
US6670127B2 (en) * | 1997-09-16 | 2003-12-30 | Egea Biosciences, Inc. | Method for assembly of a polynucleotide encoding a target polypeptide |
CA2307807C (en) | 1997-10-23 | 2008-09-02 | Andrea G. Bodnar | Methods and materials for the growth of primate-derived primordial stem cells in feeder-free culture |
ZA9811898B (en) * | 1997-12-29 | 2000-06-28 | Ortho Mcneil Pharm Inc | Anti-Inflammatory Compounds. |
AU755888B2 (en) * | 1998-03-18 | 2003-01-02 | Mesoblast International Sarl | Mesenchymal stem cells for prevention and treatment of immune responses in transplantation |
MY132496A (en) | 1998-05-11 | 2007-10-31 | Vertex Pharma | Inhibitors of p38 |
US7410798B2 (en) | 2001-01-10 | 2008-08-12 | Geron Corporation | Culture system for rapid expansion of human embryonic stem cells |
US6667176B1 (en) | 2000-01-11 | 2003-12-23 | Geron Corporation | cDNA libraries reflecting gene expression during growth and differentiation of human pluripotent stem cells |
US6413556B1 (en) | 1999-01-08 | 2002-07-02 | Sky High, Llc | Aqueous anti-apoptotic compositions |
AU2515600A (en) * | 1999-01-21 | 2000-08-07 | Vitro Diagnostics, Inc. | Immortalized cell lines and methods of making the same |
US6815203B1 (en) * | 1999-06-23 | 2004-11-09 | Joslin Diabetes Center, Inc. | Methods of making pancreatic islet cells |
US6306424B1 (en) | 1999-06-30 | 2001-10-23 | Ethicon, Inc. | Foam composite for the repair or regeneration of tissue |
US6333029B1 (en) * | 1999-06-30 | 2001-12-25 | Ethicon, Inc. | Porous tissue scaffoldings for the repair of regeneration of tissue |
US6685936B2 (en) * | 1999-10-12 | 2004-02-03 | Osiris Therapeutics, Inc. | Suppressor cells induced by culture with mesenchymal stem cells for treatment of immune responses in transplantation |
US6303424B1 (en) * | 1999-10-21 | 2001-10-16 | United Microelectronics Corp. | Method for fabricating a buried bit line in a DRAM cell |
US20030082155A1 (en) | 1999-12-06 | 2003-05-01 | Habener Joel F. | Stem cells of the islets of langerhans and their use in treating diabetes mellitus |
EP1240518A4 (en) * | 1999-12-13 | 2006-05-17 | Scripps Research Inst | MARKERS FOR THE IDENTIFICATION AND INSULATION OF PRE-GENERIC CELLS OF A AND B PANCREAS ISOLATED CELLS |
US7439064B2 (en) * | 2000-03-09 | 2008-10-21 | Wicell Research Institute, Inc. | Cultivation of human embryonic stem cells in the absence of feeder cells or without conditioned medium |
US7005252B1 (en) * | 2000-03-09 | 2006-02-28 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Serum free cultivation of primate embryonic stem cells |
US6436704B1 (en) * | 2000-04-10 | 2002-08-20 | Raven Biotechnologies, Inc. | Human pancreatic epithelial progenitor cells and methods of isolation and use thereof |
US6458589B1 (en) | 2000-04-27 | 2002-10-01 | Geron Corporation | Hepatocyte lineage cells derived from pluripotent stem cells |
WO2002000849A1 (fr) * | 2000-06-26 | 2002-01-03 | Renomedix Institute Inc. | Fraction cellulaire contenant des cellules capables de se differencier en cellules du systeme nerveux |
CA2426654C (en) | 2000-10-23 | 2010-12-21 | Smithkline Beecham Corporation | 2,4,8-trisubstituted-8h-pyrido[2,3-d}pyrimidin-7-one compounds |
EP1345946B1 (en) | 2000-12-08 | 2005-08-10 | Ortho-McNeil Pharmaceutical, Inc. | Macroheterocylic compounds useful as kinase inhibitors |
PT1362047E (pt) | 2000-12-08 | 2006-09-29 | Ortho Mcneil Pharm Inc | Compostos de pirrolina substituidos com indazolilo como inibidores de cinase |
US6599323B2 (en) | 2000-12-21 | 2003-07-29 | Ethicon, Inc. | Reinforced tissue implants and methods of manufacture and use |
US20040121460A1 (en) * | 2001-01-24 | 2004-06-24 | Lumelsky Nadya L | Differentiation of stem cells to pancreatic endocrine cells |
EP3078667B1 (en) * | 2001-01-25 | 2018-11-21 | The United States of America, represented by the Secretary, Department of Health and Human Services | Formulation of boronic acid compounds |
US6656488B2 (en) | 2001-04-11 | 2003-12-02 | Ethicon Endo-Surgery, Inc. | Bioabsorbable bag containing bioabsorbable materials of different bioabsorption rates for tissue engineering |
DE10290025T1 (de) * | 2001-04-19 | 2003-10-09 | Develogen Ag | Verfahren zur Differenzierung von Stammzellen in Insulin-produzierende Zellen |
ATE421991T1 (de) | 2001-04-24 | 2009-02-15 | Ajinomoto Kk | Stammzellen und verfahren zu deren trennung |
CA2447015A1 (en) | 2001-05-15 | 2002-11-21 | Rappaport Family Institute For Research In The Medical Sciences | Insulin producing cells derived from human embryonic stem cells |
US6626950B2 (en) * | 2001-06-28 | 2003-09-30 | Ethicon, Inc. | Composite scaffold with post anchor for the repair and regeneration of tissue |
KR100418195B1 (ko) | 2001-07-05 | 2004-02-11 | 주식회사 우리기술 | 전력케이블의 다중절연진단장치 및 그 방법 |
GB0117583D0 (en) * | 2001-07-19 | 2001-09-12 | Astrazeneca Ab | Novel compounds |
CA2456981C (en) * | 2001-08-06 | 2012-02-28 | Bresagen, Inc. | Alternative compositions and methods for the culture of stem cells |
US6617152B2 (en) * | 2001-09-04 | 2003-09-09 | Corning Inc | Method for creating a cell growth surface on a polymeric substrate |
IL161229A0 (en) * | 2001-10-02 | 2004-09-27 | Inst Clayton De La Rech | Methods and compositions relating to restricted expression lentiviral vectors and their applications. |
US20030138951A1 (en) | 2001-10-18 | 2003-07-24 | Li Yin | Conversion of liver stem and progenitor cells to pancreatic functional cells |
KR20050044393A (ko) * | 2001-11-09 | 2005-05-12 | 아르테셀 사이언스, 인크. | 지방 조직 유래된 스트로마 세포의 내분비 췌장 분화 및이의 용도 |
DE60233248D1 (de) | 2001-11-15 | 2009-09-17 | Childrens Medical Center | Verfahren zur isolierung, expansion und differenzierung fötaler stammzellen aus chorionzotte, fruchtwasser und plazenta und therapeutische verwendungen davon |
IL162131A0 (en) * | 2001-12-07 | 2005-11-20 | Geron Corp | Islet cells from human embryonic stem cells |
CN1630526B (zh) * | 2001-12-07 | 2010-05-05 | 马克罗珀尔生物外科公司 | 用加工的脂肪抽吸细胞来治疗患者的系统和方法 |
AU2002218893A1 (en) | 2001-12-21 | 2003-07-09 | Thromb-X Nv | Compositions for the in vitro derivation and culture of embryonic stem (es) cell lines with germline transmission capability |
US20030162290A1 (en) | 2002-01-25 | 2003-08-28 | Kazutomo Inoue | Method for inducing differentiation of embryonic stem cells into functioning cells |
AU2003231358A1 (en) * | 2002-04-17 | 2003-10-27 | Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd. | METHOD OF FORMING PANCREATIC Beta CELLS FROM MESENCHYMAL CELLS |
US20040161419A1 (en) * | 2002-04-19 | 2004-08-19 | Strom Stephen C. | Placental stem cells and uses thereof |
WO2003095452A1 (en) | 2002-05-08 | 2003-11-20 | Janssen Pharmaceutica N.V. | Substituted pyrroline kinase inhibitors |
US20060003446A1 (en) | 2002-05-17 | 2006-01-05 | Gordon Keller | Mesoderm and definitive endoderm cell populations |
AU2003273573A1 (en) | 2002-05-28 | 2003-12-19 | Becton, Dickinson And Company | Expansion and transdifferentiation of human acinar cells |
KR20050008787A (ko) | 2002-06-05 | 2005-01-21 | 얀센 파마슈티카 엔.브이. | 키나제 저해제로서의 비스인돌릴-말레이미드 유도체 |
GB0212976D0 (en) | 2002-06-06 | 2002-07-17 | Tonejet Corp Pty Ltd | Ejection method and apparatus |
CN1171991C (zh) | 2002-07-08 | 2004-10-20 | 徐如祥 | 人神经干细胞的培养方法 |
US6877147B2 (en) * | 2002-07-22 | 2005-04-05 | Broadcom Corporation | Technique to assess timing delay by use of layout quality analyzer comparison |
US7838290B2 (en) * | 2002-07-25 | 2010-11-23 | The Scripps Research Institute | Hematopoietic stem cells and methods of treatment of neovascular eye diseases therewith |
EP1539930A4 (en) | 2002-07-29 | 2006-08-09 | Es Cell Int Pte Ltd | METHOD IN MULTIPLE STAGES OF DIFFERENTIATION OF POSITIVE INSULIN-SENSITIVE CELLS, GLUCOSE |
WO2004016747A2 (en) | 2002-08-14 | 2004-02-26 | University Of Florida | Bone marrow cell differentiation |
WO2004023100A2 (en) | 2002-09-06 | 2004-03-18 | Amcyte Inc. | Cd56 positive human adult pancreatic endocrine progenitor cells |
US9969977B2 (en) * | 2002-09-20 | 2018-05-15 | Garnet Biotherapeutics | Cell populations which co-express CD49c and CD90 |
US20040062753A1 (en) | 2002-09-27 | 2004-04-01 | Alireza Rezania | Composite scaffolds seeded with mammalian cells |
AU2003285172A1 (en) | 2002-11-08 | 2004-06-03 | The Johns Hopkins University | Human embryonic stem cell cultures, and compositions and methods for growing same |
US7144999B2 (en) | 2002-11-23 | 2006-12-05 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Modulation of hypoxia-inducible factor 1 alpha expression |
EP1567639A4 (en) | 2002-12-05 | 2005-12-21 | Technion Res & Dev Foundation | CULTURE OF HUMAN PANCREATIC ISLANDS AND USES THEREOF |
CN100549163C (zh) | 2002-12-16 | 2009-10-14 | 技术研究及发展基金有限公司 | 制备无饲养细胞、无异源的人胚胎干细胞的方法以及使用该方法制备的干细胞培养物 |
WO2005045001A2 (en) * | 2003-02-14 | 2005-05-19 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Insulin-producing cells derived from stem cells |
US20070155661A1 (en) | 2003-02-14 | 2007-07-05 | The Board Of Trustees Of The Leland Standord Junior University | Methods and compositions for modulating the development of stem cells |
US20070020242A1 (en) | 2003-03-27 | 2007-01-25 | Ixion Biotechnology, Inc. | Method for transdifferentiation of non-pancreatic stem cells to the pancreatic pathway |
US20060194315A1 (en) | 2003-03-31 | 2006-08-31 | Condie Brian G | Compositions and methods for the control, differentiaton and/or manipulation of pluripotent cells through a gamma-secretase signaling pathway |
US20090203141A1 (en) | 2003-05-15 | 2009-08-13 | Shi-Lung Lin | Generation of tumor-free embryonic stem-like pluripotent cells using inducible recombinant RNA agents |
CA2530533C (en) * | 2003-06-27 | 2015-02-10 | Ethicon, Incorporated | Postpartum cells derived from umbilical cord tissue, and methods of making and using the same |
IL161903A0 (en) | 2003-07-17 | 2005-11-20 | Gamida Cell Ltd | Ex vivo progenitor and stem cell expansion for usein the treatment of disease of endodermally- deri ved organs |
ITRM20030395A1 (it) | 2003-08-12 | 2005-02-13 | Istituto Naz Per Le Malattie Infettive Lazz | Terreno di coltura per il mantenimento, la proliferazione e il differenziamento di cellule di mammifero. |
WO2005017117A2 (en) | 2003-08-14 | 2005-02-24 | Martin Haas | Multipotent amniotic fetal stem cells (mafsc) and banking of same |
US7157275B2 (en) * | 2003-08-15 | 2007-01-02 | Becton, Dickinson And Company | Peptides for enhanced cell attachment and growth |
CA2536067A1 (en) | 2003-08-27 | 2005-03-10 | Stemcells California, Inc. | Enriched pancreatic stem cell and progenitor cell populations, and methods for identifying, isolating and enriching for these populations |
JP2007515433A (ja) | 2003-12-17 | 2007-06-14 | アラーガン インコーポレイテッド | Cyp26aおよびcyp26bの選択的阻害剤を使用するレチノイド反応性障害の処置方法 |
US20060030042A1 (en) | 2003-12-19 | 2006-02-09 | Ali Brivanlou | Maintenance of embryonic stem cells by the GSK-3 inhibitor 6-bromoindirubin-3'-oxime |
MX2009009225A (es) | 2003-12-23 | 2009-09-28 | Cythera Inc | Endodermo definitivo. |
US20050266554A1 (en) | 2004-04-27 | 2005-12-01 | D Amour Kevin A | PDX1 expressing endoderm |
US7625753B2 (en) | 2003-12-23 | 2009-12-01 | Cythera, Inc. | Expansion of definitive endoderm cells |
US20050233446A1 (en) | 2003-12-31 | 2005-10-20 | Parsons Xuejun H | Defined media for stem cell culture |
TWI334443B (en) * | 2003-12-31 | 2010-12-11 | Ind Tech Res Inst | Method of single cell culture of undifferentiated human embryonic stem cells |
US20080241107A1 (en) | 2004-01-23 | 2008-10-02 | Copland Iii John A | Methods and Compositions For Preparing Pancreatic Insulin Secreting Cells |
WO2005080551A2 (en) | 2004-02-12 | 2005-09-01 | University Of Newcastle Upon Tyne | Stem cells |
CA2558486A1 (en) | 2004-03-10 | 2005-09-22 | Alberto Hayek | Compositions and methods for growth of embryonic stem cells |
WO2005097977A2 (en) | 2004-04-01 | 2005-10-20 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Differentiation of stem cells to endoderm and pancreatic lineage |
KR101278421B1 (ko) | 2004-04-27 | 2013-07-15 | 비아싸이트, 인크. | Pdx1 발현 내배엽 |
CA2966883A1 (en) | 2004-07-09 | 2006-02-16 | Cythera, Inc. | Methods for identifying factors for differentiating definitive endoderm |
EP1791952A4 (en) | 2004-08-13 | 2008-06-11 | Univ Georgia Res Found | COMPOSITIONS AND METHODS OF SELF-RENEWAL AND DIFFERENTIATION IN HUMAN EMBRYONAL STEM CELLS |
US20080268533A1 (en) | 2004-08-25 | 2008-10-30 | University Of Georgia Research Foundation, Inc. | Methods and Compositions Utilizing Myc and Gsk3Beta to Manipulate the Pluripotency of Embryonic Stem Cells |
DE102004043256B4 (de) | 2004-09-07 | 2013-09-19 | Rheinische Friedrich-Wilhelms-Universität Bonn | Skalierbarer Prozess zur Kultivierung undifferenzierter Stammzellen in Suspension |
JP2008518585A (ja) | 2004-09-08 | 2008-06-05 | ウイスコンシン アラムニ リサーチ ファンデーション | ヒト胚幹細胞の培養 |
AU2005282510B2 (en) | 2004-09-08 | 2010-12-02 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Medium and culture of embryonic stem cells |
AU2006210955A1 (en) | 2005-01-31 | 2006-08-10 | Es Cell International Pte Ltd. | Directed differentiation of embryonic stem cells and uses thereof |
SG160373A1 (en) | 2005-03-04 | 2010-04-29 | John Oaeneil | Adult pancreatic derived stromal cells |
GB0505970D0 (en) | 2005-03-23 | 2005-04-27 | Univ Edinburgh | Culture medium containing kinase inhibitor, and uses thereof |
ATE553198T1 (de) | 2005-04-15 | 2012-04-15 | Geron Corp | Behandlung von krebs durch die kombinierte hemmung der proteasom- und telomeraseaktivitäten |
US20080208351A1 (en) | 2005-04-26 | 2008-08-28 | Aarhus Universitet | Biocompatible Material for Surgical Implants and Cell Guiding Tissue Culture Surfaces |
CA2610598A1 (en) | 2005-06-10 | 2006-12-21 | Irm Llc | Compounds that maintain pluripotency of embryonic stem cells |
WO2006138433A2 (en) | 2005-06-14 | 2006-12-28 | The Regents Of The University Of California | Induction of cell differentiation by class i bhlh polypeptides |
WO2006137787A1 (en) | 2005-06-21 | 2006-12-28 | Ge Healthcare Bio-Sciences Ab | Method for cell culture |
JP5345388B2 (ja) | 2005-06-30 | 2013-11-20 | ジヤンセン・フアーマシユーチカ・ナームローゼ・フエンノートシヤツプ | 環式アニリノ−ピリジノトリアジン |
WO2007016485A2 (en) | 2005-07-29 | 2007-02-08 | Athersys, Inc. | Use of a gsk-3 inhibitor to maintain potency of cultured cells |
GB2443370A (en) | 2005-07-29 | 2008-04-30 | Australian Stem Cell Ct Ltd | Compositions and methods for growth of pluripotent cells |
WO2007027156A1 (en) | 2005-09-02 | 2007-03-08 | Agency For Science, Technology And Research | Method of deriving mesenchymal stem cells |
WO2007030870A1 (en) | 2005-09-12 | 2007-03-22 | Es Cell International Pte Ltd | Cardiomyocyte production |
EP1941032A2 (en) | 2005-10-14 | 2008-07-09 | Regents Of The University Of Minnesota | Differentiation of non-embryonic stem cells to cells having a pancreatic phenotype |
ES2743202T3 (es) * | 2005-10-27 | 2020-02-18 | Viacyte Inc | Endodermo de intestino proximal dorsal y ventral que expresa PDX1 |
WO2007082963A1 (es) | 2006-01-18 | 2007-07-26 | Fundación Instituto Valenciano De Infertilidad | Líneas de células madre embrionarias humanas y métodos para usar las mismas |
CN101410509B (zh) | 2006-02-23 | 2016-05-18 | 维亚赛特公司 | 用于培养可分化细胞的组合物和方法 |
US7695965B2 (en) | 2006-03-02 | 2010-04-13 | Cythera, Inc. | Methods of producing pancreatic hormones |
EP3527658A1 (en) | 2006-04-28 | 2019-08-21 | Lifescan, Inc. | Differentiation of human embryonic stem cells |
US8741643B2 (en) | 2006-04-28 | 2014-06-03 | Lifescan, Inc. | Differentiation of pluripotent stem cells to definitive endoderm lineage |
US20070259423A1 (en) * | 2006-05-02 | 2007-11-08 | Jon Odorico | Method of differentiating stem cells into cells of the endoderm and pancreatic lineage |
US7964402B2 (en) | 2006-05-25 | 2011-06-21 | Sanford-Burnham Medical Research Institute | Methods for culture and production of single cell populations of human embryonic stem cells |
WO2007149182A2 (en) | 2006-06-19 | 2007-12-27 | Geron Corporation | Differentiation and enrichment of islet-like cells from human pluripotent stem cells |
CN100494359C (zh) | 2006-06-23 | 2009-06-03 | 中日友好医院 | 神经干细胞三维立体培养体外扩增的方法 |
ES2610812T3 (es) | 2006-06-26 | 2017-05-03 | Lifescan, Inc. | Cultivo de células madre pluripotentes |
US20080003676A1 (en) | 2006-06-26 | 2008-01-03 | Millipore Corporation | Growth of embryonic stem cells |
GB2454386B (en) | 2006-07-06 | 2011-07-06 | Es Cell Int Pte Ltd | Method for embryonic stem cell culture on a positively charged support surface |
WO2008013664A2 (en) | 2006-07-26 | 2008-01-31 | Cythera, Inc. | Methods of producing pancreatic hormones |
JP2008099662A (ja) | 2006-09-22 | 2008-05-01 | Institute Of Physical & Chemical Research | 幹細胞の培養方法 |
WO2008039521A2 (en) * | 2006-09-26 | 2008-04-03 | Nmt Medical, Inc. | Method for modifying a medical implant surface for promoting tissue growth |
WO2008048647A1 (en) | 2006-10-17 | 2008-04-24 | Cythera, Inc. | Modulation of the phosphatidylinositol-3-kinase pathway in the differentiation of human embryonic stem cells |
CA2666789C (en) | 2006-10-18 | 2016-11-22 | Yong Zhao | Embryonic-like stem cells derived from adult human peripheral blood and methods of use |
WO2008086005A1 (en) | 2007-01-09 | 2008-07-17 | University Of South Florida | Compositions including triciribine and bortezomib and derivatives thereof and methods of use thereof |
CN101641436A (zh) | 2007-01-30 | 2010-02-03 | 佐治亚大学研究基金会 | 用于产生内胚层和中胚层细胞系及多能游走细胞(mmc)的早期中胚层细胞即稳定的中内胚层细胞群 |
GB0703188D0 (en) | 2007-02-19 | 2007-03-28 | Roger Land Building | Large scale production of stem cells |
RU2473685C2 (ru) | 2007-07-31 | 2013-01-27 | Лайфскен, Инк. | Дифференцировка человеческих эмбриональных стволовых клеток |
WO2009027644A2 (en) | 2007-08-24 | 2009-03-05 | Stichting Het Nederlands Kanker Instituut | Composition |
SG154367A1 (en) | 2008-01-31 | 2009-08-28 | Es Cell Int Pte Ltd | Method of differentiating stem cells |
EP2250252A2 (en) | 2008-02-11 | 2010-11-17 | Cambridge Enterprise Limited | Improved reprogramming of mammalian cells, and the cells obtained |
KR102026622B1 (ko) | 2008-02-21 | 2019-09-30 | 얀센 바이오테크 인코포레이티드 | 세포 부착, 배양 및 탈리를 위한 방법, 표면 개질 플레이트 및 조성물 |
WO2009116951A2 (en) | 2008-03-17 | 2009-09-24 | Agency For Science, Technology And Research | Microcarriers for stem cell culture |
DK2727998T3 (da) | 2008-04-21 | 2019-08-26 | Viacyte Inc | Fremgangsmåder til oprensning af pancreatiske endodermceller afledt fra humane embryoniske stamceller |
US20090298178A1 (en) | 2008-06-03 | 2009-12-03 | D Amour Kevin Allen | Growth factors for production of definitive endoderm |
DE102008032236A1 (de) | 2008-06-30 | 2010-04-01 | Eberhard-Karls-Universität Tübingen | Isolierung und/oder Identifizierung von Stammzellen mit adipozytärem, chondrozytärem und pankreatischem Differenzierungspotential |
WO2010002846A1 (en) | 2008-06-30 | 2010-01-07 | Centocor Ortho Biotech Inc. | Differentiation of pluripotent stem cells |
US20100028307A1 (en) | 2008-07-31 | 2010-02-04 | O'neil John J | Pluripotent stem cell differentiation |
CN102272291B (zh) | 2008-10-31 | 2018-01-16 | 詹森生物科技公司 | 人胚胎干细胞向胰腺内分泌谱系的分化 |
US8008075B2 (en) | 2008-11-04 | 2011-08-30 | Viacyte, Inc. | Stem cell aggregate suspension compositions and methods of differentiation thereof |
RU2540016C2 (ru) | 2009-07-20 | 2015-01-27 | Янссен Байотек, Инк. | Дифференцировка эмбриональных стволовых клеток человека |
US20120322152A1 (en) | 2010-03-02 | 2012-12-20 | Michael Raghunath | Culture Additives To Boost Stem Cell Proliferation And Differentiation Response |
-
2010
- 2010-07-19 MX MX2012000899A patent/MX340952B/es active IP Right Grant
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-
2012
- 2012-02-17 ZA ZA2012/01221A patent/ZA201201221B/en unknown
- 2012-10-30 HK HK12110883.5A patent/HK1170262A1/zh not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20060281174A1 (en) * | 2004-03-09 | 2006-12-14 | Gang Xu | Methods for generating insulin-producing cells |
WO2007103282A2 (en) * | 2006-03-02 | 2007-09-13 | Cythera, Inc. | Endocrine precursor cells, pancreatic hormone-expressing cells and methods of production |
WO2009012428A2 (en) * | 2007-07-18 | 2009-01-22 | Lifescan, Inc. | Differentiation of human embryonic stem cells |
WO2009070592A2 (en) * | 2007-11-27 | 2009-06-04 | Lifescan, Inc. | Differentiation of human embryonic stem cells |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
TINGXIA GUO等: "Stem Cells to Pancreatic β-Cells: New Sources for Diabetes Cell Therapy", 《ENDOCRINE REVIEWS》 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108220224A (zh) * | 2011-06-21 | 2018-06-29 | 诺沃—诺迪斯克有限公司 | 自多潜能干细胞有效诱导定形内胚层 |
CN104334719A (zh) * | 2012-06-08 | 2015-02-04 | 詹森生物科技公司 | 人胚胎干细胞向胰腺内分泌细胞的分化 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2012105923A (ru) | 2013-08-27 |
KR101785626B1 (ko) | 2017-10-16 |
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MX340952B (es) | 2016-07-29 |
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EP2456858A4 (en) | 2015-03-18 |
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