CN102498204B - 人脐带组织细胞作为用于阿尔茨海默病的疗法 - Google Patents

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Abstract

提供了治疗阿尔茨海默病或阿尔茨海默病症状的方法。一些实施方案涉及用于治疗的方法，所述方法包括给予从人脐带组织获得的细胞，或给予包括所述细胞或从所述细胞例如细胞衍生物制备的药物组合物。一些实施方案涉及用于包含hUTC的治疗方法。还提供了用于本发明方法的药物组合物，以及用于实施所述方法的药盒。

Description

人脐带组织细胞作为用于阿尔茨海默病的疗法
相关申请的交叉引用
本申请要求于2009年3月26日提交的美国临时专利申请号61/163619的权益，其内容通过引用以其整体结合到本文中。
背景
1.发明领域
本发明总体上涉及用于通过给予细胞或细胞衍生物治疗阿尔茨海默病的组合物、方法和药盒。具体而言，本发明提供将细胞或细胞衍生物给予患者以减少斑蛋白(plaque protein)的积累以及提供支持因子(support factor)以减少神经元细胞死亡。本发明还提供将细胞或细胞衍生物给予患者以治疗阿尔茨海默病的症状。
2.相关技术描述
阿尔茨海默病是北美洲和欧洲地区痴呆的最常见病因。总体而言，阿尔茨海默病为常见且复杂的病症，其表征为成人发病的进行性痴呆。该疾病通常始于65岁以后，且阿尔茨海默病的风险随年龄增大而增加。事实上，超过70岁的人中，大约10％记忆显著丧失且半数以上的这些个体患有阿尔茨海默病。据估算，超过85岁的人体中，痴呆的发病率约为25-45％。此外，阿尔茨海默病被认为是老年人的第四大死因。
在接下来的几十年中，将有创纪录的人成为老年人。除非医药工业开发出有效的预防和治疗方法，否则到下世纪中期阿尔茨海默病可达到流行比例。由于寿命不断增加，老年人阿尔茨海默病的发生导致当今医疗业面临巨大的医学、经济和社会问题。
阿尔茨海默病是脑的退行性疾病，其不可康复。该疾病攻击脑皮层所有部位的神经细胞，以及一些周围结构和组织。通常，阿尔茨海默病始于细微且难以识别的记忆减退。阿尔茨海默病的早期症状可被忽略，这是因为此类症状类似于自然老化的征兆。这些症状包括健忘、注意力丧失、不明的体重减轻和运动问题包括轻度行走困难。在健康个体中，类似症状可起因于疲劳、悲伤或抑郁、疾病、视觉或听觉丧失、酒精与某些药物的使用、或仅不能记住曾经的复杂细节。伴随的感觉问题，例如听觉丧失和阅读能力下降以及全身性身体无力表明存活时间短。其它症状包括意识错乱、判断力弱、语言障碍、精神激动、病理性退隐和幻觉。一些患者可出现癫痫发作、帕金森型特征、肌紧张度降低、肌阵挛、失禁和缄默症。患者还可表现例如不能执行日常事务、语言技能丧失、无计划能力和人格改变的症状。随着时间的推移，这些变化变得严重和造成损伤，致使患者丧失全部记忆且精神机能发生中枢神经系统(CNS)完全瘫痪的程度，以及受调控的循环和呼吸功能的停止。
临床上，阿尔茨海默病是神经病理性疾病。可识别的临床征兆包括进行性痴呆和脑皮层萎缩，其可通过神经影像研究确定。此外，神经病理检查发现通常包括细微A-β淀粉样蛋白神经斑、神经元内神经原纤维缠结和淀粉状蛋白血管病。研究表明阿尔茨海默病与脑皮层萎缩、β淀粉样蛋白斑组织学检查发现和脑皮层区域内神经元内神经原纤维缠结的检查发现相关。
神经原纤维缠结是缠结的纤维，其为脑皮层区域内微管的受损残余物，并支持使营养物流经神经细胞(神经元)的结构。β淀粉样蛋白是更大蛋白(APP)的片段的不溶蛋白。APP自身在神经保护中似乎是重要的。假若参与将APP切成β淀粉样蛋白片段的酶不起作用，已表明APP将形成称为神经斑的粘性斑，其降低脑内的神经元功能和信号传递。通常，此类神经斑存在于由垂死神经元碎片包围的神经细胞的外部。
此外，高水平的β淀粉样蛋白与神经递质乙酰胆碱水平的降低有关。神经递质是脑中的化学信使，其在CNS的各区域内传递各种信号、信息和神经化学信息。乙酰胆碱是胆碱能系统的一部分，其对记忆和学习是必需的，且在患有阿尔茨海默病的患者中进行性受损。因此，将其理论化可得出：神经斑形式的β淀粉样蛋白造成神经递质、乙酰胆碱减少，导致阿尔茨海默病的进展。
如今，阿尔茨海默病治疗基于针对每一个体的疾病进展控制疾病症状。尽管有治疗阿尔茨海默病的药物，但无法治愈该疾病。治疗包括改变CNS中神经递质可用性的药物。例如，一些药物增加脑中的乙酰胆碱例如乙酰胆碱酯酶抑制剂，作为多巴胺受体拮抗剂以及非竞争性NMDA受体拮抗剂。其它药物用于治疗阿尔茨海默病患者的攻击和精神病。
如今，可用的治疗具有副作用，包括恶心、腹泻、肝脏毒性、腹部痉挛、溃疡、胃肠出血、直立性低血压、困倦、头晕、性功能障碍和失眠。有时，严重的副作用致使医生停止治疗。
鉴于现今治疗阿尔茨海默病的局限性，存在对减轻个体阿尔茨海默病症状的需要，其节省成本、副作用可能性最小、积极增强记忆和认知功能，以及能执行日常生活活动。
附图简述
图1显示通过游泳速度评价的可见平台试验(visible platform test)中全部处理组之间一天的Morris Water Maze试验结果。
图2显示用于隐藏平台获取(hidden platform acquisition)的用PBS或hUTC处理的所有大鼠处理组随时间的Gallagher Cumulative试验得分。
图3显示用于隐藏平台获取的用PBS或hUTC处理的所有大鼠处理组随时间的潜伏期测量结果。
图4为用PBS或hUTC处理的所有大鼠处理组在反向隐藏平台获取(reverse hidden platform acquisition)中在第7-9天的GallagherCumulative试验得分。
图5为用PBS或hUTC处理的所有大鼠处理组在反向隐藏平台获取中在第7-9天的潜伏期测量结果。
发明概述
本文所述说明性实施方案的组合物、方法和药盒解决了存在的问题。这些实施方案提供用于通过给予细胞、细胞群或细胞衍生物治疗阿尔茨海默病或阿尔茨海默病的症状的方法。虽然不希望受到任何作用机制的束缚，发明人相信给予阿尔茨海默病患者的细胞或细胞衍生物降低斑的普遍存在，不仅减少老年斑的进展，还增加神经保护。此外，发明人相信细胞或细胞衍生物的给予促进经吞噬机制的斑去除。本发明至少部分基于下列发现：可以将细胞，包括干细胞和/或源自人胎盘或脐带组织(″hUTC″)的产后来源的细胞，局部或全身地施用到患有阿尔茨海默病的患者。特别地，本发明涉及将hUTC或hUTC衍生物给予患有阿尔茨海默病的患者。
本发明的具体实施方案涉及阿尔茨海默病征兆/症状的治疗，包括健忘、注意力丧失、不明的体重减轻和运动问题、行走困难、听觉丧失和阅读或语言能力下降、意识错乱、判断力弱、精神激动、病理性退隐、幻觉、癫痫发作、帕金森型特征、肌紧张度降低、肌阵挛、失禁、缄默症、不能执行日常事务、无计划能力和人格改变。
在一个实施方案中，本发明涉及通过给予有效量的细胞群治疗患有阿尔茨海默病的受试者的方法，使阿尔茨海默病得以治疗。在另一实施方案中，所给予的细胞是产后来源的细胞。在一些实施方案中，产后来源的细胞源自人胎盘，且在另外的实施方案中，产后来源的细胞源自脐带组织。在另一实施方案中，所给予的细胞为干细胞。在一个实施方案中，所述细胞为hUTC。
在另一实施方案中，本发明涉及通过给予有效量的细胞群治疗患有阿尔茨海默病征兆/症状的受试者的方法，使阿尔茨海默病征兆/症状得以治疗。在另一实施方案中，所给予的细胞是产后来源的细胞。在一些实施方案中，产后来源的细胞源自人胎盘，且在另外的实施方案中，产后来源的细胞源自脐带组织。在另一实施方案中，所给予的细胞为干细胞。在一个实施方案中，所述细胞为hUTC。
在一些实施方案中，以单次注射给予细胞群。在其它实施方案中，以多于一次注射给予细胞群。在一个实施方案中，将细胞经脑脊液(CSF)给予CNS。在另一实施方案中，将细胞局部给予在斑形成区域的CNS。在另一实施方案中，将细胞局部给予涉及记忆和学习的脑区域，包括但不限于扁桃体、纹状体、乳头体例如海马和间脑、颞皮质、丘脑、下丘脑、浅层皮质和新皮质。
给予位点可为医学专业人员确定为最有效的任何位点，并且因而可接近或远离斑形成位点。
细胞给予可通过任何方式，包括但不限于进入到CSF、脑组织等。还可经由带有或不带有泵装置的带有针和/或导管的注射器递送。递送可包括药学上可接受的载体的使用，所述载体例如盐水、胶原、交联胶原、透明质酸、基于合成聚合物的系统、液体、水凝胶或支架。此外，一些实施方案包括一种或多种生长因子使用，其被并行、序贯注射或直接配制成一种或多种药学上可接受的载体。
在一些实施方案中，细胞群连同至少一种其它药剂给予，包括但不限于，选择的细胞外基质组分、微载体、微粒系统包括抗凋亡剂、抗炎化合物、免疫抑制剂或免疫调节剂、抗氧化剂以及增强细胞存活、增殖和其它细胞功能的其它因子。在一个实施方案中，组合物进一步包含选自神经营养因子的药剂或因子中的至少一种。
在一些实施方案中，在给予前用电刺激预处理细胞。
在其它实施方案中，将细胞修饰以表达一种或多种增强神经细胞存活、分化或细胞吞噬活性的基因。
在所有实施方案中，细胞衍生物例如裂解物或条件培养基，可与本发明细胞群共同给予或取代本发明细胞群给予。
本发明其它实施方案特征在于用于治疗患有阿尔茨海默病患者的包含至少细胞群和药学上可接受的载体的组合物和药盒。其它组合物和药盒实施方案可包含其它药剂、生长因子和化合物例如抗凋亡剂、抗炎化合物、免疫抑制或免疫调节剂、抗氧化剂和增强细胞存活、增殖和其它细胞功能的其它因子。设计和/或配制药物组合物和药盒，用于实施上下文所概述的本发明方法。
参考附图和以下的详述，说明性实施方案的其它目的、特征和优点将变得明显。
发明详述
在下面的说明性实施方案详述中，参考构成其一部分的附图。这些实施方案被足够详细地描述，以使本领域技术人员能够实施本发明，并且应理解的是，可以利用其它实施方案并且可以在不背离本发明的精神或范围的情况下进行合理的结构、机械、电和化学改变。为了避免使本领域技术人员能够实施本文描述的实施方案所不需要的细节，本说明书可省略本领域技术人员已知的某些信息。因此，下面的详述不采取限制性方式，且说明性实施方案的范围仅由所附权利要求限定。
为了更好地阐明本发明，提供下面的定义。
本文所用的术语″斑位点″、″神经斑″、″神经损伤″和″神经损害位点″是可互换的且通常指中枢神经系统的区域，其中淀粉样蛋白斑已在个体神经组织上或神经组织附近积累，且可包括但不限于结缔组织和血管组织。该术语可进一步指不一定是受伤或受损的任何组织区域，而是其中希望减少斑生长的替代区域。该术语还可指如下的神经组织：虽然不具有明显的斑形成，但根据所观察到的记忆、学习、运动功能、视听功能、语言功能等的改变，临床观察结果、在先研究或当前个体患者表明神经组织机能存在异常。
本文所用的术语″个体″、″患者″或″受试者″通常指任何形式的动物，包括哺乳动物，例如人和猴，其用药物或治疗组合物或根据所描述的方法进行治疗。本文所用的术语″异种″指细胞从一个物种的供体给予不同物种的受试者中。本文所用的术语″异种的″指将来自一种物种的供体的细胞给予不同物种对象。
本文所用的术语″治疗″通常指细胞群给予患有阿尔茨海默病的受试者中之后一段时间内，阿尔茨海默病任何症状的改善或减少、斑形成的减少以及斑的减少。该改善或减少也包括任何客观或主观参数，例如症状的减轻、缓和、减少，或使阿尔茨海默病对患者更加耐受，减缓变性或衰退速度，使变性终点虚弱程度减小，改进受试者的身体或精神健康，或延长存活时间。症状的治疗或改善可以基于客观或主观参数；包括身体检查或神经学检查的结果。
术语″有效期″、″有效时间段″或″有效条件″通常指时间段或其它可控条件(例如，对于体外方法的温度、湿度)，其对于药剂或药物组合物实现其预期效果是必要的或优选的。
本文所用的术语″有效量″通常指化合物、材料或组合物的浓度或量，如本文所描述的，其有效实现特定的生物学效果。这些结果包括但不限于患者阿尔茨海默病症状改善和/或减少。这种有效活性可例如通过向患有阿尔茨海默病的患者给予本发明的细胞和/或组合物实现。关于给予给患者的细胞群，有效量在局部给予时可为300,000至2百万个细胞/kg，且在全身递送时可为16万个细胞/kg-1千万个细胞/kg。应理解的是，给予的细胞数目将随治疗区域的细节而变化，所述细节包括但不限于待治疗的尺寸或总体积/表面积，和给予位点对待治疗区域位置的接近度，递送方法即例如递送到CSF对比神经内治疗等。
本文所用的术语″干细胞″通常指未分化的细胞，其由单细胞自我更新和分化以产生后代细胞的能力定义，包括自我更新祖细胞、非更新祖细胞和终末分化细胞。干细胞的特征也在于它们的下列能力：在体外分化成来自多胚层(内胚层、中胚层和外胚层)的各种细胞谱系的功能细胞，以及在给予后产生多胚层的组织，和在注射到胚泡中之后基本上有助于大多数组织，如果不是所有组织的话。干细胞可来自任何来源，包括但不限于，胚胎和胎儿来源、产后组织例如脐带和胎盘，和脂肪细胞。干细胞根据它们的发育潜能被分类为：全能的、多潜能的、多能的、寡能的和单能的。干细胞也基于获得它们的来源进行分类，且包括成体干细胞、胚胎干细胞、胎儿干细胞、产后干细胞。
本文所用术语″胚胎组织″通常指起源自胚胎的组织(在人中其指从受精到发育约6周的期间)。此外，术语″胎儿组织″指起源自胎儿的组织，在人中其指从约6周发育到分娩的期间且″胚外组织″指与胚胎或胎儿相关但非起源自胚胎或胎儿的组织。胚外组织包括胚外膜(绒毛膜、羊膜、卵黄囊和尿囊)、脐带和胎盘(其自身形成自绒毛膜和母本底蜕膜)。
本文所用短语″神经细胞″既包括神经细胞(即神经元例如单极、双极或多极神经元)和它们的前体以及神经胶质细胞(例如，大神经胶细胞例如少突胶质细胞、施旺细胞(Schwann cell)和星形胶质细胞或小胶质细胞)和它们的前体。
本文所用术语″祖细胞″通常是指具有产生比其本身更加分化的后代的能力、并且仍然保持补充祖先库的能力的细胞。通过该定义，干细胞本身也是祖细胞，终末分化细胞的更直接前体也如此。当提及本发明的细胞时，如下文更详细地描述的，可使用“祖细胞”的该宽泛定义。较狭义地，祖细胞常常被限定为作为分化途径中间体的细胞，即，其起源自干细胞并为在成熟细胞类型或细胞类型亚型产生中的中间体。该类型的祖细胞通常不能自我更新。因此，如果该类型的细胞在本文中提及，其将被称为″非更新祖细胞″或称为″中间祖细胞或前体细胞″。
本文所用短语″分化″通常是指以下过程，通过该过程非特化的(unspecialized)(″未定型的″)或特化较少的细胞获得特化细胞的特征，例如神经细胞或肌细胞。分化的细胞是已占据细胞谱系中更加特化的(″定型的″)位置的细胞。当用于分化过程时，术语″定型的″指已在分化途径中行进到一点的细胞，在该点，在正常情况下，其将继续分化成特定细胞类型或细胞类型亚型，并且在正常情况下不能分化成不同细胞类型或回复成分化较差的细胞类型。去分化指下列过程，通过该过程细胞回复到细胞谱系中特化(或定型)较少的位置。如本文所用的，细胞的谱系限定细胞的遗传，即，其来自哪些细胞和其可以产生什么细胞。细胞谱系将细胞置于发育和分化的遗传安排(hereditary scheme)中。
用于本发明的细胞可包括称为″产后细胞″或″产后来源的细胞″的细胞。这些细胞可为脐来源的细胞或胎盘来源的细胞。此外，细胞可描述为干细胞或祖细胞，后一术语以其广义使用。术语″来源的″用来表明细胞已获自它们的生物来源并且在体外生长或以其它方式操纵(例如，培养于生长培养基中以扩增群和/或产生细胞系)。本发明的脐干细胞的体外操纵和脐来源的细胞的独特特征详细描述于下文。此外，本文所用的″hUTC″通常指人脐带来源的细胞，与人脐带组织来源的细胞一样。
″群″或″细胞群″通常指两个或更多个细胞。细胞群可从相同或不同来源例如相同供体或若干不同供体得到。此外，群中的细胞不一定是相同细胞类型。细胞群可包括例如脐来源的和胎盘来源的细胞的混合物。
本文所用术语″分离物″通常指已从其天然环境中分离的细胞。该术语包括从其天然环境中总的物理分离，例如，从供体动物取出。在优选的实施方案中，分离的细胞在组织中不存在，即，细胞从与其正常接触的邻近细胞中分离或解离。优选地，细胞作为细胞悬浮液给予。本文所用短语″细胞悬浮液″包括与介质接触和已例如通过使一片组织接受轻柔研磨被解离的细胞。
本文所用术语″生长培养基″通常指足以培养产后来源的细胞的培养基。具体地，用于培养本发明细胞的一种培养基包括Dulbecco′s改良必需培养基(DMEM)。特别优选的是DMEM-低葡萄糖(DMEM-LG)(Invitrogen，Carlsbad，CA)。DMEM-LG优选地补加有血清，最优选地胎牛血清或人血清。通常，加入15％(v/v)胎牛血清(例如，确定成分胎牛血清，Hyclone，Logan Ut.)连同抗生素/抗真菌剂(优选地100单位/毫升青霉素，100毫克/毫升链霉素和0.25微克/毫升两性霉素B；Invitrogen，Carlsbad，CA)和0.001％(v/v)2-巯基乙醇(Sigma，St.LouisMO)。在一些情况下，使用不同的生长培养基或提供不同的补充，并且它们通常在文中指示为生长培养基的补充。在某些化学成分确定的培养基中，细胞可在根本不存在血清的情况下生长。在这种情况下，细胞可需要某些生长因子，其可以加入培养基以支持和维持细胞。待加入用于在无血清培养基中生长的目前优选的因子包括bFGF、EGF、IGF-I和PDGF中的一种或多种。在更优选的实施方案中，将因子中的两种、三种或全部四种加入无血清或化学成分确定的培养基中。在其它实施方案中，将LIF加入无血清培养基以支持或改善细胞的生长。
″细胞衍生物″指条件培养基或细胞裂解物。
″条件培养基″是其中特定细胞或细胞群已被培养并且随后被取出的培养基。当细胞在培养基中培养时，它们可分泌可以对其它细胞提供营养支持的细胞因子。这种营养因子包括但不限于激素、细胞因子、细胞外基质(ECM)、蛋白质、小泡(vesicle)、抗体和颗粒(granule)。包含该细胞因子的培养基是条件培养基。
术语″原代细胞培养物″指在第一传代培养前，直接取自生物体的细胞、组织或器官培养物。
术语″细胞系″通常指由原代细胞培养物的一次或多次转种形成的细胞群。每轮传代培养被称为传代。当细胞被传代培养时，它们被称为已被″传代″。具体的细胞群或细胞系有时通过其被传代的次数进行提及或表征。例如，已传代10次的培养的细胞群可被称为P10培养物。原代培养物，即，细胞从组织分离后的第一培养物被指定为P0。第一传代培养后，细胞被描述为第二培养物(P1或1代)。第二传代培养后，细胞变为第三培养物(P2或2代)等等。本领域的技术人员将理解，在传代期间可有许多群体倍增；因此，培养物的群体倍增数目大于传代数目。在传代之间的时间段期间，细胞的扩增(即，群体倍增数目)取决于许多因素，包括但不限于，接种密度、底物、培养基、生长条件和传代之间的时间。
本文所用术语″药学上可接受的载体″或″药学上可接受的介质″通常指试剂、细胞、化合物、材料、组合物和/或剂型，其不仅与待治疗性给予的细胞和其它药剂相容，而且在正确的医学判断范围内，也适于与人类和动物的组织接触使用，而没有过度的毒性、刺激、变态反应或与合理的利益/风险比相称的其它并发症。
如本文更详细地描述的，适于在本发明中使用的药学上可接受的载体包括液体、半固体(例如，凝胶)和固体材料(例如，细胞支架和基质、管、片和本领域已知的和本文更详细地描述的其它这种材料)。可对这些半固体和固体材料进行设计以抵抗体内降解(非-生物可降解的)或可对它们进行设计以在体内降解(生物可降解的，生物可侵蚀的)。生物可降解材料可进一步为生物可再吸收的或生物可吸收的，即，它可溶解和吸收到体液中(水溶性植入物是一个实例)，或降解并最终从身体消除，通过转化成其它物质或是通过天然途径破坏和消除。一旦植入到体内，生物降解速度就可以根据希望的释放速度而变化。
本文所用的术语″基质″通常指连同细胞给予给患者的生物可降解的和/或生物可再吸收的物质。在一个实施方案中，基质可提供神经营养因子或与细胞联合使用的其它试剂的持续释放，并且可提供用于患者中正在发育的组织生长的结构。在其它实施方案中，基质仅为正在发育的组织提供临时支架。基质可以是颗粒形式(直径大于10微米的大颗粒或直径小于10微米的微粒)，或其可以是结构上稳定的三维植入物形式(例如，支架)。基质可以是浆液或水凝胶，或者可为三维结构。
本文所用术语″支架″通常指三维多孔结构，其提供用于细胞生长的模板。支架由在体内随时间降解的生物可降解的和/或生物可再吸收的材料制成。支架降解花费的时间长度可取决于材料的分子量。因而，较高分子量材料可产生在较长时间段保持它们的结构完整性的聚合物支架；而较低分子量导致较慢的释放和较短的支架寿命。支架可由本领域已知的任何方式制成。可以用于形成支架的聚合物的实例包括天然和合成聚合物。在本发明的一些实施方案中，支架可灌输有、包被有或包含细胞群、生长因子或促进细胞生长的其它营养物。在一些优选的实施方案中，支架包含生长诱导剂，包括神经营养蛋白。进一步地，生长诱导剂可为合成或天然产生的，并且可为生长诱导剂的片段、衍生物或类似物。
″神经营养因子″或″营养因子″被定义为促进细胞存活、生长、增殖和/或成熟，或刺激细胞活性增加的物质。
具体实施方案
对于本发明的所有实施方案，将有效量的细胞群给予诊断患有阿尔茨海默病或显示阿尔茨海默病症状的个体，以治疗阿尔茨海默病或其症状。本发明的具体实施方案涉及细胞群的局部给予，以促进经吞噬机制和/或活性内源机制的斑去除，从而减弱斑形成的进展，刺激并支持神经组织生长和/或愈合。细胞可为下文讨论的任何细胞，包括干细胞、产后来源的细胞、脐带来源或胎盘来源的细胞。在一个实施方案中，细胞为hUTC。下文说明书描述了优选细胞的更详细解释。一些实施方案涉及给予个体的组合物，其中组合物包括细胞群和药学上可接受的载体。这种组合物可以在用于制备、使用和实施本文描述和示例的这种方法和药物组合物的药盒中使用。该药盒可以进一步包含帮助促进给予细胞群的装置，例如针、管、微量移液器等。在一个实施方案中，药盒包含至少一种细胞群、构建体和注射装置。此外，在一些实施方案中，药盒还可以偶联指示细胞的确切位置的成像装置。
在一个实施方案中，将细胞群给予诊断患有阿尔茨海默病的个体，其中给药至CNS中已知斑形成的区域。阿尔茨海默病可通过本领域已知的任何方式诊断，包括对淀粉样蛋白β和τ或其前体、片段或CSF中的代谢化合物的测定。阿尔茨海默病还可通过测定个体流体包括尿和血液中的isoprosane来诊断。其它诊断方法可包括以下技术的使用：检查脑萎缩的脑成像技术例如磁共振成象(MRI)、阿尔茨海默病斑和缠结成像的正电子成像术(PET)和测定脑的海马或其它记忆和/或学习区域中血液的氧气水平的功能性MRI(fMRI)。
构成给予细胞群的确切类型细胞依赖于医学专业人员的判断。在一个实施方案中，给予的细胞为产后来源的细胞。在一些实施方案中，产后来源的细胞源自人胎盘组织，且在其它实施方案中产后来源的细胞源自脐带组织。在另一实施方案中，给予的细胞为干细胞。在一个优选实施方案中，细胞为hUTC。下文描述了适用于本发明的细胞类型的详尽描述。
细胞群可位于、接近或远离脑的区域给予，其中斑在个体的神经组织上或附近积累。脑的此类区域可包括任何参与记忆和学习的区域，包括但不限于扁桃体、纹状体、乳头体例如海马和间脑、颞皮层、丘脑、下丘脑、浅层皮质和新皮质。确切给予位点可为医学专业人员确定为最有效的任何位点。在另一实施方案中，细胞群直接给予CSF。
细胞的给予可为医学专业人员确定为最有效的任何工具给予，且可包括利用导管、注射器、分流器、支架、微导管(microcatheter)、泵、以装置植入或以支架植入。此外，细胞的给予可通过鼻内递送、血管内递送、大脑内注射和心室内注射。在一个实施方案中，细胞群可仅以一次注射给予。在一些实施方案中，细胞群以多于一次注射给予更多。在再另一实施方案中，泵用于确保细胞群的缓慢、持续给予。
包含细胞群的药物组合物可以配制为液体、半固体(例如，凝胶)或固体(例如，基质、支架等)。液体组合物被配制用于通过本领域已知的任何可接受的途径给予，以实现细胞群向靶神经组织的递送。一般地，这些包括注射或输注，其以扩散方式或靶向神经斑形成位点。例如，在一个实施方案中，细胞群通过直接立体定位注射(directstereotaxic injection)例如针给予。针可为任何大小，以促进细胞通过中空孔移动。针可直接通过头骨中的孔、通过脑的神经组织插入到目的神经位点，或可选地，针可连同易于将针引导到组织位点的装置使用，例如导丝(guide wire)。针和引导装置可以被预装配或被交付给受过训练的专业人员；受过训练的专业人员可恰在使用前或在使用期间装配设备。
在可选的实施方案中，可用于递送细胞群的递送导管可插入到递送装置中，其通过例如注射细胞到受试者中促进引入。这种递送装置包括管，例如，导管，用于注射细胞和流体进入接受受试者体内。在一个实施方案中，可以使用微量移液器在希望的位置将本发明的细胞引入受试者内。可以以溶液例如细胞悬浮液形式将本发明的细胞插入这种递送装置，例如，微量移液器或注射器。此外，本发明的细胞可以在引导通道(例如，聚丙烯腈/聚氯乙烯(PAN/PVC)引导通道)中给予，例如在Bunge等人，J.Neurology，1994；241：536中描述的那些。
细胞群或包含细胞的组合物和/或基质可通过微导管、导管内插入(intracatheterization)或通过微泵递送到位点。溶媒、赋形剂或载体可以是已知对于给予给患者而言是药学可接受的那些中的任一种，特别是在待诱导细胞分化的位点局部给予。
条件培养基和细胞裂解物
在一个实施方案中，条件培养基作为细胞的补充或代替给予个体。在另一实施方案中，细胞裂解物作为细胞的补充或代替给予个体。在再一个实施方案中，条件培养基和细胞裂解物作为细胞的补充或代替给予个体。
可在体外和体内使用来自培养的PPDC的条件培养基。PPDC或其它条件培养基的使用允许PPDC分泌的有益的营养因子在患者中同种异体地使用，而不引入可触发排斥或其它不利的免疫应答的完整细胞。条件培养基通过在培养基中培养细胞，然后从培养基取出细胞制备。
由产后来源的细胞群制备的条件培养基可照原样使用，通过例如超滤或冻干进一步浓缩，或甚至干燥、部分纯化、与本领域已知的药学上可接受的载体或稀释剂组合、或与其它化合物例如生物制品例如药学上有用的蛋白质组合物组合。条件培养基可在体外或体内使用，例如单独或与自体或同系基因活细胞组合。条件培养基如果体内引入，则可在治疗位点局部引入或远距离引入，以向患者提供所需的细胞生长或营养因子。
依据本发明的实施方案，提供稳定且灵活的(scalable)方法以制备血清减少hUTC-条件培养基。简言之，该方法包括在血清减少条件下培养hUTC。随后洗涤hUTC并培养于无血清基础培养基中。在大约24小时后，收集条件培养基，通过使用大约5kDa或相似分子量的截留膜过滤并浓缩。
可通过按照美国专利公布号2005/0054098和2005/0058631(其通过引用以其整体结合到本文中)描述的方法分离人脐带组织来源的细胞(hUTC)。随后可通过按照美国专利公布号2005/0054098和2005/0058631描述的方法将分离的细胞于静置培养中生长直至条件培养基制备完成。
可按细胞的任何群体倍增数制备条件培养基。在另一实施方案中，从大约群体倍增数20到大约群体倍增数44制备条件培养基。在再一个实施方案中，可按大约群体倍增数30制备条件培养基。
首先通过从细胞生长的标准培养基中分离细胞，制备条件培养基。随后以任何接种密度将细胞接种于静置培养。在一个实施方案中，细胞以大约1,000细胞/cm2至大约10,000细胞/cm2的密度接种。在再一个实施方案中，细胞以大约5,000细胞/cm2的密度接种。
细胞接种后，在大约5,000细胞/cm2时，通过递减培养基中的牛血清含量直至细胞仅在基础培养基中生长，使细胞脱离(wean)牛血清含量大约15％的标准培养基。牛血清可按约5至约60％递减。在一个实施方案中，牛血清以大约50％(例如，培养基中15％、7.5％、3.25％和0％牛血清)递减。使细胞在血清减少培养基中生长大约1至大约3代。在一个实施方案中，细胞在每种血清减少培养基中生长大约2代。在加入最终减少的牛血清培养基之前，以大约10,000细胞/cm2接种细胞。当向细胞加入基础培养基(0％牛血清)时，将细胞保持在培养基中不超过24小时。
随后从细胞分离条件培养基，并使用大约0.22微米或类似过滤器过滤。过滤器可经过灭菌或可不经过灭菌。随后使用大约5K截留过滤器或类似装置浓缩经过滤的条件培养基。当滞留于过滤器上的条件培养基已收集时，弃去滤液。
在另一实施方案中，按照美国专利公布号2008/0166328(其通过引用以其整体结合到本文中)(参见实施例)描述的方法，使分离的hUTC生长于微载体珠培养中，直至条件培养基制备完成。
可按细胞的任何群体倍增数制备条件培养基。在另一实施方案中，从大约群体倍增数20到大约群体倍增数44制备条件培养基。在再一个实施方案中，可按大约群体倍增数30制备条件培养基。
细胞接种后，以微载体珠培养中大约10,000细胞/cm2，向细胞加入标准培养基并培养约两天。随后，除去标准培养基并用基础培养基替代。或者，类似于静置培养，可使微载体珠培养脱离标准培养基。当向细胞加入基础培养基(0％牛血清)时，将细胞保持在培养基中不超过24小时。
随后从细胞分离条件培养基，并使用大约0.22微米或类似过滤器过滤。过滤器可经过灭菌或可不经过灭菌。随后使用大约5K截留过滤器或类似装置浓缩经过滤的条件培养基。当滞留于过滤器上的条件培养基已收集时，弃去滤液。
常规条件培养基，尽管富含源自培养的细胞类型的蛋白质，但还富含源自培养基中存在的牛血清的蛋白质。通过上述方法制备的条件培养基富含人蛋白质。牛蛋白的存在量低于标准表征方法例如SDS-PAGE和蛋白质印迹分析的检测量。由于后续的牛疾病和病毒传染风险降低以及异种免疫反应风险降低，条件培养基中牛蛋白低于检测量是有利的。
可通过从业人员已知的任何方式制备细胞裂解物。在一个实施方案中，例如通过使细胞破裂而没有后续的细胞部分分离来制备全细胞裂解物。在另一实施方案中，通过本领域公知的常规方法例如离心、过滤或类似方法将细胞膜部分与细胞的可溶部分分离。在体内使用可溶细胞部分导致在患者中使用的有益细胞内环境，而不触发排斥或不利应答。裂解细胞的方法是本领域熟知的且包括各种方式：冻融破裂、渗透破裂、机械破裂、酶破裂(例如透明质酸酶、分散酶、蛋白酶和核酸酶(例如，脱氧核糖核酸酶和核糖核酸酶))，或化学破裂(非离子去污剂例如，例如，烷基芳基聚醚醇(TRITONX-100)、辛基苯氧基聚乙氧基-乙醇(Rohm and Haas Philadelphia，PA)、BRIJ-35、聚乙氧基乙醇十二烷基醚(Atlas Chemical Co.，San Diego，CA)、聚山梨醇酯20(TWEEN 20)、聚乙氧基乙醇失水山梨醇单月桂酸酯(Rohm和Haas)、聚乙烯十二烷基醚(Rohm和Haas)；和离子去污剂例如，十二烷基硫酸钠、硫酸化高级脂族醇、包含7至22个碳原子的支链或非支链磺化烷烃和磺化烷基芳烃，或其组合。这种细胞裂解物可从在其生长培养基中的细胞直接制备并且因而包含分泌的生长因子等，或可从例如，在PBS或其它溶液中洗涤去除培养基的细胞制备。如果优选，那么洗涤过的细胞可按大于原始群密度的浓度重悬浮。从产后来源的细胞群制备的细胞裂解物可照原样使用，通过例如超滤或冻干进一步浓缩，或甚至干燥，部分纯化，与本领域已知的药学上可接受的载体或稀释剂组合、或与其它化合物例如生物制品例如药学上有用的蛋白质组合物组合。在一些实施方案中，例如通过离心从裂解物中移除细胞膜，以产生膜部分和上清部分。可依据本发明的方法使用膜部分或上清液。在一些实施方案中，通过用温和去污剂漂洗例如EDTA、CHAPS或两性离子去污剂处理除去细胞碎片。细胞裂解物可在体外或体内单独或例如连同细胞使用。细胞裂解物如果体内引入，则可在治疗位点局部引入或远距离引入，以向患者提供例如所需的细胞生长因子。
通过混合本发明PPDC产物与细胞或与一种或多种其它细胞类型的ECM或细胞部分，可调整蛋白质的量和/或比率。此外，生物活性物质例如蛋白质、生长因子和/或药物可以掺入PPDC产物制剂。示例性的生物活性物质包括促进愈合和组织修复的抗炎药剂和生长因子。细胞可与本发明的PPDC产物共同给予。
上述用于制备PPDC产物的方法优选在无菌条件下使用无菌材料进行。
给予的药剂或化合物
本发明的细胞或细胞衍生物可以在它们的给药制备中在任何阶段用多种药剂或因子孵育和/或处理。这些药剂或因子帮助促进细胞在体外和/或在接受受试者中存活、生长、分化和/或整合。或者，药剂或因子帮助减少斑形成、促进斑降解或帮助治疗阿尔茨海默病症状。对于细胞、细胞裂解物和条件培养基的给予，在剥离、限制性消化、解离、平板接种和/或产生细胞悬浮液期间的任何时间，可用另外的药剂或化合物孵育和/或处理细胞。
另外的药剂的给予可以在细胞或细胞衍生物给予前开始，可以在给予之时开始，或可以在给予后开始。另外的药剂的给予可以在持续时间方面受限(例如，可以由单次给予药剂组成)或可以具有延长的持续时间(例如，可以在长时间内重复给予受试者)。
在一些实施方案中，并行、序贯或与细胞群或细胞衍生物直接配制来给予一种或多种化合物或组分。可给予的其它组分的实例包括但不限于：(1)其它神经营养因子，例如脑衍生神经营养因子、睫状神经营养因子、神经营养蛋白-3、神经营养蛋白4/5、神经生长因子、酸性成纤维细胞生长因子、碱性成纤维细胞生长因子、血小板衍生生长因子、促甲状腺素释放激素、表皮生长因子、双调蛋白、转化生长因子、转化生长因子、胰岛素样生长因子；(2)选择的细胞外基质组分，例如一种或多种类型的本领域已知的胶原，和/或生长因子，富血小板血浆和药物(可选地，脐带组织来源的细胞可被基因工程改造以表达和产生生长因子)；(3)抗凋亡剂(例如，促红细胞生成素(EPO)、EPO模拟体(mimetibody)、血小板生成素、胰岛素样生长因子(IGF)-I、IGF-II、肝细胞生长因子、胱天蛋白酶抑制剂)；(4)抗炎化合物(例如，p38MAP激酶抑制剂、TGF-β抑制剂、抑制素、IL-6和IL-1抑制剂、吡嘧司特(Pemirolast)、曲尼司特(Tranilast)、Remicade(Centocor，Inc.，Malvern，PA)、西罗莫司(Sirolimus)和非类固醇消炎药(NSAIDS)(例如替波沙林(Tepoxalin)、托美汀(Tolmetin)和Suprafen)；(5)免疫抑制或免疫调节剂，例如钙依赖磷酸酶抑制剂、mTOR抑制剂、抗增殖剂、皮质类固醇和各种抗体；(6)局部麻醉剂；和(7)其它血管生成因子、血管生成药或肌再生(myoregenerative)或肌保护(myooprotective)因子或药物。
在一个实施方案中，这种药剂或因子可以在本发明的细胞或细胞衍生物已在其中给予后给予。在一些情况下，例如，这些药剂可以最小化或抵消由用于制备用于给药的细胞的程序引起的对细胞的有害作用，例如，细胞可经历细胞创伤和/或低氧，其导致活性氧类别(ROS)例如超氧化物自由基阴离子、过氧化氢和羟基自由基的产生。已知ROS不利地影响细胞功能，这最有可能是通过影响多种膜和细胞内组分，包括离子通道、膜脂质、转运机制例如Na/K ATP酶和Na/谷氨酸交换转运和胞质酶例如谷氨酰胺合酶。此外，ROS驱使膜脂质过氧化并因此可降低给予物中细胞的存活。
为了最小化和/或抵消在给药制备的过程中这些类型的氧化应激的不利作用，本发明的细胞可以在制备期间的任何阶段与抗氧化剂孵育和/或用其处理。这种抗氧化剂的例子包括酶抗氧化剂超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽过氧化物酶，和促进谷胱甘肽形成的药剂，例如N-乙酰半胱氨酸(NAC)。其它抗氧化剂包括拉扎洛依，例如，U-74389G和U-83836E，它们是设计以定位在细胞膜中并抑制脂质过氧化作用同时清除自由基的氨基类固醇。可以加入细胞培养物和细胞悬浮液的抗氧化剂的其它例子包括TGF，维生素E，维生素C，β胡萝卜素，和清除ROS、抑制ROS产生和/或抑制脂质过氧化作用的其它化合物。
抗氧化剂酶例如SOD清除ROS并防止超氧化物与氧化氮形成已显示对培养的细胞有毒性的过氧亚硝酸阴离子的反应。这些酶可以与如上文所述的本发明的细胞温育。将这些酶引入本发明的细胞制剂的另一方法是遗传修饰细胞以包含编码这种酶的核酸。然后，遗传修饰的细胞可以产生增强移植的细胞在接受受试者中存活、生长和分化的药剂。例如，可以用人Cu/Zn超氧化物歧化酶基因转染本发明的细胞，Cu/Zn超氧化物歧化酶是氧自由基解毒作用中的关键酶，其产生转染的细胞，所述细胞表达SOD并且因此有效解毒在组织制备和植入期间生成的ROS以从而增加给予的细胞存活。
此外，可以修饰体外细胞的氧化环境以抑制细胞氧化应激。例如，在给予前，可以将细胞环境中的氧分压从正常氧分压即大约150托(torr)O2减少为降低的氧分压即38托O2(约5％O2)。该减少氧化应激的方法可以与用上述抗氧化剂中的一种或多种细胞治疗组合。
可以将NOS抑制剂例如神经节苷脂、FK506和环孢菌素A加入细胞制剂以抑制NO的产生，从而减少过氧亚硝酸和其衍生物的产生。超氧化物歧化酶是可以减少NO超量产生的不利作用和其介导的毒性作用的另一药剂。
为了防止创伤及其有关的不利作用，例如，通过制备用于植入的本发明的细胞诱导的膜过氧化、自由基诱导的细胞损害，可以用编码抗凋亡基因产物例如bcl-2和/或crmA基因产物的核酸转染本发明的细胞。进一步地，可以用上调这些基因产物的表达或功能的药剂处理本发明转染的细胞，例如，上调bcl-2表达的TGF1和TGF3、神经生长因子(NGF)和血小板衍生生长因子(PDGF)。进一步地，也可以用编码这些因子的核酸转染本发明的细胞。
为了进一步促进本发明的细胞在接受受试者中的存活，细胞可以连同血管生成剂给予或用编码血管生成剂的核酸转染。在给予时，血管生成剂促进血管向细胞群中的向内生长。作为这种血管向内生长的结果，给予的细胞得到足够的营养物以在接受受试者中增殖和存活。许多生长因子表现血管生成活性。例如，血管内皮生长因子(VEGF)、PDGF、酸性和碱性成纤维细胞生长因子(FGF)、表皮生长因子(EGF)和K-FGF拥有血管生成活性并且可以在本发明的方法中使用以促进血管向内生长到本发明给予的细胞中。
可以将其它因子例如促成神经发育、神经纤维形成和神经元维持的神经营养因子在给药制备期间体外加入本发明细胞中，和/或加入细胞悬浮液本身中以用于连同本发明的细胞引入到单个受试者中。本发明的细胞也可以进行遗传修饰以产生如本文所描述的这种神经营养因子。加入本发明的细胞的神经营养因子可以基于待给予的细胞上的其受体的存在情况来选择。例如，中脑细胞拥有下列神经营养因子的受体：神经胶质细胞系衍生神经营养因子(GDNF)，其促进中脑细胞的存活、形态学分化和高亲和力多巴胺摄取；脑衍生神经营养因子(BDNF)；睫状神经营养因子(CNTF)，其防止轴突切断术(axotomy)诱导的中脑细胞变性；中期因子，其促进中脑细胞的存活和分化；EGF，其增加中脑细胞的存活和成熟；胰岛素样生长因子I和II和胰岛素；酸性FGF；碱性FGF，其诱导带神经突细胞数目以及它们的纤维网络的程度显著增加；神经营养蛋白-3(NT-3)和神经营养蛋白4/5(NT-4/5)；以及转化生长因子-2(TGF2)和转化生长因子-3(TGF3)。
促进神经细胞存活的神经营养因子可以基于细胞上受体的存在情况来选择。碱性FGF、BDNF、NT-3和NT-4/5的受体可以在某些神经细胞上发现。因而，在一个实施方案中，可以用编码这些因子中的一种或多种的核酸转染本发明的细胞。在另一实施方案中，在给予前可以将这些因子中的一种或多种加入神经细胞制剂。这些神经营养因子增强本发明的细胞在接受受试者中的存活。类似地，表现皮层细胞特异性并且因而可以在移植入接受受试者中时用于促进这种细胞存活的神经营养因子包括神经生长因子(NGF)，其防止例如轴突切断术的前脑胆碱能神经元的萎缩；BDNF，以及NT-3和NT-4/5。
在另一实施方案中，本文描述的神经营养因子可以与其它化合物例如神经递质共同或联合使用，以增大它们的神经营养作用。此外，预期本文描述的神经营养因子的各种组合可以协同作用，并且因此可以共同应用以促进本发明给予的细胞的存活。
某些药物也拥有神经营养活性。这种药物的例子包括FK506和环孢菌素A，其阻断作用于N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)受体的谷氨酸引起的神经毒性，例如，通过增加NOS的磷酸化水平。由于磷酸化NOS抑制其催化活性，这些药物有效地降低NO形成和防止NMDA对这些细胞的神经毒性作用。拥有神经营养活性且可以在本发明中使用的其它药物是和与FK506和/或环孢菌素A相同的结合蛋白结合、并因此介导类似的神经保护作用的那些小分子。在一个实施方案中，除治疗慢性疼痛和/或痉挛状态的细胞群之外还将这些药物给予受试者。
在一个实施方案中，上述药剂和因子的一种或多种的组合可以用于在将细胞给予接受受试者之前或之后促进本发明的细胞的存活。例如，可以将本发明的细胞与本文描述的药剂和因子的一种或多种接触以促进细胞在体外和/或体内存活。在另一实施方案中，可以用本文描述的药剂和因子的一种或多种的核酸转染本发明的细胞，并且还用本文描述的药剂和因子的一种或多种接触本发明的细胞。另外，尽管本文描述的神经营养因子中的许多特异地针对于特定细胞类型，但这些因子与这种细胞类型的联系不排除该因子与不同细胞类型联用。
用本文描述的药剂或因子对本发明的细胞的治疗可以同时或序贯进行。此外，一些实施方案包括使用一种或多种药剂或因子，其与细胞的给予并行或序贯注射或直接配制成一种或多种药学上可接受的载体。
在一个实施方案中，在给予前用电刺激预处理细胞。将hUTC暴露于电场可通过增加hUTC的增殖和生存力而提高靶组织的修复。电刺激还可增强营养因子的分泌、细胞外基质(ECM)蛋白的表达和植入hUTC的移植。此外，电刺激可动员或诱导在植入位点的驻留细胞起始修复过程。
可在不同时间长度通过应用电场使用单次剂量、持续剂量或多次剂量电刺激hUTC。刺激可在hUTC植入前或植入后完成。可想到的是电刺激的不同参数将用于优化hUTC的作用。电刺激还可应用于生长于三维环境或生物反应器的细胞或组织。
在本发明的另一方面，细胞或组织糜(minced tissue)可与微电流源结合。微电流偶(microcurrent comple)以作为能量源的锌和铜颗粒(0.01微米-0.1微米)或其它能够产生微电流的元素颗粒的电偶递送到细胞。或者，铜和锌或其它元素的电偶可掺入聚合物微载体/支架且细胞可与微载体/支架结合用于移植。
若医学专业人员使用的细胞群为产后来源的细胞，则用同种异体甚至异种细胞的给予在一些情况下可被耐受，因为这些细胞已显示在混合淋巴细胞反应中不刺激同种异体PBMC。因此，认为细胞本身提供免疫抑制剂作用，从而防止给予的细胞群的宿主排斥。在这种情况下，在细胞疗法(cell therapy)期间药理学免疫抑制可以不是必需的。
然而，在其它情况下，在起始细胞疗法前，可需要或适宜药理学地免疫抑制患者。如上所述，这可通过使用全身或局部免疫抑制剂实现，或其可通过在被囊化设备中递送细胞实现。用于降低或消除对给予的细胞的免疫应答的这些和其它方式是本领域公知的。作为替代，如上所述，可将细胞群遗传修饰以降低它们的免疫原性。
此外，给予的细胞群在活患者中的存活可以通过使用多种扫描技术测定，例如，计算机控制轴向X线断层摄影术(CAT或CT)扫描、磁共振成像(MRI)或正电子成像术(PET)扫描。细胞存活的测定也可以在死后通过取出神经组织和外围组织、并视觉或通过显微镜检测它进行。可选地，细胞可以用特异于神经组织或其周围组织的染料处理。给予的细胞还可以通过在先掺入示踪染料进行鉴定，例如罗丹明或荧光素标记的微球、坚牢蓝、高铁微粒(ferricmicroparticle)、双苯甲酰胺或遗传引入的报道基因产物例如β-半乳糖苷酶或β-葡糖醛酸糖苷酶。
在另一实施方案中，治疗阿尔茨海默病的细胞群的给予可与用于治疗阿尔茨海默病或阿尔茨海默病症状的传统药物的给予结合。在某些受试者中，这种结合治疗可导致症状的最佳改善。还可与细胞群给予的药物包括用于治疗以下症状的任何药物：健忘、注意力丧失、体重减轻和运动功能问题、听觉丧失、阅读或语言能力下降、意识错乱、判断力弱、精神激动、病理性退隐、幻觉、癫痫发作、帕金森型特征、肌紧张度降低、肌阵挛、失禁、缄默症和精神障碍。
用于给予细胞群或本文描述的任何其它治疗或药物组合物的剂型和方案依照良好医学规范(good medical practice)考虑单个患者的状况开发，例如，神经损伤或损害的性质和程度、年龄、性别、体重和一般医学状况、和医学专业人员已知的其它因素。因而，待给予患者的药物组合物的有效量通过本领域已知的这些考虑确定。
在另一实施方案中，除本发明细胞之外还可以给予抑制受试者中T细胞活性的药剂。如本文使用的，抑制T细胞活性的药剂被定义为这样的药剂，其导致T细胞在受试者中除去或破坏，或抑制受试者中的T细胞功能，因而T细胞仍可在受试者中存在但处于非功能状态，以至于它们不能增殖或引起或实施效应器功能，例如细胞因子产生、细胞毒性等。术语″T细胞″包括成熟的外周血T淋巴细胞。抑制T细胞活性的药剂也可抑制未成熟T细胞的活性或成熟。
药学上可接受的载体
进一步地，细胞群可以在生理相容性载体例如缓冲盐水溶液中给予。本公开内容中讨论的药学上可接受的载体和稀释剂包括但不限于盐水、水性缓冲液、溶剂和/或分散介质。这种载体和稀释剂的使用是本领域公知的。其它例子包括液体培养基，例如，Dulbeccos改良Eagle′s培养基(DMEM)、无菌盐水、无菌磷酸缓冲盐水、Leibovitz′s培养基(L15，Invitrogen，Carlsbad，CA)、无菌水中的葡萄糖、和任何其它生理上可接受的液体。溶液优选地是无菌和流动的，达到存在容易的可注射性的程度。优选地，溶液在制造和储存条件下是稳定的，并且通过使用例如对羟基苯甲酸酯、氯代丁醇、酚、抗坏血酸、硫柳汞(thimerosol)等抵抗微生物例如细菌和真菌的污染作用保存。本发明溶液可以通过使用药学上可接受的载体或稀释剂并且按需要使用上文列举的其它成分，然后进行过滤灭菌，并且然后掺入如本文所描述的细胞群制备。
本发明药物组合物可包括由用药学上可接受的载体或介质配制的细胞制成的制剂。合适的药学上可接受的载体包括本公开内容中论述的任一种，包括但不限于：水、盐溶液(例如林格液)、醇、油、明胶、聚乙烯吡咯烷、碳水化合物例如乳糖、直链淀粉或淀粉、脂肪酸酯、和羟甲基纤维素。这种制剂可以是灭菌的，并且如果需要，则与辅助剂例如润滑剂、防腐剂、稳定剂、润湿剂、乳化剂、用于影响渗透压的盐、缓冲液和着色剂混合。适于在本发明中使用的药物载体是本领域已知的和在例如Pharmaceutical Sciences(第17版，Mack Pub.Co.，Easton，PA)和WO 96/05309中描述的，所述文献通过引用以其整体结合到本文中。
在一个优选实施方案中，细胞群在人造CSF中给予。与本发明相容的人造CSF包括含有关于递送到脑的适当试剂稳定性、溶解度和药代动力学的任何人造CSF。一种示例性的CSF溶液包含NaCl、KCl、CaCl2x 2H2O和MgCl2x 6H2O，每500ml ddH2O中，近似测定值分别为大约8.66g、0.224g、0.204g和0.163g。另一示例性的CSF溶液包含Na2HPO4x 7H2O和NaH2PO4x H2O，每500ml ddH2O中，近似测定值分别为大约0.214和0.027。另一种示例性的CSF溶液包含比率(以mM为单位)大约187.5Na∶2.6K∶1.1Ca∶1.1Mg∶0.8P∶119Cl∶23.3HCO3。在一个优选实施方案中，CSF溶液模仿真实的CSF电解质浓度，并因而具有以mM表示的近似浓度154Na∶3.0K∶1.3Ca∶0.9Ca∶0.9Mg∶0.4P∶136Cl∶24.1HCO3。
还可制备半固体或固体载体中的细胞并在神经斑形成的位点手术植入。将认识到，液体组合物还可通过手术程序给予。在特定实施方案中，半固体或固体药物组合物可包括半透凝胶、基质、细胞支架等，其可为非生物可降解的或生物可降解的。例如，在某些实施方案中，可需要或适宜将外源细胞与它们的环境隔离，而使得细胞能够分泌和递送生物分子(例如，神经营养蛋白因子)至周围细胞。在这些实施方案中，细胞可配制为包含产后来源的细胞的自主植入物(autonomous implant)，所述细胞被使给予的细胞与宿主组织物理上隔离的非可降解的选择性渗透屏障包绕。这种植入物有时被称为″免疫保护的″，这是因为它们具有在不存在药理学诱导的免疫抑制下防止免疫细胞和大分子杀死给予的细胞的能力。在其它实施方案中，不同种类的可降解凝胶和网络用于本发明药物组合物。例如，特别合适的可降解材料包括本公开内容中讨论的任一种，包括但不限于，生物相容性聚合物，例如聚(乳酸)、乳酸-乙醇酸共聚物、甲基纤维素、透明质酸、胶原等。
在另一实施方案中，一种或多种水凝胶用于药物组合物。一种或多种水凝胶可包括胶原、去端肽胶原、血纤蛋白构建体、亲水乙烯基和丙烯酸聚合物、多糖例如藻酸钙、和聚(环氧乙烷)。进一步地，水凝胶可由聚(甲基丙烯酸2-羟乙酯)、聚(丙烯酸)、自装配肽(例如，RAD 16)、聚(甲基丙烯酸)、聚(N-乙烯基-2-吡咯烷酮)、聚(乙烯醇)和它们与彼此或与疏水单体例如甲基丙烯酸甲酯、乙酸乙烯酯等的共聚物组成。还优选的是包含大聚(环氧乙烷)嵌段的亲水聚氨基甲酸酯。其它优选的材料包括包含互穿聚合物网络的水凝胶，其可通过加聚或通过缩聚形成，其组分可包括亲水和疏水单体例如刚刚列举的那些。原位形成的可降解网络还适于在本发明中使用(参见例如，Anseth，KS等人.(2002)J.Controlled Release 78：199-209；Wang，D.等人，(2003)Biomaterials 24：3969-3980；美国专利公开2002/0022676，其通过引用以其整体结合到本文中)。这些原位形成材料被配制为适于注射的流体，然后可通过多种方式例如温度、pH变化和原位或体内暴露于光被诱导以形成水凝胶。
在其它实施方案中，药物组合物包含由天然、修饰的天然或合成的生物可降解聚合物制成的生物相容性基质，所述聚合物包括均聚物、共聚物和嵌段聚合物、以及其组合。合适的生物可降解聚合物或聚合物种类的例子包括本公开内容中论述的任何生物可降解聚合物，包括但不限于，血纤蛋白，I、II、III、IV和V型胶原，弹性蛋白，明胶，玻连蛋白，纤连蛋白，层粘连蛋白，凝血酶，聚(氨基酸)，氧化纤维素，原弹性蛋白，丝，核糖核酸，脱氧核糖核酸；蛋白质，多核苷酸，阿拉伯树胶，重建基底膜基质，淀粉，葡聚糖，藻酸盐，hyaluron，壳多糖，壳聚糖，琼脂糖，多糖，透明质酸，聚(乳酸)，聚(乙醇酸)，聚乙二醇，去细胞化的(decellularized)组织，自装配肽，多肽，糖胺聚糖，它们的衍生物和混合物。合适的聚合物还包括可以由L(+)和D(-)聚合物形成的聚(丙交酯)(PLA)、聚羟基丁酸酯、聚氨基甲酸酯、聚磷腈、聚(乙二醇)-聚(丙交酯-共聚-乙交酯)共聚物、可降解聚氰基丙烯酸酯和可降解聚氨基甲酸酯。对于乙醇酸和乳酸，中间环状二聚体可在聚合前制备和纯化。这些中间二聚体分别被称为乙交酯和丙交酯。
其它有用的生物可降解聚合物或聚合物种类非限制性地包括，脂族聚酯、聚(亚烷基草酸酯)、酪氨酸衍生的聚碳酸酯、聚亚氨基碳酸酯、聚原酸酯、聚氧杂酯(polyoxaesters)、聚酰胺酯、含有胺基团的聚氧杂酯、聚(富马酸亚丙酯)、聚富马酸酯、聚二氧杂环己酮、聚碳酸酯、聚草酸酯、聚(α-羟基酸)、聚(酯)、聚氨基甲酸酯、聚酯型氨基甲酸酯、聚醚氨酯、聚酐、聚乙酸酯、聚己内酯、聚(原酸酯)、聚氨基酸、聚酰胺和它们的掺和物和共聚物。另外的有用的生物可降解聚合物非限制性地包括L-和D-乳酸的定向聚合物、双(对-羧基苯氧基)丙烷和癸二酸的共聚物、癸二酸共聚物、己内酯的共聚物、聚(乳酸)/聚(乙醇酸)/聚乙二醇共聚物、聚氨基甲酸酯和聚(乳酸)的共聚物、α-氨基酸的共聚物、α-氨基酸和己酸的共聚物、α-苄基谷氨酸酯和聚乙二醇的共聚物、琥珀酸酯和聚(乙二醇)的共聚物、聚磷腈、聚(羟基链烷酸酯)和它们的混合物。还考虑二元和三元系统。
通常地，希望将用于形成基质的材料进行配置以使其：具有适于预期应用的机械性质；保持足够地完整，直至组织已向内生长和愈合；不引发炎症或毒性反应；履行其目的后在体内代谢；容易加工成待形成的希望的最终产物；展示可接受的保存期限；和容易灭菌。
在另一实施方案中，细胞群通过使用支架给予。支架的组成、形状和孔隙率可为上文描述的任一种。这些三维生物材料包含附着于支架、在支架中分散或掺入在支架中截留的细胞外基质的活细胞。一旦植入到身体的靶区域，这些植入物就与宿主组织整合，其中给予的细胞逐渐建立。可在本发明中使用的支架的非限制性例子包括纺织结构，例如编织物(weave)、针织物(knit)、编带、网状物、非编织物和经编针织物；多孔泡沫、半多孔泡沫、穿孔膜或片、微粒、珠、和球及为上述结构的组合的复合结构。非编织的垫子可例如使用包含乙醇酸和乳酸(PGA/PLA)的合成可吸收共聚物的纤维形成，其以商品名称VICRYL缝线出售(Ethicon，Inc.，Somerville，NJ)。还可利用由例如冷冻-干燥或冻干方法形成的、由例如聚(ε-己内酯)/聚(乙醇酸)(PCL/PGA)共聚物组成的泡沫，如美国专利号6,355,699(Bruder等，其通过引用以其整体结合到本文中)中论述的。在另一实施方案中，框架是毡，它可由从生物可吸收的材料制成的复丝纱(multifilament yarn)组成。使用标准的纺织工艺技术将所述纱制成毡，所述技术由卷曲、切割、梳理和针刺组成。在另一实施方案中，可将细胞接种于泡沫支架上，所述支架可用作复合结构。在上述实施方案中的许多中，框架可模压成有用的形状，例如用于填充组织空隙。另外，将认识到，细胞群可在预先形成的非可降解手术或可植入设备上培养。
在另一实施方案中，在给予前，细胞群在一种或多种因子存在下或在刺激干细胞分化的条件下孵育。这种因子是本领域已知的，并且技术人员将认识到，用于分化的合适条件的确定可以用常规实验完成。这种条件的最优化可以通过统计学实验设计和分析完成；例如反应表面方法学允许同时最优化多个变量，例如在生物学培养中。目前优选的因子包括但不限于生长或营养因子、趋化因子、细胞因子、细胞产物、脱甲基化剂和目前已知或稍后确定为刺激分化的其它刺激物。可选地，给予给患者的组合物包括具有刺激细胞分化的一种或多种因子的细胞群，其中细胞分化在体外在组织位点处发生。
干细胞和产后来源的细胞，包括hUTC
本发明的优选hUTC的分离和表征的描述可参考以整体结合到本文中的美国专利公开2005/0032209、2005/0058631和2005/0054098。
在一些实施方案中，细胞是干细胞。如上所述，干细胞是通过单细胞自我更新和分化以产生后代细胞的能力限定的未分化细胞，包括自我更新祖细胞、非更新祖细胞和终末分化细胞。
在一个优选的实施方案中，干细胞是产后来源的细胞。为了分离产后来源的细胞，哺乳动物胎盘或脐带在足月或早产妊娠终止时或在足月或早产妊娠终止后不久，例如在胞衣娩出后回收。脐带组织可从出生位点转运到实验室的无菌容器例如瓶、烧杯、培养皿或袋中。容器可含有溶液或培养基，包括但不限于盐溶液，例如Dulbecco′s改良Eagle′s培养基(DMEM)(也称为Dulbecco极限必需培养基)或磷酸缓冲盐水(PBS)，或用于转运用于给予的器官的任何溶液，例如University of Wisconsin溶液或全氟化学溶液。一种或多种抗生素和/或抗真菌剂，例如但不限于青霉素、链霉素、两性霉素B、庆大霉素和制霉菌素可加入培养基或缓冲液中。产后组织可用抗凝剂溶液例如含肝素溶液漂洗。优选的是在细胞提取前将组织保持在约4至10℃。甚至更优选的是在细胞提取前不冷冻组织。
产后组织来源的细胞优选地在无菌环境下分离。脐带可通过本领域已知的方式从胎盘分离。可选地，脐带和胎盘不经分离而使用。优选地从产后组织除去血液和碎片，随后分离产后来源的细胞。例如，可用缓冲溶液洗涤产后组织，包括但不限于磷酸缓冲盐水。洗涤缓冲液还可包含一种或多种抗真菌和/或抗生素药剂，包括但不限于青霉素、链霉素、两性霉素B、庆大霉素和制霉菌素。
通过机械力(切碎或剪切力)解聚包括全部胎盘或其片段或部分的产后组织。分离程序也可利用酶促消化过程。已知许多酶在本领域中用于从复合组织基质分离各别细胞以促进在培养物中生长。消化酶范围为弱消化(例如，脱氧核糖核酸酶和中性蛋白酶，分散酶)至强消化(例如木瓜蛋白酶和胰蛋白酶)且是市售的。与此相容的酶的非穷尽性列举包括粘液溶解酶活性、金属蛋白酶、中性蛋白酶、丝氨酸蛋白酶(例如，胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶或弹性蛋白酶)和脱氧核糖核酸酶。目前优选的是选自金属蛋白酶、中性蛋白酶和粘液溶解活性的酶活性。例如，已知胶原酶对于从组织分离各种细胞是有用的。脱氧核糖核酸酶可以消化单链DNA并且可以最小化分离期间的细胞-团块化。优选的方法涉及用例如胶原酶和分散酶，或胶原酶、分散酶和透明质酸酶的酶促处理。在一些实施方案中，胶原酶和中性蛋白酶、分散酶的混合物用于解离步骤。更具体的实施方案在来自溶组织梭菌(Clostridium histolyticum)的一种胶原酶存在下，或在蛋白酶活性、分散酶和嗜热菌蛋白酶存在下进行消化。其它的实施方案用胶原酶和分散酶两者活性进行消化。还利用的方法包括除胶原酶和分散酶活性之外还用透明质酸酶活性消化。技术人员将认识到，在本领域已知许多这种酶处理用于从各种组织来源分离细胞。例如，以商品名LIBERASETM(Roche，Indianapolis，IN)销售的用于组织解离的酶掺和物适合用于本方法。其它来源的酶是公知的，且技术人员还可从天然来源直接获得此类酶。技术人员还被充分装备以评估新的或另外的酶或酶组合在分离本发明的细胞中的效用。优选的酶处理为约0.5、1、1.5或2小时长或更长。在其它优选的实施方案中，在解离步骤的酶处理过程中，于37℃孵育组织。
在本发明的一些实施方案中，产后组织分离成包含该组织各个方面的部分，例如胎盘的新生儿方面、新生儿/母本方面和母本方面。随后按照本文描述的方法通过机械和/或酶解离将分离的部分解离。新生儿谱系或母源谱系的细胞可通过本领域任何公知方式鉴定，例如Y染色体的核型分析或原位杂交。
用于选择最适当的培养基、培养基制备和细胞培养技术的方法是本领域熟知的，并且在多种来源中描述，包括Doyle等人，(主编)，1995，CELL & TISSUE CULTURE：LABORATORY PROCEDURES，John Wiley & Sons，Chichester；和Ho和Wang(主编)，1991，ANIMAL CELL BIOREACTORS，Butterworth-Heinemann，Boston，其通过引用并入到本文中。
在培养分离的细胞或组织片段足够的时间段之后，产后来源的细胞将向外生长，这是由于从产后组织的迁移或细胞分裂，或两者。在本发明的一些实施方案中，将产后来源的细胞传代或移至分开的培养容器中，所述培养容器含有与最初使用的相同或不同类型的新鲜培养基，在所述培养容器中细胞群可进行有丝分裂扩增。本发明的细胞可在介于0代和衰老之间的任何点使用。优选将细胞传代约3至约25次，更优选传代约4至约12次，并优选传代10或11次。可进行克隆和/或亚克隆以证实已经分离到细胞克隆群。
在本发明的一些方面，将产后组织中存在的不同细胞类型分级分离为亚群，从所述亚群中可以分离产后来源的细胞。分级分离或选择可使用用于细胞分离的标准技术来完成，包括但不限于，酶促处理以将产后组织解离成其组分细胞，然后是具体细胞类型的克隆和选择，包括但不限于基于形态学和/或生物化学标记的选择；希望的细胞的选择性生长(阳性选择)，不需要的细胞的选择性破坏(阴性选择)；基于在混合群中有差别的细胞可凝集性的分离，例如，采用大豆凝集素；冻融程序；在混合群中有差别的细胞粘附性质；过滤；常规的和区带离心；离心淘析(逆流(counter-streaming)离心)；单位重力分离；逆流分布；电泳；和荧光激活细胞分选术(FACS)。合适的克隆选择和细胞分离技术参见Freshney，1994，CULTURE OFANIMAL CELLS：A MANUAL OF BASIC TECHNIQUES，第三版，Wiley-Liss，Inc.，New York，其通过引用以其整体结合到本文中。
按需要改变培养基，例如，通过用移液器从皿中小心地吸出培养基并补充以新鲜培养基。继续温育，直至足够数目或密度的细胞在皿中积累。可除去原始的外植组织部分，并且通过使用标准技术或使用细胞刮棒，胰蛋白酶消化剩余的细胞。胰蛋白酶消化之后，收集细胞，移至新鲜培养基并如上孵育。在一些实施方案中，培养基在胰蛋白酶消化后大约24小时至少更换1次，以除去任何漂浮细胞。认为在培养物中剩余的细胞是产后来源的细胞。
产后来源的细胞可被冷藏。因此，在下文更详细地描述的优选的实施方案中，用于自体转移(对于母亲或孩子)的产后来源的细胞可来源自孩子出生后的适当的产后组织，然后进行冷藏以便在随后需要它们用于给予的情况下是可用的。
产后来源的细胞可通过下列进行表征，例如，通过生长特征(例如，群体倍增能力、倍增时间、传代至衰老)、核型分析(例如，正常核型、母源谱系或新生儿谱系)、流式细胞术(例如，FACS分析)、免疫组织化学和/或免疫细胞化学(例如，用于检测表位)、基因表达概况(例如，基因芯片阵列、聚合酶链反应(例如，逆转录酶PCR、实时PCR和常规PCR))、蛋白质阵列、蛋白质分泌(例如，通过血浆凝固测定或PDC条件培养基的分析，例如通过酶联免疫吸附测定(ELISA)、混合淋巴细胞反应(例如，作为PBMC的刺激的测量)，和/或本领域已知的其它方法。
源自胎盘组织的产后来源的细胞的例子保藏在美国典型培养物保藏中心(ATCC，Manassas，VA)并指定为如下ATCC登记号：(1)株名称PLA 071003(P8)保藏于2004年6月15日并指定为登记号PTA-6074；(2)株名称PLA 071003(P11)保藏于2004年6月15日并指定为登记号PTA-6075；和(3)株名称PLA 071003(P16)保藏于2004年6月16日并指定为登记号PTA-6079。源自脐组织的产后来源的细胞的例子于2004年6月10日保藏在美国典型培养物保藏中心并指定为如下ATCC登记号：(1)株名称UMB 022803(P7)指定为登记号PTA-6067；和(2)株名称UMB 022803(P17)指定为登记号PTA-6068。
在各种实施方案中，产后来源的细胞拥有下列生长特征中的一个或更多：(1)它们在培养物中需要L-缬氨酸用于生长；(2)它们能够在含约5％至至少约20％的氧的气氛中生长；(3)它们在达到衰老之前具有在培养物中至少约倍增40次的潜能；和(4)它们在包被或未包被的组织培养容器中贴壁和扩增，其中所述包被组织培养容器包含明胶、层粘连蛋白、胶原、聚鸟氨酸、玻连蛋白或纤连蛋白被层。
在某些实施方案中，产后来源的细胞拥有正常核型，所述核型随着细胞传代保持。核型分析特别可用于鉴定并从源自胎盘的母细胞中区分新生儿细胞。用于核型分析的方法是可用的并且是本领域的技术人员已知的。
在其它实施方案中，产后来源的细胞可通过某些蛋白质的产生表征，包括：(1)组织因子、波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白中至少一种的产生；和(2)CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α、PD-L2和HLA-A、B、C细胞表面标记中至少一种的产生，如通过流式细胞术检测的。在其它实施方案中，产后来源的细胞可通过缺乏下列至少一种的产生表征：CD31、CD34、CD45、CD80、CD86、CD117、CD141、CD178、B7-H2、HLA-G和HLA-DR、DP、DQ细胞表面标记，如通过流式细胞术检测的。特别优选的是产生组织因子、波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白中至少两种的细胞。更优选的是产生蛋白质组织因子、波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白中所有三种的那些细胞。
在其它实施方案中，产后来源的细胞可通过相对于作为成纤维细胞、间充质干细胞或髂嵴骨髓细胞的人细胞的基因表达表征，所述表达对于编码白细胞介素8、浆膜蛋白(reticulon)1、趋化因子(C-X-C基序)配体1(黑色素瘤(melonoma)生长刺激活性，α)、趋化因子(C-X-C基序)配体6(粒细胞趋化蛋白2)、趋化因子(C-X-C基序)配体3、肿瘤坏死因子、α-诱导的蛋白3、C-型凝集素超家族成员2、Wilms瘤1、醛脱氢酶1家族成员A2、肾素、氧化的低密度脂蛋白受体1、人(Homo sapiens)克隆IMAGE:4179671、蛋白激酶Cζ、假设的蛋白质DKFZp564F013、卵巢癌中下调的1和/或来自克隆DKFZp547k1113的人基因中至少一种的基因增加。
在再其它实施方案中，产后来源的细胞可通过相对于作为成纤维细胞、间充质干细胞或髂嵴骨髓细胞的人细胞的基因表达表征，所述表达对于编码下列中至少一种的基因降低：身材矮小症同源框2、热休克27kDa蛋白2、趋化因子(C-X-C基序)配体12(基质细胞来源的因子1)、弹性蛋白(主动脉瓣上狭窄，Williams-Beuren综合征)、人mRNA、cDNA DKFZp586M2022(来自克隆KFZp586M2022)、间充质同源框2(生长停滞特异的同源框)、sineoculis同源框同源物1(果蝇属(Drosophila))、晶体蛋白αB、形态发生的散乱相关活化剂2、DKFZP586B2420蛋白、类似于neuralin 1、四连蛋白(纤溶酶原结合蛋白)、src同源三(SH3)和富含半胱氨酸结构域、胆固醇25-羟化酶、runt-相关的转录因子3、白细胞介素11受体α、前胶原C-内肽酶增强子、frizzled同源物7(果蝇属)、假设的基因BC008967、类型VIII α1胶原、生腱蛋白C(hexabrachion)、易洛魁族人同源框蛋白5、hephaestin、整联蛋白β8、突触小泡糖蛋白2、成神经细胞瘤致瘤性的抑制1、胰岛素样生长因子结合蛋白2(36kDa)、人cDNA FLJ12280 fis克隆MAMMA1001744、细胞因子受体样因子1、钾中间的/小的电导钙-活化通道亚家族N成员4、整联蛋白β7、含PDZ-结合基序的转录辅激活物(TAZ)、sine oculis同源框同源物2(果蝇属)、KIAA1034蛋白、突触小泡相关膜蛋白5(myobrevin)、含EGF的纤蛋白(fibulin)-样细胞外基质蛋白1、早期生长应答3、远端较小的(distal-less)同源框5、假设的蛋白FLJ20373、醛酮还原酶家族1成员C3(3-α羟基类固醇脱氢酶类型II)、双糖链蛋白聚糖、含PDZ结合基序的转录辅激活物(TAZ)、纤连蛋白1、脑啡肽原、整联蛋白β-样1(含EGF-样重复结构域)、人mRNA全长插入片段cDNA克隆EUROIMAGE 1968422、EphA3、KIAA0367蛋白、利尿钠肽受体C/鸟苷酸环化酶C(心房钠尿肽受体C)、假设的蛋白FLJ14054、人mRNA、cDNA DKFZp564B222(来自克隆KFZp564B222)、BCL2/腺病毒E1B 19kDa相互作用蛋白3-样、AE结合蛋白1和/或细胞色素c氧化酶亚基VIIa多肽1(肌肉)。
在其它实施方案中，产后来源的细胞可通过下列至少一种的分泌表征：MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、FGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1a、RANTES和TIMP1。在一些实施方案中，产后来源的细胞可通过下列至少一种的分泌的缺乏表征：TGF-β2、ANG2、PDGFbb、MIP1b、I309、MDC和VEGF，如通过ELISA检测的。
在一些优选的实施方案中，产后来源的细胞来源于基本上不含血液的脐带组织，能够在培养中自我更新和扩增，需要L-缬氨酸用于生长，可以在至少约5％氧中生长，并且包含下列特征中的至少一种：在培养物中至少约40次倍增的潜能；在未包被的组织培养容器或包被有明胶、层粘连蛋白、胶原、聚鸟氨酸、玻连蛋白或纤连蛋白的组织培养容器上贴壁和扩增的能力；波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白的产生；CD10、CD13、CD44、CD73和CD90的产生；和基因的表达，其相对于作为成纤维细胞、间充质干细胞或髂嵴骨髓细胞的人细胞对于编码白细胞介素8和浆膜蛋白1的基因增加。在一些实施方案中，这种产后来源的细胞不产生CD45和CD117。
在优选的实施方案中，细胞包括上文列出的生长、蛋白质/表面标记产生、基因表达或物质分泌特征中的两种或更多种。更优选的是包括三、四、五或更多种所述特征的那些细胞。还更优选的是包括六、七、八或更多种所述特征的产后来源的细胞。目前仍更优选的是包括所有上述特征的那些细胞。
在目前在几个方面中优选用于本发明的细胞中的是，具有上述特征的产后来源的细胞，且更特别的是那些细胞，其中细胞具有正常核型并随着传代保持正常核型，并且此外，其中细胞表达标记CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C中的每一种，并且其中细胞产生免疫可检测的对应于所列标记的蛋白。还更优选的是除前述外不产生对应于标记CD31、CD34、CD45、CD117、CD141或HLA-DR、DP、DQ中任一种的蛋白质的那些细胞，如通过流式细胞术检测的。
具有沿着导致各种表型的系分化的潜能的某些细胞是不稳定的，并且因而可以自发地分化。目前优选用于本发明的是不自发分化的细胞，例如沿着成肌细胞、骨骼肌、血管平滑肌、周细胞、成血管(hemangiogenic)、血管生成(angiogenic)、血管发生(vasculogenic)或血管内皮系。优选的细胞，当在生长培养基中生长时，就在它们表面上产生的细胞标记以及就各种基因的表达模式而言，基本是稳定的，例如使用以商品名GENECHIP(Affymetrix，Inc.，Santa Clara，CA)出售的医学诊断测试测定的。所述细胞例如在传代期间和经过多个群体倍增在它们的表面标记特征方面基本保持恒定。
本发明的另一个方面特别描述了上文所述的产后来源的细胞群的使用。在一些实施方案中，细胞群是异质的。本发明的异质细胞群可包含至少约5％、10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％或95％的本发明产后来源的细胞。本发明的异质细胞群可进一步包含干细胞或其它祖细胞，例如成肌细胞或其它肌祖细胞、成血管细胞或血管前体细胞；或其可进一步包含完全分化的神经细胞。在一些实施方案中，群体基本上是同质的，即，包含基本上仅仅产后来源的细胞(优选地至少约96％、97％、98％、99％或更多的产后来源的细胞)。本发明的同质细胞群可包含脐或胎盘来源的细胞。脐来源的细胞的同质群优选地不含母源谱系的细胞。胎盘来源的细胞的同质群可以是新生儿谱系或母源谱系的。细胞群的同质性可通过本领域已知的任何方法实现，例如，根据已知方法通过细胞分选(例如，流式细胞术)或通过克隆扩增。因而，优选的同质产后来源的细胞群可包含产后来源的细胞的克隆细胞系。这种群体在具有高度希望的功能性的细胞克隆被分离时是特别有用的。
在一个实施方案中，细胞是作为未分化的细胞给予的产后来源的细胞，即，如生长培养基中培养的。可选地，产后来源的细胞可在培养中暴露于刺激朝向希望的神经组织分化的条件之后给予。
在一个优选的实施方案中，细胞是hUTC。
进一步地，细胞群可包括多于一类细胞。实际上，一些实施方案包括给予包绕和支持神经细胞的细胞例如血管组织。
遗传修饰细胞
本发明中使用的细胞也可进行遗传修饰以产生治疗上有用的基因产物，产生药剂以促进或支持神经组织存活、分化和/或吞噬活性，或产生因子以将祖细胞募集到神经斑区域。
遗传修饰可用多种载体中的任一种完成，包括但不限于整合病毒载体，例如，逆转录病毒载体或腺伴随病毒载体；非整合复制载体，例如，乳头瘤病毒载体、SV40载体、腺病毒载体；或复制-缺陷型病毒载体。将DNA引入细胞中的其它方法包括使用脂质体、电穿孔、基因枪或通过直接DNA注射。
例如，细胞可进行基因工程改造，以表达和/或分泌外来分子(例如，正常不由细胞产生的异源分子)或改变分子的产生来治疗慢性疼痛。这种分子可以在使用本领域公知的技术引入异源核酸分子时由细胞产生。
在一个实施方案中，可以对本发明的细胞进行修饰以表达神经递质受体。在另一实施方案中，本发明的细胞被修饰以产生神经递质。在又一其它实施方案中，本发明的细胞被修饰以产生神经递质的片段，包括但不限于来自C′末端或N′末端的片段。在另一实施方案中，外来分子增强给予的细胞的神经再生能力，帮助重建GABA中间神经元的感觉神经通讯，和/或帮助重建受试者中的兴奋性/抑制性神经递质平衡。
在又一实施方案中，细胞被基因工程改造以表达和/或分泌外源分子，其促进给予成功(例如，通过下调受试者中的免疫应答)和/或促进给予的细胞存活或功能。示例性的分子包括例如，神经营养因子或神经保护剂。
在再一实施方案中，未修饰或修饰的细胞可以与被遗传修饰以执行有用功能的其它类型的细胞共同引入。例如，为了促进神经元的生长，细胞可以与分泌或已进行修饰以分泌例如神经营养因子的其它细胞共同给予。充当对受试者的转基因的载体的细胞例子包括成纤维细胞、肾上腺嗜铬细胞、星形胶质细胞和成肌细胞。这种细胞，例如成纤维细胞和神经胶质细胞，还可以用于递送含有基因例如单纯疱疹-胸苷激酶基因的逆转录病毒，其基因产物是其它治疗药物或药剂例如更昔洛韦(ganciclovir)靶向细胞的靶。
宿主细胞可用DNA和选择标记转化或转染，所述DNA由一种或多种适当的表达控制元件控制或与所述控制元件操作性结合，控制元件例如启动子或增强子序列、转录终止子、聚腺苷酸化位点等。任何启动子都可用于驱动插入的基因的表达。例如，病毒启动子包括但不限于CMV启动子/增强子、SV 40、乳头瘤病毒、EB病毒或弹性蛋白基因启动子。在一些实施方案中，用于控制目的基因表达的控制元件可以允许基因的调节的表达以便只在体内需要时才合成产物。如果瞬时表达是希望的，那么优选地在非-整合和/或复制-缺陷型载体中使用组成型启动子。可选地，诱导型启动子可用于在需要时驱动插入的基因的表达。诱导型启动子包括但不限于与金属硫蛋白和热休克蛋白相关的那些。
引入外源DNA后，可使工程改造的细胞生长在富集培养基中并然后切换到选择性培养基。外源DNA中的选择标记赋予对选择的抗性并使细胞稳定地将例如质粒上的外源DNA整合到它们的染色体中并生长以形成转化灶(locus)，其进而可以克隆和扩增为细胞系。该方法可以有利地用于工程改造表达基因产物的细胞系。
本发明的细胞可被基因工程改造以″敲除″或″敲减″促进植入位点处的炎症或排斥的因子的表达。用于减少靶基因表达水平或靶基因产物活性水平的负调节技术在下文中讨论。如本文使用的″负调节″指靶基因产物的水平和/或活性相对于缺乏调节治疗情况下靶基因产物的水平和/或活性的减少。对神经细胞或其祖细胞为天然的基因的表达可以被降低或敲除，其中使用许多技术，包括例如，通过使用同源重组技术灭活基因抑制表达。通常，编码蛋白质的重要区域的外显子(或该区域5′的外显子)被阳性选择标记例如neo打断，从而防止正常mRNA从靶基因的产生并导致该基因的失活。基因还可通过在基因的一部分中产生缺失，或通过缺失整个基因而灭活。通过使用带有与靶基因具有同源性的在基因组中相距很远的两个区域的构建体，插入这两个区域的序列可以被缺失，参见Mombaerts等人，1991，Proc.Nat.Acad.Sci U.S.A.88：3084-3087，其通过引用以其整体并入。反义、DNA核酶、核酶、小干扰RNA(siRNA)和抑制靶基因表达的其它这种分子也可以用于降低靶基因活性水平。例如，抑制主要组织相容性基因复合体(HLA)表达的反义RNA分子已显示就免疫应答而言最通用。又进一步地，三股螺旋分子可以在降低靶基因活性水平中使用。这些技术由L.G.Davis等人，(eds)，1994，BASICMETHODS IN MOLECULAR BIOLOGY，第二版，Appleton & Lange，Norwalk，CN(其通过引用以其整体结合到本文中)详细描述。
细胞培养
分离的细胞可用于起始或接种细胞培养物。将分离的细胞转移到未包被或包被有细胞外基质或配体例如层粘连蛋白、胶原(天然的、变性的或交联的)、明胶、纤连蛋白和其它细胞外基质蛋白的无菌组织培养容器。细胞在能够维持细胞生长的任何培养基中培养，例如但不限于，DMEM(高或低葡萄糖)、高级DMEM、DMEM/MCDB 201、Eagle′s基础培养基、Ham′s F10培养基(F10)、Ham′s F-12培养基(F12)、Iscove′s改良Dulbecco′s培养基、间充质干细胞生长培养基(MSCGM)、DMEM/F12、RPMI 1640和以商品名CELL-GRO-FREE销售的无血清/介质培养基(Mediatech，Inc.，Herndon，VA)。培养基可补加有一种或多种组分，包括例如，胎牛血清(FBS)，优选地约2-15％(v/v)；马血清(ES)；人血清(HS)；β-巯基乙醇(BME或2-ME)，优选地约0.001％(v/v)；一种或多种生长因子，例如，血小板衍生生长因子(PDGF)，表皮生长因子(EGF)，成纤维细胞生长因子(FGF)，血管内皮生长因子(VEGF)，胰岛素样生长因子-1(IGF-1)，白细胞抑制因子(LIF)和促红细胞生成素(EPO)；氨基酸，包括L-缬氨酸；和一种或多种抗生素和/或抗真菌剂以控制微生物污染，例如青霉素G、硫酸链霉素、两性霉素B、庆大霉素和制霉菌素，单独的或组合的。培养基优选地包括生长培养基。
以允许细胞生长的密度将细胞接种在培养容器中。在优选的实施方案中，以约0至约5％体积的空气中的CO2培养细胞。在一些优选的实施方案中，以约2％至约25％的空气中的O2，优选地约5％至约20％的空气中的O2培养细胞。细胞优选地在约25至约40℃的温度培养和更优选地在37℃培养。细胞优选地在培养箱中培养。培养容器中的培养基可以是静态的或搅动的，例如，使用生物反应器。在一些实施方案中，细胞在低氧化应激(例如，添加谷胱苷肽、维生素C、过氧化氢酶、维生素E、N-乙酰半胱氨酸)下生长。如本文使用的″低氧化应激″指对培养的细胞没有或具有最小自由基损害的条件。
从上文应明显得出已经提供了具有显著优点的发明。虽然本发明仅以几种形式说明，但它不仅局限于此而是在不违背其精神的条件下，可对本发明作出各种改变和修改。在本发明的精神内，提供以下的实施例。
实施例1
阿尔茨海默病的淀粉样蛋白输注模型中的hUTC
本研究的目的是测定阿尔茨海默病(AD)淀粉样蛋白输注模型中的hUTC的功效。在淀粉样蛋白注射后，评价hUTC的给予对脑中记忆、淀粉样蛋白沉积和其它功效测量的作用。大鼠淀粉样蛋白-β(Aβ)脑室内的输注可以模仿AD的特征。高密度脂蛋白(HDL)，即Aβ的正常血浆载体，其用于减少导致Aβ-依赖性毒性和认知缺陷的Aβ聚集。大鼠体内输注模型是用于筛选AD新疗法的有用的、节省成本的方法。
I.方法和材料
Sprague Dawley大鼠植入插管和递送装置。动物的脑用重组淀粉样蛋白(实验组)或磷酸缓冲盐水(假对照)输注两周。停止输注，并使动物得以恢复一周。细胞以100,000细胞/μl制备，且经ICV接入插管(access cannula)用单次注射处理动物，2μl的100,000细胞/μl溶液或5μl的100,000细胞/μl溶液。
总共有5个处理组：
第1组接受惰性蛋白两周，然后接受单次注射细胞溶媒(盐水)(″假对照″)。
第2组用惰性蛋白处理两周，然后单次注射500,000hUTC。
第3组用重组β淀粉样蛋白处理两周，然后细胞溶媒(盐水)。
第4组用重组β淀粉样蛋白处理，然后单次注射200,000试验细胞。
第5组用重组β淀粉样蛋白处理，然后单次注射500,000试验细胞。
动物得以从所述程序中恢复，并通过Morris水迷宫试验使用水温在26℃的2米直径水池评价，参见Winkler等人，Neurobiol Aging，1994；15(5)：601-607，其通过引用以其整体合并到本文中。远端静止记号置于室的墙壁各处，不存在近端或移动记号，这是由于试验期间实验人员对于大鼠是不可见的。每天第一次试验前，将动物置于平台上60秒用于空间定位。从平台移开动物，用布覆盖头部直至将他们置于随机的起始位置，面朝池壁。首先在可见的平台试验中训练动物一天半(每组(block)4次试验，上午一段且下午一段；总共3组)。然后在接下来的五天内测试隐藏平台获取(每组4次游泳试验，每天两组)。然后给予动物探索试验(Probe trial)。为进行探索试验，从池中移去平台并将大鼠置于池中20秒。在反向隐藏平台位置测试长期记忆(每组4次试验，每天2组)。通过在试验的第6和第7天改变平台位置测试这种工作记忆。在最后一组获取后，进行另一探索试验。径长和获取由HVS图像软件和视频跟踪系统HVS Image Ltd.(Buckingham，UK)确定。
所有动物在淀粉样蛋白输注起始后10周处死(hUTC输注后7周)。动物用戊巴比妥钠麻醉并用含蛋白酶抑制剂的缓冲液进行心脏灌流。收集组织用于组织学分析。矢状向分离脑，冷冻一个半球用于免疫组织化学分析，而另一半球于4％PFA中浸没固定，随后用石蜡包埋。
Ⅱ.结果
在第1天，所有处理组由游泳速度评价显示相似的表现。游泳速度范围为0.21至0.31m/s，平均速度介于0.24和0.26之间。这些结果表明没有植入物程序导致的大体运动神经损伤。(图1)
第2至第6天之间的隐藏获取试验也显示处理组之间的一致性能，平均游泳速度介于0.25和0.30m/s之间。潜伏期的测定结果，即大鼠找到平台花费的时间，和Gallagher Cumulative试验中的得分显示第2至5天在处理组之间一致的测定结果(图2和3)。
在第5天和第6天，与阴性对照(第1和第2组；具有溶媒的溶媒或具有hUTC的溶媒)以及细胞处理的组(第4和第5组)相比，第3组(具有细胞溶媒的淀粉样蛋白)的Gallagher Cumulative得分提高。(图3)。这些差异持续到研究的第9天并在第8和第9天达到统计学显著。第3组的得分显著高于第1、2和5组。(图4)。同样对于潜伏期测定结果，尽管所有组随时间的潜伏期减少，但第3组的得分显著高于其它对照和处理组。(图5)。
总之，结果表明淀粉样蛋白处理是有效的并诱导损伤，对没有损伤的动物的细胞处理未引发任何负面应答且细胞处理可减少由局部给予的淀粉样蛋白导致的损伤。
实施例2
阿尔茨海默病的遗传模型中的hUTC
本研究的目的是测定阿尔茨海默病遗传模型中hUTC的功效。
I.材料和方法
将使用携带可模仿阿尔茨海默病表型的缺失或插入基因的啮齿类动物模型。这些动物可携带单个或多个突变，其将诱导脑中蛋白质的积累和沉积，其将导致脑中若干蛋白的改变和可能的积累，其将导致若干蛋白例如积累在AD患者脑中的淀粉样蛋白和τ的改变和可能的积累。这些模型的实例包括但不限于APP+PS1双转基因小鼠、presenillin敲除动物。(ApoE转基因小鼠)。这些蛋白的积累导致细胞死亡和认知机能障碍。hUTC可通过直接注射到脑或通过全身注射给予。功能试验例如水迷宫表现或类似试验可评价病理学和细胞功效。细胞可通过单次注射或多次注射后给予。这些可伴随或不伴随免疫抑制药物疗法。动物在细胞注射后将被评价几周，以清楚评价细胞功效的大小和持续时间。在尸体解剖后，通过组织学分析评价这些动物。可收集组织以评价淀粉样蛋白积累和神经原纤维缠结的存在情况。细胞存活力和死亡的典型评价还可用试验例如TUNEL染色进行。
II.结果
将用ANOVA分析实验。若与对照相比，功能试验显著改善，则用hUTC的处理是有效的。这可在单个或多个时间点确定。组织学结果可显示与对照相比，细胞处理的动物中淀粉样蛋白或神经原纤维缠结的普遍程度降低。这可单独或与显示坏死或凋亡细胞死亡的关键指示物例如TUNEL、固缩核或活性胱天蛋白酶的细胞的普遍程度降低结合观察。这些标记可表明细胞处理的动物可具有减少的病状。
实施例3
细胞的分离
产后脐带和胎盘在足月或早产妊娠分娩时获得。从5个单独的脐带和胎盘组织供体收集细胞。测试细胞分离的不同方法，以测试它们产生具有以下潜能的细胞的能力：1)分化成具有不同表型的细胞的潜能，这是干细胞共同的特征，或2)提供可用于其他细胞和组织的关键营养因子的潜能。
脐带细胞分离。脐带是从National Disease Research Interchange(NDRI，Philadelphia，PA)获得的。这些组织是在正常分娩之后获得的。细胞分离方案在层流罩超净台中在无菌条件下进行。为了除去血液和碎片，将脐带在磷酸缓冲盐水(PBS；Invitrogen，Carlsbad，CA)中在100单位/毫升青霉素、100毫克/毫升链霉素和0.25微克/毫升两性霉素B(Invitrogen，Carlsbad，CA)存在下洗涤。然后将组织在150cm2组织培养板中在50毫升培养基(DMEM-低葡萄糖和DMEM-高葡萄糖，Invitrogen)存在下进行机械解离，直至组织被绞碎成细浆。将该绞碎的组织转移至50毫升锥形管中(大约每管5克组织)。
然后将组织在DMEM-低葡萄糖培养基或DMEM-高葡萄糖培养基中消化，每一种培养基中含有100单位/毫升青霉素、100毫克/毫升链霉素、0.25微克/毫升两性霉素B和消化酶。在一些实验中，使用胶原酶和分散酶的酶混合物(“C:D”)(胶原酶(Sigma，St Louis，MO)，500单位/毫升；以及分散酶(Invitrogen)，50单位/毫升，于DMEM-低葡萄糖培养基中)。在其它实验中，使用胶原酶、分散酶和透明质酸酶的混合物(“C:D:H”)(C:D:H＝胶原酶，500单位/毫升；分散酶，50单位/毫升；以及透明质酸酶(Sigma)，5单位/毫升，于DMEM-低葡萄糖中)。将含有组织、培养基和消化酶的锥形管在37℃在定轨振荡器(Environ，Brooklyn，NY)中于225rpm孵育2小时。
消化后，将组织在150×g离心5分钟，吸出上清液。将沉淀重悬浮于20毫升生长培养基(DMEM：低葡萄糖(Invitrogen)，15％(v/v)胎牛血清(FBS，确定成分的胎牛血清；Lot#AND18475，Hyclone，Logan，UT)、0.001％(v/v)2-巯基乙醇(Sigma)、100单位/毫升青霉素、100微克/毫升链霉素和0.25微克/毫升两性霉素B(各来自Invitrogen，Carlsbad，CA))中。将该细胞悬浮液过滤通过70-微米尼龙BD FALCON Cell Strainer(BD Biosciences，San Jose，CA)。使包含生长培养基的另外5毫升漂洗液(rinse)通过该滤过器。然后将该细胞悬浮液通过40-微米尼龙细胞滤过器(BD Biosciences，San Jose，CA)，并追加另外5毫升的生长培养基漂洗液。
将滤液重悬浮于生长培养基(总体积50毫升)中并在150×g离心5分钟。吸出上清液并将细胞重悬浮于50毫升的新鲜生长培养基中。将该过程再重复两次。
最后离心后，吸出上清液并将细胞沉淀重悬浮于5毫升新鲜生长培养基中。使用锥虫蓝染色测定活细胞数目。然后将细胞在标准条件下培养。
将从脐带组织分离出的细胞以5000细胞/cm2在明胶-包被的T-75瓶(Corning Inc.，Corning，NY)上接种于生长培养基中。2天后，从瓶中吸出使用过的培养基和非贴壁细胞。将贴壁细胞用PBS洗涤三次以除去碎片和血液来源的细胞。然后对细胞补充生长培养基并允许其生长至汇合(从传代0起约10天(至1代)。在随后的传代(从1代至2代等)中，细胞在4-5天内达到亚汇合(75-85％汇合)。对这些随后的传代而言，将细胞以5,000细胞/cm2接种。使细胞在含5％二氧化碳的湿润培养箱中在37℃生长。
使用LIBERASETM(2.5毫克每毫升，Blendzyme 3TM；RocheApplied Sciences，Indianapolis，IN)和透明质酸酶(5单位/毫升，Sigma)，在DMEM-低葡萄糖培养基中将细胞从脐带组织分离。组织消化和细胞分离如上文对其它蛋白酶消化所述，但使用LIBERASETM/透明质酸酶混合物替代C:D或C:D:H酶混合物。用LIBERASETM组织消化导致细胞群从容易扩增的产后组织分离。
比较使用不同酶组合从脐带分离细胞的程序。针对消化比较的酶包括：i)胶原酶；ii)分散酶；iii)透明质酸酶；iv)胶原酶:分散酶混合物(C:D)；v)胶原酶：透明质酸酶混合物(C:H)；vi)分散酶:透明质酸酶混合物(D:H)；和vii)胶原酶：分散酶：透明质酸酶混合物(C:D:H)。观察到利用这些不同酶消化条件的细胞分离差异(表3-1)。
进行其它尝试以通过不同方法从脐带分离细胞库。在一种情况下，对脐带切片并用生长培养基洗涤，以移去血凝块和胶状材料。收集血液、胶状材料和生长培养基的混合物并在150x g离心。将沉淀重悬浮和在明胶包被的瓶上接种于生长培养基中。根据这些实验，分离出容易扩增的细胞群。
细胞还已分离自得自NDRI的脐带血样品。使用的分离方案是Ho等人的国际专利申请WO 2003/025149(Ho，T.W等人，″CellPopulations Which Co-Express CD49C and CD90，″申请号PCT/US02/29971，其通过引用以其整体结合到本文中)的方案。将脐带血(NDRI，Philadelphia PA)样品(分别是50毫升和10.5毫升)与裂解缓冲液(过滤灭菌的155毫摩尔氯化铵，10毫摩尔碳酸氢钾，0.1毫摩尔EDTA，缓冲为pH 7.2(所有组分来自Sigma，St.Louis，MO)混合。以1∶20脐带血对裂解缓冲液的比裂解细胞。涡旋产生的细胞悬浮液5秒钟，并在环境温度孵育2分钟。将裂解物离心(10分钟，200x g)。将细胞沉淀重悬浮于包含10％胎牛血清(Hyclone，LoganUT)、4毫摩尔谷氨酰胺(Mediatech Herndon，VA)、100单位每毫升青霉素和100微克每毫升链霉素(Gibco，Carlsbad，CA)的完全极限必需培养基(Gibco，Carlsbad CA)中。将重悬浮的细胞离心(10分钟，200x g)，吸出上清液，并且在完全培养基中洗涤细胞沉淀。将细胞直接接种在T75瓶(Corning，NY)、T75层粘连蛋白-包被的瓶或T 175纤连蛋白-包被的瓶(均为Becton Dickinson，Bedford，MA)上。
为了确定细胞群是否会在不同条件下分离并在分离后立即在多种条件下扩增，根据上文提供的程序，在带有或没有0.001％(v/v)2-巯基乙醇的生长培养基(Sigma，St.Louis，MO)中使用C:D:H酶组合消化细胞。使所有细胞在100单位每毫升青霉素和100微克每毫升链霉素存在下生长。在所有测试条件下，细胞在0代和1代之间附着和扩增良好(表3-2)。在条件5-8和13-16中的细胞表现增殖良好直至接种后4次传代，在该点它们被冷藏。
C:D∶H组合提供分离后最佳的细胞得率，并生成比其它条件在培养中扩增多得多的世代的细胞(表3-1)。使用单独的胶原酶或透明质酸酶未得到可扩增细胞群。没有进行尝试来确定该结果是否特异于被测试的胶原酶。
表3-1：使用不同酶组合从脐带组织分离细胞
  酶消化   分离的细胞   细胞扩增
  胶原酶   X   X
  分散酶   +(＞10h)   +
  透明质酸酶   X   X
  胶原酶:分散酶   ++(＜3h)   ++
  胶原酶:透明质酸酶   ++(＜3h)   +
  分散酶:透明质酸酶   +(＞10h)   +
  胶原酶:分散酶:透明质酸酶   +++(＜3h)   +++
表解：+＝好，++＝非常好，+++＝极好的，X＝不成功。
细胞在针对酶消化和生长测试的所有条件下在0代和1代间附着和扩增良好(表3-2)。实验条件5-8和13-16中的细胞增殖良好直至接种后4次传代，在该点它们被冷藏。对所有细胞冷藏用于进一步分析。
表3-2：在不同条件下产后细胞的分离和培养扩增
具核细胞迅速地附着和生长。通过流式细胞术分析这些细胞，并且其类似于通过酶消化得到的细胞。
制剂包含红细胞和血小板。在前3周期间没有具核细胞附着和分裂。接种后3周改变培养基，且没有观察到细胞附着和生长。
细胞群可使用酶组合胶原酶(金属蛋白酶)、分散酶(中性蛋白酶)和透明质酸酶(粘液溶解酶，其分解透明质酸)有效地从脐组织分离。也可使用作为胶原酶和中性蛋白酶掺合物的LIBERASETM。Blendzyme 3TM，其为胶原酶(4Wunsch单位/克)和嗜热菌蛋白酶(1714酪蛋白单位/克)，也与透明质酸酶共同使用以分离细胞。当在生长扩增培养基中在明胶包被的塑料上培养时，这些细胞容易扩增许多代。
细胞还从脐带中的残余血液而不是脐带血中分离。从组织洗涤的血凝块中在所用条件下附着和生长的细胞的存在可归因于在解剖过程中释放的细胞。
实施例4
产后来源的细胞的生长特征
将产后来源的细胞的细胞扩增潜能与分离的干细胞的其它群比较。细胞扩增至衰老的过程被称为Hayflick′s极限(Hayflick L.，Thelongevity of cultured human cells.J.Am.Geriatr.Soc.22(1)：1-12，1974；Hayflick L.，The strategy of senescence.Gerontologist 14(1)：37-45)，1974)。
Ⅰ.材料和方法
明胶包被瓶。于室温通过将20毫升2％(w/v)明胶(Type B：225Bloom；Sigma，St Louis，MO)加入T75瓶(Corning Inc.，Corning，NY)包被组织培养塑料瓶20分钟。移去明胶溶液后加入10毫升磷酸缓冲盐水(PBS)(Invitrogen，Carlsbad，CA)，然后吸出。
产后来源的细胞与其它细胞群的扩增潜能的比较。对于生长扩增潜能的比较，利用下列细胞群：i)间充质干细胞(MSC；Cambrex，Walkersville，MD)；ii)脂肪来源的细胞(美国专利号6,555,374 B1；美国专利申请US20040058412)；iii)正常皮肤成纤维细胞(cc-2509 lot #9F0844；Cambrex，Walkersville，MD)；和iv)脐来源的细胞。细胞最初以5,000细胞/cm2在明胶包被的T75瓶上接种在生长培养基中。对于随后的传代，如下处理细胞培养物。胰蛋白酶消化后，在锥虫蓝染色后计数活细胞。将细胞悬浮液(50微升)与锥虫蓝(50微升，Sigma，St.Louis MO)组合。使用血细胞计数器估计活细胞数目。
计数后，将细胞以5,000细胞/cm2在明胶包被的T75瓶上接种于25毫升的新鲜生长培养基中。使细胞在标准气氛(5％二氧化碳(v/v))中在37℃生长。每周改变生长培养基2次。当细胞达到约85％汇合时，使它们传代；重复该过程直至细胞达到衰老。
在每次传代对细胞进行胰蛋白酶消化和计数。计算活细胞得率、群体倍增[ln(细胞最终/细胞起始)/ln2]和倍增时间(在培养中的时间/群体倍增)。为了确定最佳细胞扩增的目的，通过在前传代的总得率乘以每一传代的扩增系数(即，扩增系数＝细胞最终/细胞起始)确定每一传代的总细胞得率。
低密度细胞库的扩增潜能。还测试堆积(banked)在10代的细胞的扩增潜能。应用不同的条件组。测试正常皮肤成纤维细胞(cc-2509 lot # 9F0844；Cambrex，Walkersville，MD)、脐来源的细胞和胎盘来源的细胞。这些细胞群在前已堆积在10代，其已在5,000细胞/cm2下在每次传代培养至该点。测定细胞密度对细胞解冻后10代时细胞群的作用。将细胞在标准条件下解冻并使用锥虫蓝染色计数。然后将解冻的细胞以1,000细胞/cm2接种在生长培养基中。使细胞在标准气氛条件下在37℃生长。每周改变生长培养基2次。细胞在它们达到约85％汇合时传代。然后细胞传代直至衰老，即，直至它们不再能进一步扩增。在每次传代对细胞进行胰蛋白酶消化并计数。计算细胞得率、群体倍增(ln(细胞最终/细胞起始)/ln2)和倍增时间(在培养中的时间/群体倍增)。通过在前传代的总得率乘以每次传代的扩增系数(即，扩增系数＝细胞最终/细胞起始)确定每次传代的总细胞得率。
从起始细胞接种的低密度产后来源的细胞的扩增。在另一实验中测试在低细胞接种条件下的新分离的产后来源的细胞培养物的扩增潜能。脐来源的细胞和胎盘来源的细胞如先前实施例中所述地分离。将细胞以1,000细胞/cm2接种和如上文所述传代直至衰老。使细胞在标准气氛条件下在37℃生长。每周改变生长培养基2次。细胞在它们达到约85％汇合时传代。在每次传代对细胞进行胰蛋白酶消化并通过锥虫蓝染色计数。对每次传代计算细胞得率、群体倍增(ln(细胞最终/细胞起始)/ln2)和倍增时间(在培养中的时间/群体倍增)。通过在前传代的总得率乘以每次传代的扩增系数(即，扩增系数＝细胞最终/细胞起始)确定每次传代的总细胞得率。使细胞在明胶和非明胶包被的瓶上生长。
低氧培养条件的细胞扩增。已证明，在某些情况下低O2细胞培养条件可以改进细胞扩增(Csete，Marie；Doyle，John；Wold，Barbara J.；McKay，Ron；Studer，Lorenz.Low oxygen culturing of central nervoussystem progenitor cells.US20040005704)。为了确定脐来源的细胞的细胞扩增是否可以通过改变细胞培养条件改进，将产后来源的细胞的培养物在低氧条件中生长。将细胞以5,000细胞/cm2在明胶包被的瓶上接种在生长培养基中。将细胞最初在标准气氛条件下培养至5代，在该点将它们转移到低氧(5％O2)培养条件。
其它生长条件。在其它实验中，使细胞在未包被的、胶原-包被的、纤连蛋白-包被的、层粘连蛋白-包被的和基质胶(matrigel)-包被的板上扩增。已证明培养物在这些不同基质上扩增良好。
Ⅱ.结果
产后来源的细胞与其它细胞群的扩增潜能的比较。脐来源和胎盘来源的细胞扩增超过40次传代，在60天内产生＞1E17细胞的细胞得率。与之相比，MSCs和成纤维细胞分别在＜25天和＜60天后衰老。尽管脂肪-来源的和网膜细胞扩增几乎60天，但它们分别生成4.5E12和4.24E13的总细胞得率。因而，当在所用的实验条件下以5,000细胞/cm2接种时，产后来源的细胞的扩增比在相同条件下生长的其它细胞类型好得多(表4-1)。
表4-1：生长至衰老的不同细胞群的生长特征
  细胞类型   衰老   总群体倍增   得率(总细胞)
  MSC   24d   8   4.72 E7
脂肪-来源的细胞   57d   24   4.5 E12
  成纤维细胞   53d   26   2.82 E13
  脐   65d   42   6.15 E17
  胎盘   80d   46   2.4 E19
低密度的细胞库的扩增潜能。脐来源、胎盘来源的细胞和成纤维细胞扩增超过10次传代，在60天内产生＞1E11细胞的细胞得率(表4-2)。在这些条件下60天后，成纤维细胞变得衰老；而脐来源的和胎盘来源的细胞群在80天后衰老，分别完成＞50和＞40群体倍增。
表4-2：使用低密度生长扩增的不同细胞群从10代至衰老的生长特征
  细胞类型(传代编号)   衰老   总群体倍增   得率(总细胞)
  成纤维细胞(P10)   80天   43.68   2.59 E11
  脐(P10)   80天   53.6   1.25 E14
  胎盘   60天   32.96   6.09 E12
低氧培养条件下的细胞扩增。细胞在氧减少条件下扩增良好，然而，对于产后来源的细胞在低氧条件下培养似乎不对细胞扩增具有显著作用。标准气氛条件已证实成功地使足够数目的细胞生长，并且低氧培养对于产后来源的细胞的生长是不需要的。
概述。以约5,000细胞/cm2的密度、在生长培养基中在明胶-包被或未包被瓶上、在标准大气氧下培养分离的产后来源细胞的当前细胞扩增条件足以在11代产生大量细胞。另外，数据提示细胞可以使用较低密度培养条件(例如，1,000细胞/cm2)容易地扩增。在低氧条件下的产后来源的细胞扩增还促进细胞扩增，尽管在利用这些条件用于培养时没有观察到细胞扩增潜能方面的增加的改进。目前，在标准气氛条件下培养产后来源的细胞优选用于产生大的细胞库。但当培养条件改变时，产后来源的细胞扩增可以同样改变。该策略可用于增强这些细胞群的增殖和分化能力。
在所利用的条件下，尽管MSC和脂肪-来源的细胞的扩增潜能受到限制，但产后来源的细胞容易扩增成大的数目。
实施例5
产后来源的细胞在包含D-缬氨酸的培养基中的生长
已报告，包含D-缬氨酸而不是正常L-缬氨酸同工型(isoform)的培养基可以用于选择性抑制成纤维细胞-样细胞在培养物中的生长(Hongpaisan，Inhibition of proliferation of contaminating fibroblasts byD-valine in cultures of smooth muscle cells from human myometrium.Cell Biol Int.2000；24：1-7；Sordillo等人，Culture of bovine mammaryepithelial cells in D-valine modified medium：selective removal ofcontaminating fibroblasts.Cell Biol Int Rep.1988；12：355-64)。进行实验以确定产后来源的细胞是否能在包含D-缬氨酸的培养基中生长。
Ⅲ.方法和材料
将胎盘来源的细胞(P3)、脐来源的细胞(P5)和成纤维细胞(P9)以5,000细胞/cm2接种于明胶-包被的T75瓶(Corning，Corning，NY)中。24小时后，移去培养基并用磷酸缓冲盐水(PBS)(Gibco，Carlsbad，CA)洗涤细胞以除去残余的培养基。将培养基替换以改良的生长培养基(DMEM，含D-缬氨酸(特殊定制，Gibco)、15％(v/v)透析的胎牛血清(Hyclone，Logan，UT)、0.001％(v/v)β巯基乙醇(Sigma)、50单位/毫升青霉素和50毫克/毫升链霉素(Gibco))。
IV.结果
接种在含D-缬氨酸培养基中的胎盘来源的、脐来源的细胞和成纤维细胞不增殖，这与接种在含透析的血清的生长培养基中的细胞不同。成纤维细胞在形态学上变化，大小增加和形状改变。4周后，所有细胞死亡并从瓶表面最终脱离。因而，可断定产后来源的细胞需要L-缬氨酸用于细胞生长和维持长期生存力。L-缬氨酸优选地不从用于产后来源的细胞的生长培养基除去。
实施例6
PPDC的核型分析
在细胞疗法中使用的细胞系优选地是同质的，并且不含任何污染的细胞类型。在细胞疗法中使用的人细胞应当具有正常数目(46)的带有正常结构的染色体。为了鉴定同质的并且不含非产后组织起源细胞的产后来源的胎盘和脐带的细胞系，对细胞样品的核型进行分析。
V.材料和方法
将来自雄性新生儿产后组织的PPDC在生长培养基中培养。选择来自雄性新生儿(X，Y)的产后组织以允许在新生儿-来源的细胞和母本来源的细胞(X，X)之间的区分。将细胞以5,000细胞每平方厘米接种在T25瓶(Corning，Corning，NY)中的生长培养基中，并扩增至80％汇合。将生长培养基装入含有细胞的T25瓶至瓶颈。将样品通过快递递送到临床细胞遗传学实验室(估计实验室之间运送时间是1小时)。由New Jersey Medical School，Newark，NJ的Center for Human &Molecular Genetics实施染色体分析。细胞在染色体最可见的中期期间进行分析。在计数的20个中期细胞中，分析5个的正常同质核型数(2)。如果观察到2个核型，则将细胞样品表征为同质的。如果观察到超过2个核型，则将细胞样品表征为异质的。当鉴定出异质核型数(4)时，对另外的中期细胞进行计数和分析。
VI.结果
送去进行染色体分析的所有细胞样品被细胞遗传学实验室工作人员解释为表现正常的外观。分析的16个细胞系中的3个表现异质表型(XX和XY)，这表明存在来源于新生儿和母本起源的细胞(表6-1)。源自组织胎盘-N的细胞从胎盘的新生儿方面分离。在0代，该细胞系显示同质XY。然而，在9代，该细胞系是异质的(XX/XY)，表明先前未检测到的母本起源的细胞的存在。每一细胞样品被表征为同质的(表6-1)。
表6-1.PPDC的核型结果。
  组织   传代   计数的中期细胞   分析的中期细胞   核型数   ISCN核型
  胎盘   22   20   5   2   46，XX
  脐带   23   20   5   2   46，XX
  脐带   6   20   5   2   46，XY
  胎盘   2   20   5   2   46，XX
  脐带   3   20   5   2   46，XX
  胎盘-N   0   20   5   2   46，XY
  胎盘-V   0   20   5   2   46，XY
  胎盘-M   0   21   5   4   46，XY[18]/46，XX[3]
  胎盘-M   4   20   5   2   46，XX
  胎盘-N   9   25   5   4   46，XY[5]/46，XX[20]
  胎盘-NC1   1   20   5   2   46，XY
  胎盘-NC3   1   20   6   4   46，XY[2]/46，XX[18]
  胎盘-NC4   1   20   5   2   46，XY
  胎盘-NC15   1   20   5   2   46，XY
  胎盘-NC20   1   20   5   2   46，XY
  胎盘-NC22   1   20   5   2   46，XY
表解：N-新生儿侧；V-绒毛区域；M-母本侧，C-克隆
概述。染色体分析鉴定核型显示正常的胎盘来源和脐来源的PPDC，如临床细胞遗传学实验室所解释的。核型分析还鉴定不含母本细胞的细胞系，如同质核型所确定的。
实施例7
人产后来源的细胞表面标记的流式细胞术评价
细胞表面蛋白质或″标记″通过流式细胞术的表征可以用于确定细胞系的特征。表达的一致性可以从多个供体以及在暴露于不同处理和培养条件的细胞确定。通过流式细胞术表征分离自脐的产后细胞系，从而提供用于鉴定这些细胞系的概况。
VII.材料和方法
培养基和培养容器。将细胞在生长培养基中在血浆处理的T75、T150和T225组织培养瓶(Corning，Corning，NY)中培养，直至汇合。通过将2％(w/v)明胶(Sigma，St.Louis，MO)在室温孵育20分钟而使明胶包被瓶的生长表面。
抗体染色。将瓶中的贴壁细胞在磷酸缓冲盐水(PBS)；(Gibco，Carlsbad，MO)中洗涤并用胰蛋白酶/EDTA(Gibco)脱离。收获细胞、离心并以1×107每毫升的细胞浓度重悬浮于含3％(v/v)FBS的PBS中。根据制造商的说明书，将目标细胞表面标记的抗体(参见下面)加入到100微升细胞悬浮液中，并将该混合物在暗处、在4℃孵育30分钟。温育后，将细胞用PBS洗涤并离心以除去未结合的抗体。将细胞重悬浮于500微升PBS中并通过流式细胞术分析。
流式细胞术分析。流式细胞术分析采用FACScaliburTM仪器(Becton Dickinson，San Jose，CA)进行。
针对细胞表面标记的抗体。使用针对细胞表面标记的下列抗体。
表7-1：在表征UDC的细胞表面标记中使用的抗体
抗体   制造商   目录号
CD10   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555375
CD13   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555394
CD31   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555446
CD34   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555821
CD44   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555478
CD45RA   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555489
CD73   BD Pharmingen(San Diego，CA)   550257
CD90   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555596
CD117   BD Biosciences(San Jose，CA)   340529
CD141   BD Pharmingen(San Diego，CA)   559781
PDGFr-alpha   BD Pharmingen(San Diego，CA)   556002
HLA-A，B，C   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555553
HLA-DR，DP，DQ   BD Pharmingen(San Diego，CA)   555558
IgG-FITC   Sigma(St.Louis，MO)   F-6522
IgG-PE   Sigma(St.Louis，MO)   P-4685
胎盘和脐带来源的细胞的比较。在8代比较胎盘来源的细胞与脐带来源的细胞。
传代与传代的比较。在8、15和20代分析胎盘和脐带细胞。
供体与供体的比较。为了比较供体间的差异，将来自不同供体的胎盘来源的细胞彼此进行比较，并将来自不同供体的脐带来源的细胞彼此进行比较。
表面包被比较。将在明胶-包被的瓶上培养的胎盘来源的细胞与在未包被的瓶上培养的胎盘来源的细胞进行比较。将在明胶-包被的瓶上培养的脐带来源的细胞与在未包被的瓶上培养的脐带来源的细胞进行比较。
VIII.结果
消化酶比较。比较用于分离和制备细胞的4种处理。比较通过用(1)胶原酶；(2)胶原酶/分散酶；(3)胶原酶/透明质酸酶；和(4)胶原酶/透明质酸酶/分散酶处理的来源于产后组织的细胞。
胎盘层比较。将分离自胎盘组织母本方面的细胞与分离自胎盘组织绒毛区域的细胞和分离自胎盘新生胎儿方面的细胞比较。
胎盘来源的细胞与脐带来源的细胞比较。通过流式细胞术分析的胎盘和脐带来源的细胞对于CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C的产生显示阳性，这通过相对于IgG对照荧光值增加显示。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141、和HLA-DR、DP、DQ的可检测表达是阴性的，这通过与IgG对照相当的荧光值表示。计算阳性曲线的荧光值的变化。阳性曲线的平均值(即CD13)和范围(即CD90)显示一些变化，但曲线表现正常，证实为同质群体。两曲线各自显示大于IgG对照的值。
胎盘来源的细胞的传代与传代比较。通过流式细胞术分析的在8、15和20代的胎盘来源的细胞对于CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C的产生均为阳性，这反映在相对于IgG对照荧光值增加上。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ的产生是阴性的，其具有与IgG对照一致的荧光值。
脐带来源的细胞的传代与传代比较。通过流式细胞术分析的在8、15和20代的脐带来源的细胞都表达CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C，这通过相对于IgG对照荧光增加表示。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ是阴性的，这通过与IgG对照一致的荧光值表示。
胎盘来源的细胞的供体与供体比较。通过流式细胞术分析的分离自单独供体的胎盘来源的细胞各自表达CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C，其具有相对于IgG对照荧光值增加。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141、和HLA-DR、DP、DQ的产生是阴性的，这通过与IgG对照一致的荧光值表示。
脐带来源的细胞的供体与供体比较。通过流式细胞术分析的分离自单独供体的脐带来源的细胞各自对于CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C的产生显示阳性，这反映在相对于IgG对照荧光值增加上。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141、和HLA-DR、DP、DQ的产生是阴性的，具有与IgG对照一致的荧光值。
明胶包被的表面对胎盘来源的细胞的作用。通过流式细胞术分析的在明胶包被或未包被的瓶上扩增的胎盘来源的细胞都表达CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C，这反映在相对于IgG对照荧光值增加。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ的产生是阴性的，这通过与IgG对照一致的荧光值指示。
明胶包被的表面对脐带来源的细胞的作用。通过流式细胞术分析的在明胶和未包被的瓶上扩增的脐带来源的细胞对于CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C的产生均为阳性，其具有相对于IgG对照增加的荧光值。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ的产生是阴性的，具有与IgG对照一致的荧光值。
用于制备和分离细胞表面标记概况上的细胞的酶消化程序的作用的评价。通过流式细胞术分析的使用各种消化酶分离的胎盘来源的细胞都表达CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C，这通过相对于IgG对照荧光值增加来表示。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ的产生是阴性的，这通过与IgG对照一致的荧光值指示。
胎盘层比较。通过流式细胞术分析的分别来源于胎盘的母本、绒毛和新生儿层的细胞对于CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C的产生表现阳性，这通过相对于IgG对照荧光值增加来表示。这些细胞对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ的产生是阴性的，这通过与IgG对照一致的荧光值指示。
概述。通过流式细胞术对胎盘和脐带来源的产后细胞的分析已确立了这些细胞系的特性。这些胎盘和脐带来源的产后细胞对于CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C是阳性的，并且对于CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ是阴性的。该特性在变量的变化之间是一致的，所述变量包括供体、传代、培养容器表面包被、消化酶和胎盘层。在个体荧光值直方图曲线平均值和范围中观察到一些变化，但在所有所测试条件下的所有阳性曲线是正常的并表示大于IgG对照的荧光值，从而证实细胞包括具有所述标记的阳性表达的同质群。
实施例8
通过寡核苷酸阵列的细胞分析
使用寡核苷酸阵列以比较脐来源的和胎盘来源的细胞和成纤维细胞、人间充质干细胞以及人骨髓来源的另一细胞系的基因表达概况。该分析提供了产后来源的细胞的表征，并鉴定了这些细胞的独特分子标记。
IX.材料和方法
细胞的分离和培养
产后组织来源的细胞。人脐带和胎盘得自National DiseaseResearch Interchange(NDRI，Philadelphia，PA)，来自患者知情同意的正常足月分娩。接收这些组织，并如实施例1所述分离细胞。将细胞培养于在明胶包被的组织培养塑料瓶上的生长培养基中。将培养物在37℃、在5％CO2下温育。
成纤维细胞。人皮肤成纤维细胞购买自Cambrex Incorporated(Walkersville，MD；批号9F0844)和ATCC CRL-1501(CCD39SK)。将两个细胞系均培养于含10％(v/v)胎牛血清(Hyclone)和青霉素/链霉素(Invitrogen)的DMEM/F12培养基(Invitrogen，Carlsbad，CA)中。使细胞生长于标准组织处理过的塑料上。
人间充质干细胞(hMSC)。hMSCs购买自Cambrex Incorporated(Walkersville，MD；批号2F1655、2F1656和2F1657)，并根据制造商的说明书将其培养于MSCGM培养基(Cambrex)中。使这些细胞在37℃、在5％CO2下生长于标准组织培养塑料瓶中。
人髂嵴骨髓细胞(ICBM)。人髂嵴骨髓接受自NDRI，具有患者的知情同意。将骨髓根据Ho等人(WO03/025149)提出的方法进行处理。将骨髓与裂解缓冲液(155mM NH4Cl，10mM KHCO3和0.1mMEDTA，pH 7.2)以1份骨髓对20份裂解缓冲液的比率混合。将该细胞悬浮液进行涡旋，在环境温度孵育2分钟，并在500×g离心10分钟。弃去上清液，并将细胞沉淀重悬浮于补充有10％(v/v)胎牛血清和4mM谷氨酰胺的极限必需培养基-α(Invitrogen)中。将该细胞再次离心，并将细胞沉淀重悬浮于新鲜培养基中。使用锥虫蓝排除(Sigma，St.Louis，MO)对活的单核细胞进行计数。将该单核细胞以5×104细胞/cm2接种于塑料组织培养瓶中。将该细胞在37℃、在5％CO2下、在标准大气O2或5％O2下孵育。将细胞培养5天，而不改变培养基。在5天的培养之后除去培养基和非贴壁细胞。将贴壁细胞保持在培养中。
mRNA的分离和GENECHIP分析。使用于冷磷酸缓冲盐水(PBS)中的细胞刮棒将细胞的活性生长培养物从瓶中取出。将该细胞在300×g离心5分钟。除去上清液，并将该细胞重悬浮于新鲜PBS中并再次离心。除去上清液，并将细胞沉淀立即冷冻并贮存在-80℃。提取细胞mRNA并将其转录为cDNA。然后将cDNA转录为cRNA并进行生物素标记。将该生物素标记的cRNA与AffymetrixGENECHIP HG-U133A寡核苷酸阵列(Affymetrix，Santa Clara，CA)杂交。该杂交和数据采集是根据制造商的说明书进行的。该杂交和数据采集是根据制造商的说明书进行的。数据分析是使用“微阵列的显著性分析”(SAM)版本1.21计算机软件(Tusher，V.G等人，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98：5116-5121)进行的。分析软件的许可通过Office of Technology Licensing，Stanford University获得，且可在Stanford University；Tusher，V.G等人，2001，Proc.Natl.Acad.Sci.USA98：5116-5121获得更多信息。
Ⅱ.结果
在该研究中分析了14个不同的细胞群。在表8-1中列出了细胞和传代信息、培养基质和培养基。
表8-1.通过微阵列研究分析的细胞。通过它们的识别码列出了细胞系、以及分析时的传代、细胞生长底物和生长培养基。
如上所述通过主组分分析用SAM软件对数据进行评价。分析揭示在所测试细胞中以不同相对量表达的290个基因。该分析提供群之间的相对比较。
表8-2显示了对细胞对的比较而计算的欧氏(Euclidean)距离。该欧氏距离基于细胞比较，所述细胞比较基于在所述细胞类型之中差异表达的290个基因。该欧氏距离与290个基因表达之间的相似性成反比。
表8-2.细胞对的欧氏距离。使用在细胞类型之间差异表达的290个基因计算细胞类型的欧氏距离。细胞间的相似性与欧氏距离成反比。
表8-3、8-4和8-5显示在胎盘来源的细胞(表8-3)中增加的基因表达和脐带组织来源的细胞(表8-4)中增加的基因表达，以及在脐带和胎盘来源的细胞(表8-5)中降低的基因表达。
表8-3与所测定的其它细胞系相比，胎盘来源的细胞中表达特别增加的基因。
表8-4.与所测定的其它细胞系相比，脐带来源的细胞中表达特别增加的基因
表8-5.与所测定的其它细胞系相比，脐带和胎盘细胞中表达降低的基因
表8-6、8-7和8-8显示人成纤维细胞(表8-6)、ICBM细胞(表8-7)和MSC(表8-8)中增加的基因表达。
表8-6.与测定的其它细胞系相比，在成纤维细胞中表达增加的基因。
表8-7.与测定的其它细胞系相比，在ICBM-来源的细胞中表达增加的基因。
表8-8.与测定的其它细胞系相比，在MSC细胞中表达增加的基因。
概述。实施本研究以提供来源于脐带和胎盘的产后细胞的分子表征。该分析包括来源自三个不同脐带和三个不同胎盘的细胞。研究还包括两个不同的皮肤成纤维细胞系、三个间充质干细胞系和三个髂嵴骨髓细胞系。在含有针对22,000个基因的寡核苷酸探针的GENECHIP寡核苷酸阵列上分析由这些细胞表达的mRNA。
分析揭示在这些五种不同的细胞类型中，290个基因的转录物以不同量存在。这些基因包括在胎盘来源的细胞中特别增加的10个基因，和在脐组织来源的细胞中特别增加的7个基因。发现54个基因在胎盘和脐带中具有特别较低的表达水平。
已经通过PCR证实了所选择的基因的表达，如实施例7所示。一般而言产后来源的细胞以及具体地脐来源的细胞具有截然不同的基因表达概况，例如，与其它人细胞例如本文测试的骨髓来源的细胞和成纤维细胞相比。
实施例9
产后来源的细胞的细胞标记
使用Affymetrix GENECHIP将来源于人胎盘和脐带的细胞的基因表达概况与来源于其它来源的细胞的基因表达概况相比较。鉴定了六个“特征”基因：氧化的LDL受体1、白细胞介素-8(IL-8)、肾素、浆膜蛋白、趋化因子受体配体3(CXC配体3)和粒细胞趋化蛋白2(GCP-2)。这些“特征”基因在脐来源的细胞中以相对高的水平表达。
进行该实施例中描述的程序以验证微阵列数据并比较基因和蛋白质表达的数据，以及确立一系列可靠的测定用于检测产后来源的细胞的独特特征。
X.方法和材料
细胞。使胎盘来源的细胞(三份分离物，包括一份主要新生儿分离物(如通过核型分析测定的)，脐来源的细胞(四份分离物)和正常的人皮肤成纤维细胞(NHDF，新生儿的和成人的)在明胶包被的T75瓶中生长于生长培养基中。使间充质干细胞(MSC)生长于间充质干细胞生长培养基Bullet试剂盒(MSCGM；Cambrex，Walkerville，MD)中。
对IL-8实验而言，将细胞从液氮中解冻并以5000细胞/cm2铺板于明胶包被的瓶中，在生长培养基中生长48小时，且然后在10毫升血清饥饿培养基[DMEM低葡萄糖(Gibco，Carlsbad，CA)，青霉素(50单位/毫升)，链霉素(50微克/毫升)(Gibco)和0.1％(w/v)牛血清白蛋白(BSA；Sigma，St.Louis，MO)]中再生长8小时。然后提取RNA并将上清液在150×g离心5分钟以除去细胞碎片。将上清液在-80℃冷冻直至ELISA分析。
用于ELISA测定的细胞培养。将来源于人细胞胎盘和脐带的产后细胞以及来源于人新生儿包皮的人成纤维细胞在明胶包被的T75瓶中培养于生长培养基中。在11代将细胞在液氮中冷冻。将细胞解冻并转移至15毫升离心管中。在150×g离心5分钟后，弃去上清液。将细胞重悬浮于4毫升培养基中并计数。使细胞以375,000细胞/瓶在含15毫升生长培养基的75cm2瓶中生长24小时。将该培养基更换为血清饥饿培养基进行8小时。在温育结束时收集血清饥饿培养基，在14,000×g离心5分钟(并贮存在-20℃)。
为了估计每一瓶中的细胞数目，将2毫升胰蛋白酶/EDTA(Gibco，Carlsbad，CA)加入到每一瓶中。在细胞从瓶脱离后，用8毫升生长培养基中和胰蛋白酶活性。将细胞转移至15毫升离心管中并在150×g离心5分钟。除去上清液并将1毫升生长培养基加入到每一管中以重悬浮细胞。使用血细胞计数器确定细胞数目。
ELISA测定。使用ELISA测定(R&D System，Minneapolis，MN)分析由细胞分泌进入血清饥饿培养基的IL-8量。所有测定是根据制造商提供的说明书进行的。
总RNA提取。从汇合的产后来源的细胞和成纤维细胞提取RNA，或用于来自如上处理的细胞的IL-8表达。根据制造商的说明书(RNeasyMini Kit；Qiagen，Valencia，CA)，将细胞用350微升含β-巯基乙醇(Sigma，St.Louis，MO)的缓冲液RLT裂解。根据制造商的说明书(RNeasyMini Kit；Qiagen，Valencia，CA)提取RNA，并进行DNA酶处理(2.7单位/样品)(Sigma St.Louis，MO)。将RNA用50微升DEPC处理过的水洗脱并贮存在-80℃。还从人脐带提取RNA。将组织(30毫克)悬浮于700微升含2-巯基乙醇的缓冲液RLT中。将样品机械匀浆，并按照制造商的说明书进行RNA提取。采用50微升DEPC处理过的水提取RNA并贮存在-80℃。
逆转录。用TaqManTM逆转录试剂(Applied Biosystems，FosterCity，CA)使用随机六聚体将RNA逆转录，在25℃进行10分钟、在37℃进行60分钟，以及在95℃进行10分钟。将样品贮存在-20℃。
使用实时PCR和常规PCR对通过cDNA微阵列鉴定为在产后细胞中独特调节的基因(特征基因-包括氧化的LDL受体、白细胞介素-8、肾素和浆膜蛋白)进行进一步的研究。
实时PCR。使用以商品名Assays-On-Demand(AppliedBiosystems)基因表达产物出售的基因表达产物对cDNA样品进行PCR。根据制造商的说明书(Applied Biosystems)使用配有ABI Prism7000 SDS软件(Applied Biosystems)的7000序列检测系统将氧化的LDL受体(Hs00234028)、肾素(Hs00166915)、浆膜蛋白(Hs00382515)、CXC配体3(Hs00171061)、GCP-2(Hs00605742)、IL-8(Hs00174103)和GAPDH与cDNA和TaqManTM通用PCR主混合物混合。热循环条件为最初50℃进行2分钟和95℃进行10分钟，随后95℃进行15秒和60℃进行1分钟的40个循环。根据制造商的说明书(来自Applied Biosystems用于ABI Prism 7700序列检测系统的User Bulletin#2)分析PCR数据。
常规PCR。使用ABI PRISM 7700(Perkin Elmer AppliedBiosystems，Boston，MA)进行常规PCR以证实来自实时PCR的结果。PCR是使用2微升cDNA溶液(1x Taq聚合酶(商品名AMPLITAQ GOLD)通用混合PCR反应缓冲液(Applied Biosystems)和在94℃最初变性5分钟实施的。对每一引物组进行了扩增最优化。对IL-8、CXC配体3和浆膜蛋白(94℃进行15秒，55℃进行15秒和72℃进行30秒，进行30个循环)；对肾素(94℃进行15秒，53℃进行15秒和72℃进行30秒，进行38个循环)；对氧化的LDL受体和GAPDH(94℃进行15秒，55℃进行15秒和72℃进行30秒，进行33个循环)。用于扩增的引物在表9-1中列出。在最终的PCR反应中引物的浓度是1微摩尔，除GAPDH为0.5微摩尔外。GAPDH引物与实时PCR相同，除未将制造商的TaqManTM探针加入到最终的PCR反应中外。将样品在2％(w/v)琼脂糖凝胶中分离，并用溴化乙锭(Sigma，St.Louis，MO)染色。使用固定焦距POLAROID照相机(VWR International，South Plainfield，NJ)在667胶片(UniversalTwinpack，VWR International，South Plainfield，NJ)上捕获图像。
表9-1：使用的引物
免疫荧光。将产后来源的细胞用冷的4％(w/v)低聚甲醛(Sigma-Aldrich，St.Louis，MO)在室温固定10分钟。使用了0代(P0)的脐带和胎盘来源的细胞(分离后直接使用)和11代(P11)(胎盘来源的细胞的两份分离物；脐带来源的细胞的两份分离物)以及成纤维细胞(P11)的各一份分离物。使用针对下列表位的抗体进行免疫细胞化学：波形蛋白(1∶500，Sigma，St.Louis，MO)、结蛋白(1∶150；Sigma-针对兔产生的；或1∶300；Chemicon，Temecula，CA-针对小鼠产生的)、α-平滑肌肌动蛋白(SMA；1∶400；Sigma)、细胞角蛋白18(CK18；1∶400；Sigma)、von Willebrand因子(vWF；1∶200；Sigma)、和CD34(人CD34III类；1∶100；DAKOCytomation，Carpinteria，CA)。此外，对11代产后来源的细胞测试了下列标记：抗人GRO α-PE(1∶100；BectonDickinson，Franklin Lakes，NJ)、抗人GCP-2(1∶100；Santa Cruz Biotech，Santa Cruz，CA)、抗人氧化的LDL受体1(ox-LDL R1；1∶100；SantaCruz Biotech)和抗人NOGA-A(1∶100；Santa Cruz，Biotech)。
将培养物用磷酸缓冲盐水(PBS)洗涤，并将其暴露于含PBS、4％(v/v)山羊血清(Chemicon，Temecula，CA)和0.3％(v/v)Triton(Triton X-100；Sigma，St.Louis，MO)的蛋白质封闭溶液中进行30分钟以接近细胞内抗原。在目标表位被定位于细胞表面(CD34、ox-LDL R1)的情况中，在程序的所有步骤中省略Triton X-100以防止表位损失。此外，在第一抗体针对山羊产生(GCP-2、ox-LDL R1、NOGO-A)的情况中，在整个方法过程中使用3％(v/v)驴血清代替山羊血清。然后将在封闭溶液中稀释的第一抗体应用到培养物中，在室温进行1小时时间。除去第一抗体溶液，并用PBS洗涤培养物，随后应用含有连同山羊抗-小鼠IgG Texas Red(1∶250，Molecular Probes，Eugene，OR)和/或山羊抗-兔IgG-Alexa 488(1∶250，Molecular Probes)或驴抗-山羊IgG FITC(1∶150；Santa Cruz Biotech)一起的封闭液的第二抗体溶液(在室温1小时)。然后洗涤培养物，并应用10微摩尔DAPI(Molecular Probes)进行10分钟以使细胞核可见。
在免疫染色后，在Olympus倒置表面荧光显微镜(Olympus，Melville，NY)上使用适当的荧光滤光片显现荧光。在所有的情况中，阳性染色代表高于对照染色的荧光信号，在对照染色中遵循上面概述的整个程序，除了应用第一抗体溶液外(1°号对照)。使用数字彩色摄影机和ImagePro软件(Media Cybernetics，Carlsbad，CA)捕获代表性图像。对三重染色的样品而言，每一张图像均是使用一次仅一个发射滤光片采集的。然后使用Adobe Photoshop软件(Adobe，San Jose，CA)制作分层的拼接。
用于FACS分析的细胞制备。将瓶中的贴壁细胞在磷酸缓冲盐水(PBS)(Gibco，Carlsbad，CA)中洗涤，并用胰蛋白酶/EDTA(Gibco，Carlsbad，CA)进行脱壁。将细胞收集、离心并以1×107每毫升的细胞浓度重悬浮于含3％(v/v)FBS的PBS中。将一百微升等分试样递送至锥形管中。将针对细胞内抗原染色的细胞用Perm/Wash缓冲液(BD Pharmingen，San Diego，CA)进行透化。按照制造商的说明书将抗体加入到等分试样中，并将所述细胞在暗处、在4℃孵育30分钟。孵育后，将细胞用PBS洗涤并离心以除去过量的抗体。将需要第二抗体的细胞重悬浮于100微升3％FBS中。按照制造商的说明书加入第二抗体并将所述细胞在暗处、在4℃孵育30分钟。孵育后，将细胞用PBS洗涤并离心以除去过量的第二抗体。将洗涤过的细胞重悬浮于0.5毫升PBS中，并通过流式细胞术进行分析。使用了下列抗体：氧化的LDL受体1(sc-5813；Santa Cruz，Biotech)、GROa(555042；BD Pharmingen，Bedford，MA)、小鼠IgG1 κ，(P-4685和M-5284；Sigma)、以及驴抗山羊IgG(sc-3743；Santa Cruz，Biotech.)。
FACS分析。流式细胞术分析采用FACScaliburTM(BectonDickinson San Jose，CA)进行。
XI.结果
对来源于人脐带的细胞、成人和新生儿成纤维细胞和间充质干细胞(MSC)的cDNA进行的针对选择的″特征″基因的实时PCR结果表明浆膜蛋白和氧化的LDL受体表达在脐来源的细胞中较其它细胞高。将从实时PCR获得的数据通过ΔΔCT方法进行分析并以对数标度表示。产后细胞和对照之间未发现CXC配体3和GCP-2表达水平的显著差异。通过常规PCR证实了实时PCR的结果。PCR产物的测序进一步验证了这些观察结果。使用表9-1中列举的常规PCR CXC配体3引物在产后细胞和对照之间未发现CXC配体3表达水平的显著差异。
产后细胞中细胞因子，IL-8的表达在生长培养基培养的和血清饥饿的产后来源的细胞中均提高。采用常规PCR并通过测序PCR产物验证了所有的实时PCR数据。
于无血清培养基中生长之后，检查条件培养基中IL-8的存在情况。在脐细胞和一些胎盘来源的细胞的分离物已在其中生长的培养基中检测到了最大量的IL-8(表9-2)。在人皮肤成纤维细胞已在其中生长的培养基中未检测到IL-8。
表9-2：通过ELISA测量的IL-8蛋白表达
ND：未检测到
通过FACS分析还检查了胎盘来源的细胞中氧化的LDL受体、GCP-2和GROα的表达。细胞对GCP-2测试为阳性。通过该方法未检测到氧化的LDL受体和GRO。
通过免疫细胞化学分析还测试了胎盘来源的细胞中所选择的蛋白质的产生。在分离后立即(0代)将来源于人胎盘的细胞用4％低聚甲醛固定并将其暴露于针对六种蛋白质的抗体：von Willebrand因子、CD34、细胞角蛋白18、结蛋白、α-平滑肌肌动蛋白和波形蛋白。细胞对α-平滑肌肌动蛋白和波形蛋白染色为阳性，该模式保持至11代。仅少数在0代的细胞(＜5％)对细胞角蛋白18染色为阳性。
通过免疫细胞化学分析探测来源于人脐带的0代细胞中所选择的蛋白质的产生。在分离后立即(0代)将细胞用4％低聚甲醛固定并将其暴露于针对六种蛋白质的抗体：von Willebrand因子、CD34、细胞角蛋白18、结蛋白、α-平滑肌肌动蛋白和波形蛋白。脐带来源的细胞对α-平滑肌肌动蛋白和波形蛋白是阳性的，具有直到11代一致的染色模式。
还通过免疫细胞化学研究了在11代的胎盘来源的细胞中GROα和GCP-2的产生。胎盘来源的细胞为GCP-2阳性，但通过该方法未检测到GROα的产生。
通过免疫细胞化学研究GROα、GCP-2、氧化的LDL受体1和浆膜蛋白(NOGO-A)在11代的脐带来源的细胞中的产生。脐带来源的细胞为GCP-2阳性，但通过该方法未检测到GROα的产生。此外，细胞为NOGO-A阳性。
概述。已经对四个基因确立了通过微阵列和PCR(实时和常规两种)测量的基因表达水平之间的一致性：氧化的LDL受体1、肾素、浆膜蛋白和IL-8。这些基因的表达在产后来源的细胞中在mRNA水平被差异调节，IL-8在蛋白质水平也被差异调节。通过FACS分析在来源于胎盘的细胞中在蛋白质水平未检测到氧化的LDL受体的存在。GCP-2和CXC配体3的差异表达未在mRNA水平证实；然而通过FACS分析在胎盘来源的细胞中在蛋白质水平检测到GCP-2。虽然该结果不支持从微阵列实验原始获得的数据，但这可能是归因于方法学灵敏度方面的差异。
一经分离(0代)，来源于人胎盘的细胞对α-平滑肌肌动蛋白和波形蛋白两者染色为阳性。还在11代细胞观察到该模式。这些结果表明波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白表达还可随传代保持于细胞中，至少在此使用的生长培养基中。
探测在0代的来源于人脐带的细胞中α-平滑肌肌动蛋白和波形蛋白的表达。且两者均为阳性。该染色模式保存直至11代。
结论是，全部mRNA数据至少部分地证实得自微阵列实验的数据。
实施例10
PPDC表型的免疫组织化学表征
通过免疫组织化学分析在人产后组织(胎盘和脐带)中发现的细胞的表型。
XII.材料和方法
组织制备。收获人脐带和胎盘组织并于4℃在4％(w/v)低聚甲醛中浸没固定过夜。使用针对下列表位的抗体(参见表10-1)进行免疫组织化学：波形蛋白(1∶500；Sigma，St.Louis，MO)，结蛋白(1∶150，针对兔产生；Sigma；或1∶300，针对小鼠产生；Chemicon，Temecula，CA)，α-平滑肌肌动蛋白(SMA；1∶400；Sigma)，细胞角蛋白18(CK18；1∶400；Sigma)、von Willebrand因子(vWF；1∶200；Sigma)和CD34(人CD34 III类；1∶100；DAKOCytomation，Carpinteria，CA)。此外，测试了下列标记：抗人GRO α-PE(1∶100；Becton Dickinson，Franklin Lakes，NJ)，抗人GCP-2(1∶100；Santa Cruz Biotech，SantaCruz，CA)，抗人氧化的LDL受体1(ox-LDL R1；1∶100；Santa CruzBiotech)和抗人NOGO-A(1∶100；Santa Cruz Biotech)。用手术刀修剪固定的样品并在含乙醇的干冰浴上置于OCT包埋化合物(Tissue-TekOCT；Sakura，Torrance，CA)中。然后使用标准恒冷切片机(LeicaMicrosystems)对冷冻块切片(10微米厚)并封固在载玻片上用于染色。
免疫组织化学。与在前研究类似地进行免疫组织化学(例如，Messina，等人，(2003)Exper.Neurol.184：816-829)。将组织切片用磷酸缓冲盐水(PBS)洗涤并暴露于含PBS、4％(v/v)山羊血清(Chemicon，Temecula，CA)和0.3％(v/v)Triton(Triton X-100；Sigma)的蛋白质封闭溶液1小时以取得细胞内抗原。在目标表位被定位于细胞表面(CD34、ox-LDL R1)的情况中，在程序的所有步骤中省略triton以防止表位丢失。此外，在第一抗体针对山羊产生(GCP-2、ox-LDL R1、NOGO-A)的情况中，在整个程序过程中使用3％(v/v)驴血清代替山羊血清。然后将在封闭溶液中稀释的第一抗体应用到切片中，在室温进行4小时时间。除去第一抗体溶液，并用PBS洗涤培养物，随后应用含有连同山羊抗-小鼠IgG Texas Red(1∶250，MolecularProbes，Eugene，OR)和/或山羊抗-兔IgG-Alexa 488(1∶250，Molecular Probes)或驴抗-山羊IgG FITC(1∶150；Santa Cruz Biotech)一起的封闭液的第二抗体溶液(在室温1小时)。洗涤培养物，并应用10微摩尔DAPI(Molecular Probes)进行10分钟以使细胞核可见。
在免疫染色后，在Olympus倒置表面荧光显微镜(Olympus，Melville，NY)上使用适当的荧光滤光片显现荧光。阳性染色由高于对照染色的荧光信号代表。代表性图像是使用数字彩色摄影机和ImagePro软件(Media Cybernetics，Carlsbad，CA)捕获的。对三重染色的样品而言，每一张图像均是使用一次仅一个发射滤光片采集的。然后使用Adobe Photoshop软件(Adobe，San Jose，CA)制备分层的拼接。
表10-1：使用的第一抗体的概述
ⅩⅢ.结果
脐带表征。波形蛋白、结蛋白、SMA、CK18、vWF和CD34标记在脐带中发现的细胞亚群内表达(数据未显示)。具体地，vWF和CD34表达局限于脐带中包含的血管。CD34+细胞在最内层(腔侧)。波形蛋白表达存在于整个基质和脐带血管内。SMA局限于基质和动脉及静脉的外壁，但不包含在血管本身中。CK18和结蛋白仅在血管中观察到，结蛋白局限于中层和外层。
胎盘表征。在胎盘内均观察到波形蛋白、结蛋白、SMA、CK18、vWF和CD34且为区域特异性的。
GROα、GCP-2、ox-LDL R1和NOGO-A组织表达。这些标记都没有在脐带或胎盘组织内观察到(数据未显示)。
概述。波形蛋白、结蛋白、α-平滑肌肌动蛋白、细胞角蛋白18、von Willebrand因子和CD 34在人脐带和胎盘内的细胞中表达。基于显示仅表达波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白的体外表征研究，数据提示目前的产后来源的细胞分离方法收获细胞亚群或分离的细胞改变标记的表达以表达波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白。
实施例11
由产后来源的细胞分泌营养因子
测量从胎盘和脐来源的PPDC中选择的营养因子分泌。选择具有血管生成活性的因子例如肝细胞生长因子(HGF)(Rosen等人.(1997)Ciba Found.Symp.212：215-26)、单核细胞趋化蛋白质1(MCP-1)(Salcedo等人.(2000)Blood 96；34-40)、白细胞介素-8(IL-8)(Li等人.(2003)J.Immunol.170：3369-76)、角质形成细胞生长因子(KGF)、碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)、血管内皮生长因子(VEGF)(Hughes等人.(2004)Ann.Thorac.Surg.77：812-8)、组织基质金属蛋白酶抑制剂1(TIMP1)、促血管生成素(angiopoietin)2(ANG2)、血小板衍生生长因子(PDGFbb)、血小板生成素(TPO)、肝素结合表皮生长因子(HB-EGF)、基质衍生因子1α(SDF-1α))、神经营养/神经保护活性(脑衍生神经营养因子(BDNF)(Cheng等人.(2003)Dev.Biol.258；319-33)、白细胞介素-6(IL-6)、粒细胞趋化蛋白-2(GCP-2)、转化生长因子β2(TGF β2))或趋化因子活性(巨噬细胞炎性蛋白1α(MIP1α)、巨噬细胞炎性蛋白1β(M1P1β)、单核细胞化学引诱物-1(MCP-1)、Rantes(调节活化、正常T细胞表达和分泌)、I309、胸腺和活化-调节的趋化因子(TARC)、Eotaxin、巨噬细胞-来源的趋化因子(MDC)、IL-8。
XIV.方法和材料
细胞培养。将来源于胎盘和脐的细胞以及来源于人新生儿包皮的人成纤维细胞在明胶包被的T75瓶中培养于生长培养基中。在11代将细胞冷藏并贮存在液氮中。解冻后将生长培养基加入细胞，然后转移到15毫升离心管并在150x g离心细胞5分钟。将细胞沉淀重悬浮于4毫升生长培养基中，并对细胞进行计数。将细胞以5,000细胞/cm2接种在各自包含15毫升生长培养基的T75瓶中并培养24小时。将培养基变成无血清培养基(DMEM-低葡萄糖(Gibco)，0.1％(w/v)牛血清清蛋白(Sigma)，青霉素(50单位/毫升)和链霉素(50微克/毫升，Gibco))，进行8小时。在孵育结束时通过在14,000x g离心5分钟收集条件无血清培养基并贮存在-20℃。
为了估计每一瓶中的细胞数目，用磷酸缓冲盐水(PBS)洗涤细胞并使用2毫升胰蛋白酶/EDTA(Gibco)脱壁。通过加入8毫升生长培养基抑制胰蛋白酶活性。在150x g对细胞离心5分钟。除去上清液，并将细胞重悬浮于1毫升生长培养基中。用血细胞计数器估计细胞数目。
ELISA测定。使细胞在37℃在5％二氧化碳和大气氧下生长。通过ELISA(R&D Systems，Minneapolis，MN)测定每一细胞样品产生的MCP-1、IL-6、VEGF、SDF-1α、GCP-2、IL-8和TGF-β2的量。根据制造商的说明书实施所有测定。呈现的值是皮克每毫升每百万细胞(n＝2，sem)。
SEARCHLIGHT多重ELISA测定。使用SEARCHLIGHTProteome Array(Pierce Biotechnology Inc.)测量趋化因子(MIP1α、MIP1β、MCP-1、Rantes、I309、TARC、Eotaxin、MDC、IL8)、BDNF和血管生成因子(HGF、KGF、bFGF、VEGF、TIMP1、ANG2、PDGFbb、TPO、HB-EGF。Proteome Array是用于定量测量每孔2至16种蛋白质的多重夹心ELISA。该阵列通过将2x 2、3x 3或4x 4模式的4至16种不同俘获抗体点到96孔板的每一孔产生。夹心ELISA程序之后，对整个板成像以俘获在板的每一孔中的每一点生成的化学发光信号。在每一点生成的信号与原始标准或样品中的靶蛋白质的量成比例。
XV.结果
ELISA测定。MCP-1和IL-6由脐来源的PPDC和皮肤成纤维细胞分泌(表11-1)。SDF-1α和GCP-2由成纤维细胞分泌。GCP-2和IL-8由脐来源的PPDC分泌。通过ELISA未从任一细胞类型检测到TGF-β2。
表11-1.ELISA结果：营养因子的检测
MCP-1 IL-6 VEGF SDF-1α GCP-2 IL-8 TGF-β2
  成纤维细胞   17±1   61±3   29±2   19±1   21±1   ND   ND
  脐(022803)   1150±74   4234±289   ND   ND   160±11   2058±145   ND
  脐(071003)   2794±84   1356±43   ND   ND   2184±98   2639±23   ND
表解：ND未检测到，＝/-sem
SEARCHLIGHT多重ELISA测定。TIMP1、TPO、KGF、HGF、FGF、HBEGF、BDNF、MIP1β、MCP1、RANTES、I309、TARC、MDC和IL-8从脐来源的PPDC分泌(表11-2和11-3)。未检测到AnG2、VEGF或PDGFbb。
表11-2.SEARCHLIGHT多重ELISA测定结果
  TIMP1   ANG2   PDGFbb   TPO   KGF   HGF   FGF   VEGF   HBEGF   BDNF
  hFB   19306.3   ND   ND   230.5   5.0   ND   ND   27.9   1.3   ND
  U1   57718.4   ND   ND   1240.0   5.8   559.3   158.7   ND   9.3   165.7
  U3   21850.0   ND   ND   1134.5   9.0   195.6   30.8   ND   5.4   388.6
表解：hFB(人成纤维细胞)，U1(脐来源的PPDC(022803))，U3(脐来源的PPDC(071003))。ND：未检坝4到。
表11-3.SEARCHLIGHT多重ELISA测定结果
  MIP1a   MIP1b   MCP1   RANTES   I309   TARC   Eotaxin   MDC   IL8
  hFB   ND   ND   39.6   ND   ND   0.1   ND   ND   204.9
  U1   ND   8.0   1694.2   ND   22.4   37.6   ND   18.9   51930.1
  U3   ND   5.2   2018.7   41.5   11.6   21.4   ND   4.8   10515.9
表解：hFB(人成纤维细胞)，U1(脐来源的PPDC(022803))，U3(脐来源的PPDC(071003))。ND：未检测到。
概述。脐来源的细胞分泌许多营养因子。这些营养因子中的一些，例如HGF、bFGF、MCP-1和IL-8在血管发生中起重要作用。其它营养因子例如BDNF和IL-6在神经再生或保护中具有重要作用。
实施例12
体外免疫学
在体外评价产后细胞系的免疫学特征以预测这些细胞将在体内给予时引起的免疫学应答(如果有的话)。通过流式细胞术对产后细胞系测定HLA-DR、HLA-DP、HLA-DQ、CD80、CD86和B7-H2的表达。这些蛋白质是由抗原呈递细胞(APC)表达的，并是幼稚CD4+ T细胞的直接刺激所要求的(Abbas和Lichtman，CELLULAR ANDMOLECULAR IMMUNOLOGY，第五版，(2003)Saunders，Philadelphia，第171页)。还通过流式细胞术分析了该细胞系的HLA-G(Abbas和Lichtman，CELLULAR AND MOLECULAR IMMUNOLOGY，第五版，(2003)Saunders，Philadelphia，第171页)、CD178(Coumans等人，(1999)Journal of Immunological Methods 224，185-196)和PD-L2(Abbas和Lichtman，CELLULAR AND MOLECULARIMMUNOLOGY，第五版，(2003)Saunders，Philadelphia，第171页，Brown等人，(2003)The Journal of Immunology 170，1257-1266)的表达。由残留于胎盘组织中的细胞进行的这些蛋白质的表达被认为在子宫内介导胎盘组织的免疫特权状态(immuno-privileged status)。为了预测产后脐来源的细胞系在体内引起免疫应答的程度，在单向混合淋巴细胞反应(MLR)中测试了该细胞系。
XVI.材料和方法
细胞培养。在包被有2％明胶(Sigma，St.Louis，MO)的T75瓶(Corning，Corning，NY)中，将细胞在生长培养基(DMEM-低葡萄糖(Gibco，Carlsbad，CA)，15％(v/v)胎牛血清(FBS)；(Hyclone，Logan，UT)，0.001％(v/v)β巯基乙醇(Sigma，St.Louis，MO)，50单位/毫升青霉素，50微克/毫升链霉素(Gibco，Carlsbad，CA)中培养直至汇合。
抗体染色。将细胞在磷酸盐缓冲盐水(PBS)(Gibco，Carlsbad，CA)中洗涤，并用胰蛋白酶/EDTA(Gibco，Carlsbad，CA)进行脱壁。将细胞收获、离心并以1×107每毫升的细胞浓度重悬浮于含3％(v/v)FBS的PBS中。按照制造商的说明书，将抗体(表12-1)加入到一百微升的细胞悬浮液中并将其在暗处、在4℃孵育30分钟。孵育后，将细胞用PBS洗涤并离心以除去未结合的抗体。将细胞重悬浮于五百微升PBS中，并通过流式细胞术使用FACSCaliburTM仪器(BectonDickinson，San Jose，CA)进行分析。
表12-1.抗体
混合淋巴细胞反应。将标记为细胞系A的10代脐带来源的PPDC和标记为细胞系B的11代胎盘来源的PPDC的冷藏小瓶在干冰上送至CTBR(Senneville，Quebec)以使用CTBR SOP号CAC-031进行混合淋巴细胞反应。从多名男性和女性志愿者供体收集外周血单核细胞(PBMC)。将刺激物(供体)同种异体PBMC、自体PBMC和产后来源的细胞系用丝裂霉素C处理。将自体的和丝裂霉素C处理过的刺激物细胞加入到反应者(受者)PBMC中并培养4天。孵育后，向每一样品中加入[3H]胸苷并培养18小时。收获细胞后，提取放射性标记的DNA，并使用闪烁计数器测量[3H]-胸苷的掺入。
同种异体供体的刺激指数(SIAD)是这样计算的：接受者(receiver)加丝裂霉素C处理的同种异体供体的平均增殖除以接受者的基线增殖。产后来源的细胞的刺激指数是这样计算的：接受者加丝裂霉素C处理的产后来源的细胞系的平均增殖除以接受者的基线增殖。
Ⅱ.结果
混合淋巴细胞反应-胎盘。筛选了七名人志愿者血液供体以鉴定将在与其它六名血液供体的混合淋巴细胞反应中显示稳健的增殖反应的单个同种异体供体。选择该供体作为同种异体阳性对照供体。选择剩余的六名血液供体作为受者。该同种异体阳性对照供体和胎盘来源的细胞系是用丝裂霉素C处理过的，并在混合淋巴细胞反应中与所述六名个体同种异体接受者一起培养。使用两个细胞培养板(每个板具有三例接受者)一式三份进行反应(表12-2)。平均刺激指数的范围为1.3(板2)至3(板1)，且同种异体供体阳性对照的范围为46.25(板2)至279(板1)(表12-3)。
表12-2：混合淋巴细胞反应数据-细胞系B(胎盘)
板ID：板2
表12-3.胎盘细胞和同种异体供体在与六名个体同种异体接受者的混合淋巴细胞反应中的平均刺激指数。
  受者   胎盘
  板1(接受者1-3)   279   3
  板2(接受者4-6)   46.25   1.3
混合淋巴细胞反应-脐带。筛选了六名人志愿者血液供体以鉴定将在与其它五名血液供体的混合淋巴细胞反应中显示稳健的增殖反应的单个同种异体供体。选择该供体作为同种异体阳性对照供体。选择剩余的五例血液供体作为受者。该同种异体阳性对照供体和脐带来源的细胞系是用丝裂霉素C处理过的，并在混合淋巴细胞反应中与所述五名个体同种异体接受者一起培养。使用两个细胞培养板(每个板具有三例接受者)一式三份进行反应(表12-4)。平均刺激指数的范围为6.5(板1)至9(板2)，且同种异体供体阳性对照的范围为42.75(板1)至70(板2)(表12-5)。
表12-4：混合淋巴细胞反应数据-细胞系A(脐带)
用于增殖测定的DPM
板ID：板1
板ID：板2
表12-5.脐带来源的细胞和同种异体供体在与五名个体同种异体接受者的混合淋巴细胞反应中的平均刺激指数。
  受者   脐带
  板1(接受者1-4)   42.75   6.5
  板2(接受者5)   70   9
抗原呈递细胞标记-胎盘。通过流式细胞术分析的胎盘来源的细胞的直方图显示HLA-DR、DP、DQ、CD80、CD86和B7-H2的阴性表达，如通过与IgG对照一致的荧光值所记录的，从而表明胎盘来源的细胞系缺乏直接刺激同种异体PBMC(例如，CD4+ T细胞)所需的细胞表面分子。
免疫调节标记-胎盘来源的细胞。通过流式细胞术分析的胎盘来源的细胞的直方图显示PD-L2的阳性表达，如通过相对于IgG对照荧光值增加所记录的，并显示CD178和HLA-G的阴性表达，如通过与IgG对照一致的荧光值所记录的(数据未显示)。
抗原呈递细胞标记-脐带来源的细胞。通过流式细胞术分析的脐带来源的细胞的直方图显示HLA-DR、DP、DQ、CD80、CD86和B7-H2的阴性表达，如通过与IgG对照一致的荧光值所记录的，这表明脐带来源的细胞系缺乏直接刺激同种异体PBMC(例如，CD4+ T细胞)所需的细胞表面分子。
免疫调节标记-脐带来源的细胞。通过流式细胞术分析的脐带来源的细胞的直方图显示PD-L2的阳性表达，如通过相对于IgG对照荧光值增加所记录的，并显示CD178和HLA-G的阴性表达，如通过与IgG对照一致的荧光值所记录的。
概述。在用胎盘来源的细胞系进行的混合淋巴细胞反应中，平均刺激指数的范围是1.3至3，且同种异体阳性对照的平均刺激指数的范围是46.25至279。在用脐带来源的细胞系进行的混合淋巴细胞反应中，平均刺激指数的范围是6.5至9，且同种异体阳性对照的平均刺激指数的范围是42.75至70。胎盘和脐带来源的细胞系对刺激蛋白HLA-DR、HLA-DP、HLA-DQ、CD80、CD86和B7-H2的表达是阴性的，如通过流式细胞术所测量的。胎盘和脐带来源的细胞系对免疫调节蛋白HLA-G和CD178的表达是阴性的，并且对PD-L2的表达是阳性的，如通过流式细胞术所测量的。同种异体供体PBMC包含表达HLA-DP、DR、DQ、CD80、CD86和B7-H2的抗原呈递细胞，从而允许对同种异体PBMC(例如，幼稚CD4+ T细胞)的刺激。胎盘和脐带来源的细胞上用于同种异体PBMC(例如，幼稚CD4+ T细胞)的直接刺激所需的抗原呈递细胞表面分子的缺失，和免疫调节蛋白PD-L2的存在可解释与同种异体对照相比在MLR中由这些细胞表现的低刺激指数。
实施例13
血浆凝固测定
可用于疗法的细胞可全身注射用于其中细胞能够靶向作用部位的某些应用。重要的是注射的细胞不引起血栓形成，因为这可能是致命的。组织因子是一种膜结合前凝血剂糖蛋白，其为外源性凝固级联的引发剂，是体内占主要凝固途径。组织因子还在胚胎血管形成中例如初生血管壁的形成中起重要作用(Brodsky等人.(2002)Exp.Nephrol.10：299-306)。为确定PPDC引发凝固的潜能，评价脐来源的PPDC的组织因子表达和它们引发血浆凝固的能力。
XVII.方法和材料
人组织因子。用20毫升蒸馏水重建人组织因子(SIMPLASTIN，Organon Teknika Corporation，Durham，NC)。将贮存液连续稀释(1∶2)于8管中。在37℃下于水浴中解冻正常人血浆(George King Bio-Medical，Overland Park，KS)且随后在使用前贮存于冰中。向96孔板的每一个孔加入100微升磷酸缓冲盐水(PBS)、10微升稀释的SIMPLASTIN、30微升0.1摩尔氯化钙和100微升正常人血浆。阴性对照孔不接受任何的SIMPLASTIN。随即将板置于温度控制的微量培养板读数器(microplate reader)中并在405纳米以40秒间隔测定吸光度30分钟。
J-82和脐来源的细胞。使J-82细胞(ATCC，MD)生长于含有10％(v/v)胎牛血清(FBS；Hyclone，Logan UT)、1毫摩尔丙酮酸钠(SigmaChemical，St.Louis，MO)、2毫摩尔L-谷氨酰胺(Mediatech Herndon，VA)，1x非必需氨基酸(Mediatech Herndon，VA)的Iscove′s改良的Dulbecco′s培养基(IMDM；Gibco，Carlsbad，CA)中。在约70％汇合时，以100,000、50,000和25,000细胞/孔将细胞转移至96孔板的孔中。将脐来源的细胞在明胶包被的T75瓶(Corning，Corning，NY)中培养于生长培养基中。将18代脐来源的细胞以50,000细胞/孔的密度转移至孔中。在150x g离心5分钟后，将培养基从每个孔移出。将细胞悬浮于不含钙和镁的PBS中。用20微克/毫升CNTO 859(Centocor，Malvern，PA)孵育用抗-组织因子抗体细胞孵育的细胞30分钟。向每个孔加入氯化钙(30微升)。迅速将板置于温度控制的微量培养板读数器中并在405纳米以40秒间隔测定吸光度30分钟。
抗体染色。在PBS中洗涤细胞并用Trypsin/EDTA(Gibco，Carlsbad，CA)使其从瓶脱壁。收获细胞、离心并以1×107每毫升的细胞浓度重悬于含3％(v/v)FBS的PBS中。按照制造商的说明书，将抗体加入100微升细胞悬浮液中。在4℃于暗处使细胞孵育30分钟。孵育后，用PBS洗涤细胞，随后在150x g离心5分钟以除去未结合抗体。将细胞重悬于100微升的3％FBS中并按照制造商的说明书加入第二抗体。在4℃于暗处使细胞孵育30分钟。孵育后，用PBS洗涤细胞并离心以除去非结合第二抗体。将洗涤过的细胞重悬于500微升的PBS中并经流式细胞术分析。
流式细胞术分析。流式细胞术分析采用FACSCaliburTM仪器(Becton Dickinson，San Jose，CA)进行。
ⅩⅧ.结果
流式细胞术分析显示脐来源的产后细胞在促进血浆凝固中相比J82细胞较不具有活性。尽管血浆凝固测定证明存在于脐来源的细胞中的组织因子是具有活性的，但凝固比用J-82细胞花费的时间长，到达半最大吸光度花费的时间更长证明了这一点(T1/2至最大，表13-1)。T1/2至最大与J-82细胞数目成反比。脐来源的细胞降低凝固率，如T1/2至最大所表明的。用早期(P5)和晚期(P18)传代的细胞观察凝固。用针对组织因子的抗体CNTO 859预孵育脐细胞，抑制凝固反应，这证实组织因子是凝固的原因。
表13-1.人组织因子(Simplastin)和脐来源的细胞(Umb)对血浆凝固的作用。在平台期以秒表示的到达半最大吸光度的时间(T1/2至最大)用作测量单位。
概述。脐来源的PPDC产生一些组织因子，但加入针对组织因子的抗体可抑制组织因子的凝固活性。组织因子通常以无活性的构象存在于细胞上，但可通过机械或化学(例如LPS)应力活化(Sakariassen等.(2001)Thromb.Res.104：149-74；Engstad等人.(2002)Int.Immunopharmacol.2：1585-97)。因而，在PPDC的制备过程中应力的最小化可防止组织因子的活化。除血栓形成活性以外，组织因子已与血管生成活性相关。为此，当脐来源的PPDC在组织中给予时，组织因子活性可为有益的，但当静脉内注射PPDC时组织因子活性将会被抑制。
实施例14
用于产后来源的细胞的冷藏培养基
本研究的目的是确定用于冷藏产后来源的细胞的合适的冷藏培养基。
ⅩⅨ.方法和材料
在明胶包被的T75瓶中将生长于生长培养基(DMEM-低葡萄糖(Gibco，Carlsbad CA)，15％(v/v)胎牛血清(Cat.#SH30070.03，Hyclone，Logan，UT)、0.001％(v/v)β-巯基乙醇(Sigma，St.Louis，MO)、50单位/毫升青霉素、50微克/毫升链霉素(Gibco))中的胎盘来源的细胞用磷酸缓冲盐水(PBS；Gibco)洗涤并使用1毫升Trypsin/EDTA(Gibco)胰蛋白酶消化。通过加入10毫升生长培养基终止胰蛋白酶消化。将细胞在150×g离心，去除上清液，将细胞沉淀重悬浮于1毫升生长培养基中。移出等分(60微升)的细胞悬浮液并加入60微升锥虫蓝(Sigma)。使用血细胞计数器估计活细胞数目。将细胞悬浮液分成4个相等的每个含有88x 104细胞的等分试样。将细胞悬浮液离心，重悬于1毫升下列各种培养基中并转移至冷冻管(Cryovials)(Nalgene)中。
1.)生长培养基+10％(v/v)DMSO(Hybrimax，Sigma，St.Louis，MO)
2.)细胞冷冻培养基w/DMSO、w/甲基纤维素、无血清(C6295，Sigma，St.Louis，MO)
3.)无血清细胞冷冻培养基(C2639，Sigma，St.Louis，MO)
4.)细胞冷冻培养基w/甘油(C6039，Sigma，St.Louis，MO)
按照制造商的说明书，使用″Mr Frosty″冷冻容器(Nalgene，Rochester，NY)在-80℃冰箱中以约1℃/分冷却细胞。将小瓶细胞转移至液氮2天，随后于37℃水浴中迅速解冻。将细胞加入10毫升生长培养基并离心，随后如前所述估计细胞数目和生存力。以5,000细胞/cm2将细胞接种到明胶包被的瓶上，以确定细胞是否会贴壁并增殖。
XX.结果
通过锥虫蓝染色评估待冷藏的细胞的起始生存力为100％。
由于细胞裂解，对于C6295，细胞数目随生存力成比例减少。冷藏于全部四种溶液的活细胞在3天内贴壁、分裂并产生汇合单层。所估计的生长率无可辨别的差异。
概述。细胞的冷藏是可用于制备细胞库或细胞产物的一个程序。比较4种冷藏混合物保护人胎盘来源的细胞免受冻害的能力。用于比较冷藏胎盘来源的细胞的培养基中，优选的培养基为Dulbecco′s改良Eagle′s培养基(DMEM)和10％(v/v)二甲基亚砜(DMSO)。

Claims (2)

1.包含分离的人脐带来源的细胞群的组合物在制备用于在患有阿尔茨海默病的受试者中减少斑形成以及减少斑的药物中的用途，其中所述分离的人脐带来源的细胞从基本上不含血液的人脐带组织获得，其中所述分离的细胞能够在培养中自我更新和扩增，其中所述细胞表达CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C且不表达CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ。
2.包含分离的人脐带来源的细胞衍生物的组合物在制备用于在患有阿尔茨海默病的受试者中减少斑形成以及减少斑的药物中的用途，其中所述细胞衍生物从分离的人脐带来源的细胞获得，其中所述分离的人脐带来源的细胞从基本上不含血液的人脐带组织获得，其中所述分离的细胞在培养中能够自我更新和扩增，其中所述细胞表达CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α和HLA-A、B、C且不表达CD31、CD34、CD45、CD117、CD141和HLA-DR、DP、DQ，其中所述细胞衍生物是细胞裂解物、条件培养基或其混合物，以及其中条件培养基是其中脐带组织来源的细胞已被培养并且随后被取出的培养基。
3. 权利要求1的用途，其中药物经配制用于局部施用所述分离的人脐带来源的细胞到神经斑位点。
4. 权利要求1的用途，其中药物经配制用于施用所述分离的人脐带来源的细胞到脑脊液。
5. 权利要求1、3或4任一项的用途，其中用电刺激预处理人脐带来源的细胞群。
6. 权利要求2的用途，其中药物经配制用于局部施用所述细胞衍生物到神经斑位点。
7. 权利要求2的用途，其中药物经配制用于施用所述细胞衍生物到脑脊液。
8. 权利要求1-7中任一项的用途，所述组合物还包含选自盐水、水性缓冲溶液、溶剂、人造脑脊液、分散剂组合物及其混合物的药学上可接受的载体和/或稀释剂。
9. 权利要求1-7中任一项的用途，其中所述人脐带来源的细胞包括遗传修饰以产生治疗上有用的基因产物或产生增强神经细胞存活、分化或细胞吞噬活性的药剂的细胞。 
10. 权利要求1-7中任一项的用途，其中所述人脐带来源的细胞包括遗传修饰以产生治疗上有用的基因产物或产生增强淀粉样蛋白斑降解或防止淀粉样蛋白斑形成的药剂的细胞。
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