DE102007059939A1 - Noncovalently crosslinked spherical polymer particles for separating biological substances and cells can be dissolved by heating or adding a metal-complexing agent - Google Patents

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    • C08J3/24Crosslinking, e.g. vulcanising, of macromolecules

Abstract

Noncovalently crosslinked spherical polymer particles for separating biological substances and cells can be dissolved by heating or adding a metal-complexing agent. Independent claims are also included for: (1) producing particles as above by solidifying a soluble polymer phase by cooling or adding an ionic crosslinker; (2) producing particles as above by dispersing a magnetic colloid, a ferrofluid or a magnetic substance with a particle size below 1 mu m in a soluble polymer phase and solidifying the polymer phase by cooling or adding an ionic crosslinker; (3) producing particles as above by suspending a polymer solution in an immiscible organic phase at a temperature above 40[deg] C and lowering the temperature to less than 30[deg] C; (4) producing particles as above by suspending a polymer solution in an immiscible organic phase and adding an ionic crosslinker.

Description

Die Erfindung betrifft sphärische, auflösbare Polymerpartikel die eine einfache Abtrennung bzw. Aufreinigung von Zellen und Biosubstanzen ermöglichen. Die Bindung der Biosubstanzen an die auflösbaren Polymermatrizes geschieht dabei über matrixgebundene Liganden, die die Biosubstanzen spezifisch zu binden vermögen. Durch Einkapselung magnetischer Nanopartikel in die Polymermatrix erhalten die Partikel magnetische Eigenschaften, die es dadurch ermöglichen, die gebundenen Biosubstanzen aus einer Mischung bzw Reaktionslösung durch einfaches Anlegen eines konventionellen Handmagneten an das Reaktionsgefäß zu isolieren. Die anschließende Gewinnung der abgetrennten Biosubstanzen geschieht durch einfache Zugabe eines Komplexbildners oder alternativ durch einfaches Erwärmen der Polymermatrix auf Temperaturen oberhalb 30°C, wobei diese aufgelöst wird und die abgetrennte Biosubstanz freigibt. Die Erfindung betrifft ferner die Herstellung und Verwendung der Polymerträger.The The invention relates to spherical, dissolvable polymer particles the one simple separation or purification of cells and biosubstances enable. The binding of the biosubstances to the dissolvable Polymer matrices are done via matrix-bound ligands, which are able to specifically bind the biosubstances. By Encapsulation of magnetic nanoparticles in the polymer matrix is obtained Particle magnetic properties that make it possible the bound biosubstances from a mixture or reaction solution by simply applying a conventional hand magnet to the Isolate reaction vessel. The subsequent Recovery of the separated biosubstances is done by simple Addition of a complexing agent or alternatively by simply heating the polymer matrix to temperatures above 30 ° C, wherein this is dissolved and releases the separated biosubstance. The invention further relates to the production and use of Polymeric carrier.

Verfahren zur Herstellung von sphärischen Polymerpartikeln ("Beads") sind mannigfach in der Literatur beschrieben. Die Herstellung sphärischer Partikel durch Eintropfen einer Alginatlösung in ein Reservoir eines ionogenen Vernetzers ("crosslinker") in Form von Kalziumchlorid zur Einkapselung verschiedener Substanzen wie Pflanzenzellen, Säugetierzellen, Hefezellen, Bakterien oder Therapeutika ist aus dem Stand der Technik bekannt ( K. Redenbaugh et al, Bio/Technology, 4, 797–801, 1986 ; T. Shiotani et al., Eur. J. Appl. Microbial. Biotechn., 13, 1981 ; Provost et al., Biotechnology Letters, 7, 247, 1985 ; DE 3012233 ; US-Patent 5,451,411 . Weitere Verfahren durch Dispergieren einer Alginatlösung in einer lipophilen Phase und anschließender ionogener Vernetzung mit Hilfe einer Ca2+-Lösung werden von L. W. Chan et al., J. Microencapsulation, 15(4), 409–420, 1998 beschrieben. Die dort beschriebenen Verfahren beziehen sich ausschließlich auf unmagnetische Mikropartikel, die nicht zur Substanzabtrennung verwendet werden können.Methods for the preparation of spherical polymer particles ("beads") are variously described in the literature. The preparation of spherical particles by dropping an alginate solution into a reservoir of an ionogenic crosslinker in the form of calcium chloride for the encapsulation of various substances such as plant cells, mammalian cells, yeast cells, bacteria or therapeutics is known from the prior art. K. Redenbaugh et al, Bio / Technology, 4, 797-801, 1986 ; T. Shiotani et al., Eur. J. Appl. Microbial. Biotechn., 13, 1981 ; Provost et al., Biotechnology Letters, 7, 247, 1985 ; DE 3012233 ; U.S. Patent 5,451,411 , Further methods by dispersing an alginate solution in a lipophilic phase and subsequent ionic crosslinking using a Ca 2+ solution are from LW Chan et al., J. Microencapsulation, 15 (4), 409-420, 1998 described. The methods described there relate exclusively to non-magnetic microparticles that can not be used for substance separation.

Covalent vernetzte magnetische Polymerpartikel für analytische, diagnostische oder medizinische Zwecke sind aus den Patentschriften PCT/WO 97/04862 , PCT/WO 89/11154 , PCT/WO 92/22201 sowie den US-Patentschriften 6,020,210 , 5,141,740 , 861,705 , hier als Referenz beigefügt, bekannt. Als Polymermatrix kommen für diese Zwecke vor allem Polyacrylate, Albumin, Silicagel, Polystyrol, Polyglutaraldehyd, Agarose-Polyaldehyd-Komposite, Polyvinylalkohol, Polyacrolein, Proteine und Polyoxyethylene zum Einsatz, die über gekoppelte Bioliganden bzw. Rezeptoren gemäß dem Affinitätsprinzip Analyten in Form von Antigenen, Antikörpern, Proteinen, Zellen, DNA-Fragmenten, Viren oder Bakterien im Rahmen der biochemisch-medizinischen Analytik und Diagnostik binden können. Ihre Einsatzgebiete betreffen somit die Auftrennung und Analyse von Biomolekülen oder die Markierung bestimmter Zellen unter Ausnutzung des klassischen Affinitätsprinzips.Covalently cross-linked magnetic polymer particles for analytical, diagnostic or medical purposes are known from the patents PCT / WO 97/04862 . PCT / WO 89/11154 . PCT / WO 92/22201 as well as the U.S. Patents 6,020,210 . 5,141,740 . 861.705 , hereby incorporated by reference. The polymer matrix used for these purposes are, in particular, polyacrylates, albumin, silica gel, polystyrene, polyglutaraldehyde, agarose-polyaldehyde composites, polyvinyl alcohol, polyacrolein, proteins and polyoxyethylenes which, via coupled bioligands or receptors according to the affinity principle, are analytes in the form of antigens, Antibodies, proteins, cells, DNA fragments, viruses or bacteria in the context of biochemical medical analysis and diagnostics can bind. Their fields of application thus concern the separation and analysis of biomolecules or the labeling of specific cells using the classical affinity principle.

Thermosensitive, magnetische Partikel aus N-Isopropylacrylamid-Copolymeren werden von Kondo und Fukuda, J. Ferment. Bioeng., Vol. 84, 337, 1997 , beschrieben. Das dort beschriebene Verfahren liefert jedoch weder eindeutige Magnetpartikel-Einkapselungen noch sphärische Partikel noch sind die beschriebenen Träger zur Biosubstanzabtrennung befähigt. Thermo- und pH-sensitive Polymergele u. a. aus N-Isopropylacrylamid, Hydroxyalkylcellulose, Polyethylenoxid, Polyethylenglycol, Polyvinylalkohol, Dextran, Alkylcellulose, Block-Polymeren aus Polyoxyethylen, Polyoxypropylen und Polyacrylsäure z. B. als Träger für biologisch-aktive Substanzen gehen aus den US-Patenten 5,674,521 ; 5,441,732 ; 5,599,534 ; 5,618,800 und 5,840,338 hervor. Temperatur- und pH-sensitive Polymere aus sich durchdringenden Polymernetzwerken, die u. a. aus Acrylaten, Acrylamiden, Urethanen oder Methacrylaten und Blockcopolymeren aus Polyoxyethylen oder Polyoxypropylen bestehen, sind Gegenstand des US Patentes 5,939,485 .Thermosensitive magnetic particles of N-isopropylacrylamide copolymers are used by Kondo and Fukuda, J. Ferment. Bioeng., Vol. 84, 337, 1997 , described. The method described there, however, provides neither clear magnetic particle encapsulations nor spherical particles, nor are the carriers described capable of biosubstance separation. Thermo- and pH-sensitive polymer gels including N-isopropylacrylamide, hydroxyalkylcellulose, polyethylene oxide, polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, dextran, alkylcellulose, block polymers of polyoxyethylene, polyoxypropylene and polyacrylic acid z. B. as a carrier for biologically active substances go out of the U.S. Patents 5,674,521 ; 5,441,732 ; 5,599,534 ; 5,618,800 and 5,840,338 out. Temperature and pH-sensitive polymers from interpenetrating polymer networks, which include acrylates, acrylamides, urethanes or methacrylates and block copolymers of polyoxyethylene or polyoxypropylene, are the subject of U.S. Patent 5,939,485 ,

In der Anmeldung PCT/EP 03/05614 sind induktiv aufheizbare, thermosensitive Polymerträger auf der Basis von N-Isopropylacrylamid und Acrylamid-Derivaten beschrieben, die aufgrund eines induktiven Stimulus dazu veranlaßt werden, eingekapselte Biosubstanzen oder Pharmaka freizugeben. Diese Träger sind jedoch rein für den therapeutischen Anwendungen konzipiert und nicht für Biosubstanzabtrennungen oder -ablösungen geeignet.In the application PCT / EP 03/05614 Inductively heatable, thermosensitive polymer carriers based on N-isopropylacrylamide and acrylamide derivatives are described, which are caused by an inductive stimulus to release encapsulated biosubstances or drugs. However, these carriers are designed purely for therapeutic applications and are not suitable for biosubstance separations or detachments.

Die zitierten magnetischen und unmagnetischen Polymerträger sowie alle anderen aus dem Stand der Technik bekannten Polymerpartikel sind, sofern sie für die Biosubstanzabtrennung entwickelt worden, nicht in der Lage, eine einfache Biosubstanzwiedergewinnung zu ermöglichen. Zwar werden von diversen Herstellern magnetische Polymerträger angeboten, die sehr gute Biosubstanzabtrennleistungen aufweisen, die anschließende Wiedergewinnung der Biosubstanzen gestaltet sich jedoch sehr kompliziert. Dies betrifft vor allem die im Zuge der Gen- und Zelltechnologie immer stärker ins Interesse gerückte Zellisolierung. So werden bei dem Verfahren der Firma Miltenyi die auf den Zellen anhaftenden Nanopartikel überhaupt nicht abgelöst, da durch die Feinheit der Nanopartikel (ca. 50 nm) keine Einschränkungen bzgl. der weiteren Analysenschritte auftreten sollen. Bei dieser Technik ein aufwendiges, separates magnetisches Abtrennsystem erforderlich. Im Gegensatz dazu werden bei dem Zellseparationsverfahren der Firma Invitrogen/Dynal Liganden-tragende Oligonucleotid-Linker als Fänger der Zellen benutzt, die nach dem magnetischen Separationsschritt mittels enzymatischer Spaltung vom Magnetträger abgetrennt werden. Auch kommen bei dem Verfahren dieser Firma spezielle Ablösungspartikel zum Einsatz, die die eigentliche Zellwiedergewinnung erschweren. Beide Verfahren sind aufwendig, kosten Zeit und sind in bezug auf die Abtrennverfahrensweisen (Miltenyi) nicht ideal.The cited magnetic and non-magnetic polymer carriers, as well as all other polymer particles known in the art, unless developed for biosubstance separation, are unable to facilitate easy biosubstance recovery. Although magnetic polymer carriers are offered by various manufacturers, which have very good Biosubstanzabtrennleistungen, the subsequent recovery of biosubstances designed but very complicated. Above all, this concerns cell isolation, which has become increasingly interesting in the course of gene and cell technology. Thus, in the process of Miltenyi, the nanoparticles adhering to the cells are not detached at all, since the fineness of the nanoparticles (about 50 nm) is said to impose no restrictions on the further analysis steps. This technique requires a complicated, separate magnetic separation system. In contrast, the Invitrogen / Dynal cell separation method employs ligand-bearing oligonucleotide linkers as scavengers of the cells that are after the magnetic separation step are separated by enzymatic cleavage from the magnetic carrier. Also come in the process of this company special separation particles are used, which complicate the actual cell recovery. Both methods are expensive, time consuming and not ideal in terms of the separation procedures (Miltenyi).

Aufgabe der vorliegenden Erfindung sind Verfahren und Produkte, mittels derer eine einfache Abtrennung und Wiedergewinnung der separierten Biosubstanzen ermöglicht wird.task The present invention relates to methods and products by means of derer a simple separation and recovery of the separated biosubstances is possible.

Kernpunkt der neuen Separationsmedien sind Polymerträger in Form von Mikro- und Nanopartikeln, die sich nach dem Abtrennschritt in einfacher Weise auflösen lassen. Dies wird überraschenderweise entweder durch Zugabe eines Komplexbildners zu ionogen vernetzten Polymerträgern oder durch bloße Wärmezufuhr zu präzipitierten Polymerpartikeln bewerkstelligt.crux The new separation media are polymer carriers in the form of microparticles and nanoparticles that form after the separation step in easy to dissolve. This will be surprising either crosslinked by addition of a complexing agent to ionic Polymer carriers or by mere heat accomplished to precipitated polymer particles.

Die Aufgabe wird gemäß der Erfindung dadurch gelöst, dass spezielle Polymere oder Copolymere als Basismaterial für die Herstellung der Partikel verwendet werden, die entweder in einem bestimmten Lösungsmittel nur bei höheren Temperatur löslich und bei Raumtemperatur in demselben Lösungsmittel nicht löslich sind oder durch ionogene crosslinker verfestigt werden. Beispiele für solche, die Erfindung jedoch in keiner Weise einschränkenden Polymere sind Alginate, Agarose, Polyacrylate, Polyvinylalkohol, Polyäther, Polyoxyäthylen, Polypropylenoxide, Polyethylenglykolen, Gelatine, Chitosan, Polysaccharide oder Polysaccharid-Derivate oder (Block)copolymere dieser Substanzen. Die aus diesen beispielhaft aufgeführten Polymeren synthetisierten Polymerpartikel können sowohl als magnetische als auch unmagnetische Träger eingesetzt werden.The Problem is solved according to the invention characterized that special polymers or copolymers as base material for The production of the particles can be used either in one certain solvents soluble only at higher temperature and at room temperature in the same solvent not are soluble or solidified by ionic crosslinkers become. Examples of such, but the invention in no Way restricting polymers are alginates, agarose, Polyacrylates, polyvinyl alcohol, polyethers, polyoxyethylene, Polypropylene oxides, polyethylene glycols, gelatin, chitosan, polysaccharides or polysaccharide derivatives or (block) copolymers of these substances. Synthesized from these exemplified polymers Polymer particles can be both magnetic as well non-magnetic supports are used.

Für die Synthese der auflösbaren, magnetischen Polymerträger besteht der Ausgangspunkt in der Synthese magnetischer Nanopartikel in kolloiddisperser- oder Pulverform, die der Polymerausgangslösung zugemischt werden. Anschließend werden die Polymerlösungen in heterogener Phase zu perlförmigen ("sphärischen") Partikeln verfestigt bzw. vernetzt (Inverse Suspensionsvernetzung). Während dieses Verfestigungs- bzw. Vernetzungsprozesses werden die magnetischen Nanopartikel in die Polymerpartikel eingekapselt. Als magnetische Substanzen kommen ferromagnetische, ferrimagnetische oder superparamagnetische Nanopartikel zum Einsatz. Die zu diesem Zweck vorzugsweise verwendete Substanz ist Magnetit (Fe3O4) oder y-Fe2O3. Die Präparation solcher Verbindungen ist aus dem Stand der Technik allgemein bekannt: Shinkai et al., Biocatalysis, Vol. 5, 61, 1991 , Kondo et al., Appl. Microbiol. Biotechnol., Vol. 41, 99, 1994 , Lee et al., IEEE Trans. Magn., Vol. 28, 3180, 1992 . Analoge magnetische Kolloide, die vorwiegend aus Magnetit, Eisenoxid (Fe2O3) oder Eisenoxyhydroxid (FeOOH) bestehen und eine Partikelgröße von 5–100 nm aufweisen und u. a. als Kontrastmittel in der NMR-Diagnostik, als Informationsspeichermedien, Abdicht- oder Dämpfmittel oder zur Zellmarkierung Verwendung finden, gehen aus verschiedenen Patentschriften – hier als Referenz beigefügt – hervor: DE-OS 350 8000 , DE-OS 39 33 210 , US Patente 5,492,814 und 5,221,322 . Weitere Substanzen, die die oben beschriebenen Eigenschaften erfüllen und damit für eine Einkapselung in die erfindungsgemäßen Polymermatrizes geeignet sind, sind z. B. Ferrite der allgemeinen Formel MOFe2O3, worin M ein zweiwertiges Metallion oder ein Gemisch aus zwei zweiwertigen Metallionen ist.For the synthesis of dissolvable magnetic polymer carriers, the starting point is the synthesis of magnetic nanoparticles in colloidal disperse or powder form, which are added to the polymer starting solution. Subsequently, the polymer solutions are solidified or crosslinked in heterogeneous phase to bead-shaped ("spherical") particles (inverse suspension crosslinking). During this solidification or crosslinking process, the magnetic nanoparticles are encapsulated in the polymer particles. Magnetic substances are ferromagnetic, ferrimagnetic or superparamagnetic nanoparticles. The substance preferably used for this purpose is magnetite (Fe 3 O 4 ) or y-Fe 2 O 3 . The preparation of such compounds is well known in the art: Shinkai et al., Biocatalysis, Vol. 5, 61, 1991 . Kondo et al., Appl. Microbiol. Biotechnol., Vol. 41, 99, 1994 . Lee et al., IEEE Trans. Magn., Vol. 28, 3180, 1992 , Analogous magnetic colloids consisting predominantly of magnetite, iron oxide (Fe 2 O 3 ) or iron oxyhydroxide (FeOOH) and having a particle size of 5-100 nm and, inter alia, as contrast agents in NMR diagnostics, as information storage media, sealing or damping means or Cell marking are known from various patents - incorporated by reference herein: DE-OS 350 8000 . DE-OS 39 33 210 . US Patents 5,492,814 and 5,221,322 , Other substances which fulfill the properties described above and are thus suitable for encapsulation in the polymer matrices according to the invention are, for. Example, ferrites of the general formula MOFe 2 O 3 , wherein M is a divalent metal ion or a mixture of two divalent metal ions.

Zur Herstellung von Magnetit oder γ-Fe2O3 wird durchweg von Eisen(III)- und Eisen(II)-Salzlösungen mit variierenden molaren Verhältnissen (2:1, 0,5:1–4:1) ausgegangen, die anschließend durch Zugabe von Basen oder durch Hitzezufuhr in entsprechend kolloidale Magnetdispersionen („Magnetkolloide") überführt werden. Um eine besonders durch die vander-Waals'schen Kräfte bedingtes Agglomeration der feinen Magnetpartikel zu verhindern, werden oberflächenaktive Stoffe zugesetzt, die allgemein unter der Bezeichnung „Tenside", „Emulgatoren" oder „Stabilisatoren" bekannt sind. Sie verhindern das Absetzen des Kolloides in der wäßrigen Phase. Stabilisierte Dispersionen solcher Art sind auch unter der Bezeichnung „Ferrofluide” bekannt und werden auch kommerziell angeboten: Ferrofluidics Corp., USA; Advanced Magnetics, USA; Taibo Co, Japan; Liquids Research Ltd., Wales; Schering AG, Deutschland. Die Art des verwendeten Stabilisators hängt, wie dem Fachmann auf diesem Gebiet bekannt, von dem jeweiligen Ziel in bezug auf Feinheit, Mischbarkeit mit dem Polymeren oder erreichbare Konzentration in der Polymerlösung ab. Geeignete Stabilisatoren hierfür sind entweder kationischer-, anionischer oder nicht-ionischer Natur. Die Erfindung in keiner Weise einschränkende Beispiele hierfür sind: Polyacrylsäure, Alkylarylpolyethersulfonate, Citrate, Ölsäure, Alkylnaphtalensulfonate, Laurylsulfonat, Phosphatester, Alkoholethersulfate, Alkylarylpolyethersulfate, Polystyrolsulfonsäure, Pyrophosphat oder Petroliumsulfonate als anionische Substanzen, Polyethylenimine oder Dodecyltrimethylammoniumchlorid als kationische Tenside sowie Alkylaryloxypolyethoxyethanole, Polyethylenglykole, Nonylphenoxypolyglycidol, Polyvinylalkohole, Polyvinylpyrrolidon oder Nonylphenol als nichtionische Substanzen. Die Teilchengrößen der mit Hilfe der vorgenannten Präparationsweisen dargestellten Magnetkolloide hängen, wie allgemein bekannt, von verschiedenen Versuchsparametern wie dem Eisensalzverhältnis, der Basenkonzentration, dem Basentyp (NaOH, NH3), dem pH-Wert, der Temperatur sowie der Nachbehandlungstemperatur ab. Die für die erfindungsgemäßen Mittel geeigneten Magnetkolloide weisen durchweg eine Teilchengröße von 5–800 nm, vorzugsweise eine solche von 20–200 nm auf. Dadurch ist gewährleistet, daß die Magnetkolloide bei der anschließenden Einkapselung in die Polymermatrix in kolloiddisperser Form vorliegen. Durch gezielte Zudosierung der entsprechenden Mengen des betreffenden Kolloids bzw Ferrofluids lassen sich die magnetischen Eigenschaften und damit das magnetische Separationsverhalten gezielt steuern. Die Konzentrationen der Magnetkolloide in der Polymerlösung betragen in der Regel 10 bis 40 Gew.-%.For the production of magnetite or γ-Fe 2 O 3 , it is assumed that iron (III) and iron (II) salt solutions with varying molar ratios (2: 1, 0.5: 1-4: 1) are used, which are subsequently passed through In order to prevent agglomeration of the fine magnetic particles caused by the van der Waals forces in particular, surfactants are added, generally referred to as "surfactants". , "Emulsifiers" or "stabilizers" are known. They prevent settling of the colloid in the aqueous phase. Stabilized dispersions of this type are also known under the name "ferrofluids" and are also commercially available: Ferrofluidics Corp., USA; Advanced Magnetics, USA; Taibo Co, Japan; Liquids Research Ltd., Wales; Schering AG, Germany. The type of stabilizer used, as known to those skilled in the art, depends on the particular target in terms of fineness, miscibility with the polymer, or attainable concentration in the polymer solution. Suitable stabilizers for this purpose are either cationic, anionic or non-ionic in nature. The invention are in no way limiting examples thereof: polyacrylic acid, alkylarylpolyethersulfonates, citrates, oleic acid, alkylnaphthalenesulfonates, laurylsulfonate, phosphate esters, alcohol ether sulfates, alkylarylpolyethersulfates, polystyrenesulfonic acid, pyrophosphate or petroleum sulfonates as anionic substances, polyethyleneimines or dodecyltrimethylammonium chloride as cationic surfactants and also alkylaryloxypolyethoxyethanols, polyethylene glycols, nonylphenoxypolyglycidol, Polyvinyl alcohols, polyvinylpyrrolidone or nonylphenol as nonionic substances. The particle sizes of the magnetic colloids shown with the aid of the abovementioned preparation methods depend, as is generally known, on various test parameters such as the iron salt ratio, the base concentration, the base type (NaOH, NH 3 ), the pH, the temperature and the aftertreatment temperature from. The magnetic colloids suitable for the compositions of the invention have a particle size of 5-800 nm, preferably one of 20-200 nm. This ensures that the magnetic colloids are present in the subsequent encapsulation in the polymer matrix in colloidally disperse form. By targeted addition of the appropriate amounts of the respective colloid or ferrofluid, the magnetic properties and thus the magnetic separation behavior can be controlled in a targeted manner. The concentrations of the magnetic colloids in the polymer solution are generally from 10 to 40% by weight.

Um eine möglichst homogene bzw. feine Dispersion der Magnetteilchen in der Polymerlösung zu erhalten, wird vorteilhafterweise vor der inversen Suspension die Magnetkolloid-Polymermischung kurzzeitig mit Hilfe eines Ultraschallfingers oder in einem Ultraschallbad beschallt. Für die Synthese der erfindungsgemäßen Polymerträger kommen je nach Polymerart die Suspensionspräzipitation und die ionogene Suspensionsvernetzung zum Einsatz. Bei der Suspensionspräzipitation werden die Polymere in solchen Lösungsmitteln gelöst, die nur in der Hitze als Lösungsmittel fungieren, bei niedrigeren Temperaturen oder Raumtemperatur jedoch nicht. In der Praxis hat sich dabei bewährt, die Polymeren zunächst bei höheren Temperaturen in dem jeweiligen Lösungsmittel zu lösen und nach Zugabe und Vermischung des Magnetkolloides diese Mischung in eine vorgeheizte organische, nicht mit Wasser mischbare Phase unter Rühren zu suspendieren. Diese Suspension wird dann einige Minuten bei der erhöhten Temperatur weitergerührt und anschließend auf niedrigere Temperatur heruntergekühlt. Wahlweise kann, um den Prozeß zu beschleunigen, auch ein Eiswasserbad benutzt werden. Beim anschließenden Abkühlungsprozeß auf Raumtemperatur bzw. Temperaturen < 40°C fallen die Polymere als sphärische Partikel aus. Beispiele für diese Synthesetechnologie in Frage kommenden Polymer-Lösungsmittelsysteme sind: Stärke-Wasser, Collagen-Wasser, Cellulose-ZnCl2-Lösung, Polyvinylalkohol-Dimethylsulfoxyd, Polyvinylalkohol-Ethylenglykol, Polyvinylalkohol-Glycerin, Gelatine-Wasser, Agarose-Wasser. Als organische Phase werden durchweg organische Lösungsmittel wie chlorierte Kohlenwasserstoffe, Xylol, Toluol, Benzol oder Öle in Form von Pflanzen-, Silikon- oder Mineralölen, die eine Viskosität zwischen 40 und 150 cp aufweisen, verwendet. Bei den Silikonölen liegen die Viskositäten im Bereich von 200 bis 800 cp. Die Volumenverhältnisse Polymerphase zu organischer Phase liegen durchweg zwischen 0,1 und 0,2.In order to obtain the most homogeneous or fine dispersion of the magnetic particles in the polymer solution, advantageously before the inverse suspension, the magnetic colloid polymer mixture is sonicated for a short time with the aid of an ultrasonic finger or in an ultrasonic bath. Depending on the type of polymer, suspension precipitation and ionic suspension crosslinking are used for the synthesis of the polymer carriers according to the invention. In suspension precipitation, the polymers are dissolved in solvents which act as solvents only in the heat, but not at lower temperatures or room temperature. In practice, it has proven useful to first dissolve the polymers in the respective solvent at elevated temperatures and, after addition and mixing of the magnetic colloid, to suspend this mixture with stirring in a preheated organic, water-immiscible phase. This suspension is then stirred for a few minutes at the elevated temperature and then cooled down to a lower temperature. Optionally, to speed up the process, an ice water bath can also be used. In the subsequent cooling process to room temperature or temperatures <40 ° C, the polymers precipitate out as spherical particles. Examples of polymer technology solvent systems which may be used in this synthesis technology are: starch-water, collagen-water, cellulose-ZnCl 2 solution, polyvinyl alcohol-dimethyl sulfoxide, polyvinyl alcohol-ethylene glycol, polyvinyl alcohol-glycerol, gelatin-water, agarose-water. As the organic phase, organic solvents such as chlorinated hydrocarbons, xylene, toluene, benzene or oils in the form of vegetable, silicone or mineral oils having a viscosity between 40 and 150 cp are used throughout. For the silicone oils, the viscosities are in the range of 200 to 800 cp. The volume ratios of polymer phase to organic phase are consistently between 0.1 and 0.2.

Für die Synthese der Polymerträger mittels des inversen Suspensionspräzipitations-Verfahrens werden in der Regel 1 bis 25%ige, vorzugsweise 5 bis 10 Gew.-%ige Polymerlösungen verwendet. Die Konzentrationen an zugesetztem Magnetkolloid beträgt in der Regel 10 bis 40 Gew.-%, bezogen auf die Polymerphase.For the synthesis of polymer carriers by the inverse suspension precipitation method usually 1 to 25%, preferably 5 to 10 wt .-% polymer solutions used. The concentrations of added magnetic colloid is usually 10 to 40 wt .-%, based on the polymer phase.

In bezug auf die Qualität der Suspensionen und Teilchengeometrien (Kugelform) hat sich für alle erfindungsgemäßen Polymerträger als vorteilhaft herausgestellt, den organischen Phasen ein bis drei verschiedene oberflächenaktive Substanzen zuzugeben. Diese werden vorzugsweise aus der Gruppe Polyethylen-propylenoxid-Blockcopolymere, Polyoxyethylenaddukte, Polyoxyethylensäuren, Alkylsulfosuccinate, Sorbitan-Fettsäureester, Polyoxyethylensorbitolester, Fettalkoholpolyethylenglykolether, Alkylphenoxypolyethoxyethanole, Fettalkoholglycolether-Phosphorsäureester, Sucrosestearat-Palmitatester, Polyoxyethylenalkohole, Polyoxyethylensorbitan-Fettsäurester und/oder Polyglycerinester ausgewählt. Substanzen dieser Art sind u. a. auch unter der Warenbezeichnung Hostaphat, Isofol, Synperonic, Span, Tween, Brij, Plurafac, Lutensol, Aerosol OT, Hypermer, Myrj, Triton, Arlacel, Dehymuls, Eumulgin, Renex, Lameform, Pluronic oder Tetronic im Handel erhältlich. Um die während des Suspensionsprozesses gebildeten Polymertröpfchengröße zu kleinen Werten hin zu verschieben (< 5 μm), hat es sich als vorteilhaft erwiesen, der organischen Phase 0,05–15 Gew.-%, vorzugsweise 0,5–5 Gew.-%, eines oder mehrerer der oben beschriebenen Tenside zuzugeben.In with regard to the quality of the suspensions and particle geometries (Spherical shape) has for all invention Polymer carrier proved to be beneficial to the organic Phases one to three different surfactants admit. These are preferably selected from the group of polyethylene-propylene oxide block copolymers, Polyoxyethylene adducts, polyoxyethylene acids, alkylsulfosuccinates, Sorbitan fatty acid esters, polyoxyethylene sorbitol esters, fatty alcohol polyethylene glycol ethers, Alkylphenoxypolyethoxyethanols, fatty alcohol glycol ether phosphoric acid esters, Sucrose stearate palmitate ester, polyoxyethylene alcohols, polyoxyethylene sorbitan fatty acid esters and / or polyglycerol esters. Substances of this Art are u. a. also under the trade name Hostaphat, Isofol, Synperonic, Span, Tween, Brij, Plurafac, Lutensol, Aerosol OT, Hypermer, Myrj, Triton, Arlacel, Dehymul, Eumulgin, Renex, Lameform, Pluronic or Tetronic commercially available. To the during the suspension process formed polymer droplet size To move to small values (<5 microns), it has to be advantageous proven, the organic phase 0.05-15 wt .-%, preferably 0.5-5% by weight of one or more of those described above Add surfactants.

Der Suspensionsvorgang wird üblicherweise mit Hilfe eines konventionellen KPG-Rührers ("KPG") oder eines Dispergierwerkzeuges bewerkstelligt. Für Teilchengrößen im Bereich von 20–500 μm genügen herkömmliche Propellerrührer mit Rührgeschwindigkeiten zwischen 600 und 1500 U/min. Teilchengrößen von < 10 μm werden in der Regel unter Benutzung von Dispergierwerkzeugen, die nach den Rotor-Stator-Prinzip funktionieren (z. B. Ultra-Turrax, IKA-Werke, BRD) mit Rührgeschwindigkeiten von > 2000 U/min. erreicht.Of the Suspension process is usually using a conventional KPG stirrer ("KPG") or a dispersing tool accomplished. For particle sizes in the range of 20-500 microns satisfy conventional propeller stirrer with stirring speeds between 600 and 1500 U / min. Particle sizes of <10 microns are usually using dispersing tools that use the rotor-stator principle function (eg Ultra-Turrax, IKA-Werke, FRG) with stirring speeds from> 2000 rpm. reached.

In Erweiterung der oben dargelegten erfindungsgemäßen Mittel und Verfahren können auflösbare Polymerträger überraschenderweise auch dadurch hergestellt werden, daß wäßrige Lösungen positiv oder negativ geladener Polymere in einer mit Wasser nicht mischbaren organischen Phase suspendiert und durch Zugabe entgegengesetzt geladenen Substanz während des Suspensionsvorganges zu sphärischen Polymerpartikeln verfestigt werden. Beispiele für solche, die Erfindung jedoch in keiner Weise einschränkende Stoffe sind: Polyacrylsäure, Alginate, carboxylierte Polysaccharide, Chitosan, Nukleinsäuren, Proteine und Polyaminosäuren. Die Herstellung dieser Polymerträger geschieht üblicherweise mittels einer 1 bis 10%ige (w/v) wäßrigen Lösung. Für die Synthese magnetischer Teilchen kann der Polymerlösung ein entsprechendes Magnetkolloid gemäß den obigen Angaben zugemischt werden. Während der anschließenden Suspension in der organischen, mit Wasser nicht-mischbaren Phase werden durch Zugabe der entgegengesetzt geladenen Substanzen, die suspendierten Polymertröpfchen zu festen, sphärischen Partikeln vernetzt. Für diese Art Polymerträger kommen z. B. folgende Vernetzer-Polymer-Kombinationen zur Anwendung: Kalziumchlorid-Polymethacrylsäure, Kalziumchlorid-Polyacrylsäure, Kalziumchlorid-Alginat, Kalziumchlorid-Nukleinsäure, Kalziumchlorid-Polyglutaminsäure, Polyphosphat-Polyethylenimin, Polyphosphat-Chitosan, Spermidin-Nukleinsäure, Spermin-Nukleinsäure, Spermin-Polypeptide, Protamin-Polyglutaminsäure in Frage. Als organische Phase haben sich besonders Pflanzen- und Siliconöle mit einer Viskosität zwischen 40 und 800 cp bewährt. Zur Herstellung magnetischer Polymerträger werden den Polymerlösungen analog den oben beschriebenen Verfahren solche Ferrofluide zugemischt, die mit einer nicht geladenen oberflächenaktiven Substanz stabilisiert sind.In extension of the compositions and methods of the invention set forth above, it is possible to prepare dissolvable polymer supports by suspending aqueous solutions of positively or negatively charged polymers in a water-immiscible organic phase and solidifying them by adding oppositely charged substance during the suspension process to form spherical polymer particles. Examples of such, but the invention are in no way limiting substances: polyacrylic acid, alginates, carboxylated polysaccharides, chitosan, nucleic acids, proteins and polyamino acids. The preparation of these polymer carrier usually takes place by means of a 1 to 10% (w / v) aqueous solution. For the synthesis of magnetic particles, the polymer solution may be a corresponding magnetic colloid id be mixed according to the above information. During the subsequent suspension in the organic, water-immiscible phase, by adding the oppositely charged substances, the suspended polymer droplets are crosslinked to form solid, spherical particles. For this type of polymer carrier z. For example, the following crosslinker-polymer combinations are used: calcium chloride-polymethacrylic acid, calcium chloride-polyacrylic acid, calcium chloride alginate, calcium chloride nucleic acid, calcium chloride-polyglutamic acid, polyphosphate-polyethyleneimine, polyphosphate-chitosan, spermidine nucleic acid, spermine nucleic acid, spermine polypeptides , Protamine polyglutamic acid in question. As the organic phase, especially vegetable and silicone oils having a viscosity of between 40 and 800 cp have proven to be useful. For the preparation of magnetic polymer carriers, the polymer solutions are admixed, analogously to the processes described above, with those ferrofluids which are stabilized with an uncharged surface-active substance.

Die Herstellung der sphärischen Partikel geschieht während der Suspension der Polymerlösung durch Zugabe eines geladenen Vernetzers, der die Polymertröpfchen innerhalb weniger Minuten in feste, perlförmige Partikel umwandelt. Es fallen je nach Rührbedingungen und Polymerkonzentration Partikel mit einer Größe zwischen 5 und 500 μm an. Durch Erhöhung der Rührgeschwindigkeit (500 bis 3000 U/min) und Verringerung der Polymerkonzentrationen (< 5 Gew.-%) lassen sich die Teilchen zu kleineren Größen hin verschieben; umgekehrt werden die Partikel mit abnehmender Rührgeschwindigkeit und steigender Polymerkonzentration entsprechend vergrößert.The Production of the spherical particles happens during the suspension of the polymer solution by adding a charged Crosslinker, the polymer droplets within less Minutes into solid, bead-shaped particles. It's falling Depending on the stirring conditions and polymer concentration particles with a size between 5 and 500 microns. By increasing the stirring speed (500 to 3000 rpm) and reducing the polymer concentrations (<5% by weight) the particles shift to smaller sizes; the particles are reversed with decreasing stirring speed and increasing polymer concentration increased accordingly.

Für den Einsatz als Separationsmedien werden an die Polymerträger im letzten Präparationsschritt Bioliganden gekoppelt, die Biosubstanzen spezifisch zu binden in der Lage sind. Mit der Bezeichnung "Bioliganden" werden im folgenden Antikörper, Antigene, Zellrezeptoren, Nukleinsäuren, Polysaccharide, Proteine, Oligosaccharide, Oligonukleotide oder Enzymsubstrate definiert. Diese trägergebundenen Bioliganden ermöglichen nun die komplementäre Bindung der Biosubstanzen an den Polymerträger, wobei unter "Biosubstanz" Antikörper, Zellen, Bakterien, Antigene, Proteine, Toxine, Viren, Enzyme, Nukleinsäuren, Ribonukleinsäuren zusammengefaßt werden. Die covalente Kopplung der Bioliganden an die auflösbare Polymermatrix geschieht dabei nach den bekannten Verfahren, die aus der Affinitätschromatographie hinlänglich bekannt sind (vgl. „Methods in Enzymology", Mosbach Hrsg, Vol. 135, Part B, Academic Press, 1987, 30 ). Kopplungsagenzien, die hier zum Einsatz gelangen, sind z. B.: Tresylchlorid, Tosylchlorid, Bromcyan, Chloressigsäureanhydrid, Carbodiimide, Epichlorhydrin, Diisocyanat, Diisothiocyanate, 2-Fluor-1-methyl-pyridiniumtoluol-4-sulfonat, 1,4-Butandiol-diglycidyläther, N-Hydroxysuccinimid, Chlorcarbonat, Isonitril, Hydrazid, Glutaraldehyd, 1,1',-Carbonyl-diimidazol. Darüber hinaus lassen sich die Bioliganden auch über reaktive heterobifunktionelle Verbindungen, die sowohl mit den funktionellen Gruppen der Polymermatrix (Carboxyl-, Hydroxyl-, Sulfhydryl-, Aminogruppen) als auch mit dem Bioliganden eine chemische Bindung eingehen können, koppeln. Beispiele im Sinne der Erfindung sind: Succinimidyl-4-(N-maleiimido-methyl)-cyclohexan-1-carboxylat, 4-Succinimidyloxycarbonyl-α-(2-pyridyldithio)toluol, Succinimidyl-4-(p-maleimidophenyl)butyrat, N-γ-Maleimidobutyryloxysuccinimidester, 3-(2-Pyridyldithio)propionylhydrazid, Sulfosuccinimidyl-2-(p-azidosalicylamido)ethyl-1,3'-dithiopropionat. Ein Fachmann auf diesem Gebiet kann diese Kopplungsagenzien jeder Zeit entsprechend den Angaben aus der einschlägigen Literatur nutzen.For use as separation media, bioligands which are capable of specifically binding biosubstances are coupled to the polymer carriers in the last preparation step. The term "bioligands" in the following antibodies, antigens, cell receptors, nucleic acids, polysaccharides, proteins, oligosaccharides, oligonucleotides or enzyme substrates are defined. These carrier-bound bioligands now allow the complementary binding of the biosubstances to the polymer carrier, wherein "biosoluble" antibodies, cells, bacteria, antigens, proteins, toxins, viruses, enzymes, nucleic acids, ribonucleic acids are summarized. The covalent coupling of the Bioliganden to the dissolvable polymer matrix is done by the known methods which are well known from affinity chromatography (see. "Methods in Enzymology", Mosbach ed., Vol. 135, Part B, Academic Press, 1987, 30 ). Coupling agents that are used here are, for. B .: tresyl chloride, tosyl chloride, cyanogen bromide, chloroacetic anhydride, carbodiimides, epichlorohydrin, diisocyanate, diisothiocyanates, 2-fluoro-1-methylpyridinium toluene-4-sulfonate, 1,4-butanediol diglycidyl ether, N-hydroxysuccinimide, chlorocarbonate, isonitrile, hydrazide , Glutaraldehyde, 1,1 ', - carbonyldiimidazole. In addition, the bioligands can also be coupled via reactive heterobifunctional compounds that can form a chemical bond both with the functional groups of the polymer matrix (carboxyl, hydroxyl, sulfhydryl, amino groups) and with the bioligand. Examples within the meaning of the invention are: succinimidyl-4- (N-maleimido-methyl) -cyclohexane-1-carboxylate, 4-succinimidyloxycarbonyl-α- (2-pyridyldithio) toluene, succinimidyl-4- (p-maleimidophenyl) butyrate, N gamma-maleimidobutyryloxysuccinimide ester, 3- (2-pyridyldithio) propionylhydrazide, sulfosuccinimidyl-2- (p-azidosalicylamido) ethyl-1,3'-dithiopropionate. A person skilled in the art can use these coupling agents at any time as described in the relevant literature.

Für den Einsatz als Zellseparationsmedien werden als Bioliganden vor allem Antikörper gegen Zellrezeptoren ("cluster of differentiation") verwendet. Beispiele hierfür, die Erfindung jedoch in keiner Weise einschränkend, sind: CD2, CD3, CD4, CD8, CD20, CD19, CD14, CD15, CD34, CD56, CD95 oder CD45. Über diese Bioliganden lassen sich beispielsweise T-Zellen, B-Lymphozyten, Monozyten, Granulozyten, Stammzellen, Tumorzellen, natürliche Killer oder Leukozyten an die Matrix binden. Für die zielgerichtete Applikation mittels Liganden-gekoppelter Polymerträger kommen vor allem die erfindungsgemäßen Polymerträger in Frage, die über funktionelle Gruppen in Form von Carboxyl-, Hydroxyl- oder Aminogruppen verfügen wie z. B. Polyacrylate, Collagen, Stärke, Gelatine, Agarose, Polyvinylalkohol, Polyaminosäuren oder Alginat.For their use as cell separation media are known as bioligands all antibodies against cell receptors ("cluster of differentiation") used. Examples of this, but the invention in no Restrictive are: CD2, CD3, CD4, CD8, CD20, CD19, CD14, CD15, CD34, CD56, CD95 or CD45. About these bioligands For example, T cells, B lymphocytes, monocytes, granulocytes, Stem cells, tumor cells, natural killers or leukocytes bind to the matrix. For the targeted application Above all, ligand-coupled polymer carriers are used the polymer carrier according to the invention in Question about functional groups in the form of carboxyl, Hydroxyl or amino groups have such. B. polyacrylates, Collagen, starch, gelatin, agarose, polyvinyl alcohol, Polyamino acids or alginate.

Alternativ zu der direkten Anbindung der Zellen über die zellspezifischen Liganden (primäre anti-CD-Antikörper) kann die Zellanbindung auch über sekundäre Antikörper bewerkstelligt werden, die an die Träger covalent gebunden sind. Diese sekundären Antikörpern sind befähigt, eine Bindung mit dem Fc-Teil des primären Antikörpers einzugehen. Zur Zellseparation werden dazu die zu trennenden Zellen im ersten Schritt mit den primären Antikörper beschichtet und anschließend mit dem Sekundär-Antikörper-gekoppelten Träger inkubiert. Die sekundären Antikörper sind kommerziell erhältlich und werden analog den Verfahren für die primären Antikörper an die Polymermatrix gebunden. Die Beschichtung (coating) der Zellen mit primären Antikörpern ist aus dem Stand der Technik hinlänglich bekannt und kann von einem Fachmann auf diesem Gebiet jeder Zeit vorgenommen werden.alternative to the direct attachment of cells across the cell-specific Ligands (primary anti-CD antibodies) may be the Cell attachment also via secondary antibodies be accomplished covalently bound to the carrier are. These secondary antibodies are capable of a bond with the Fc portion of the primary antibody enter into. For cell separation, the cells to be separated in first step coated with the primary antibody and subsequently with the secondary antibody-coupled Carrier incubated. The secondary antibodies are commercially available and are analogous to the methods for the primary antibodies to the polymer matrix bound. The coating of the cells with primary antibodies is well known in the art and may be of be made by a person skilled in the art at any time.

Eine wichtige Erweiterung des oben beschriebenen Anwendungsspektrums vor allem im Hinblick auf die Zellabtrennung ergibt sich aus der Kopplung von Antikörpern bzw. Antikörper-Fragmenten, die gegen ein Tumorzellantigen bzw. -marker gerichtet sind. Dadurch eröffnet sich die Möglichkeit, Tumorzellen aus Gewebe- oder Blutproben zu isolieren, die nach entsprechender Ablösung von dem Polymerträger weiteren Tests, z. B. im Rahmen einer Frühdiagnostik, unterzogen werden können. Beispiele für solche, die Erfindung jedoch nicht einschränkende Tumormarker bzw. -Antigene sind: Caspase-8 (CASP-8), alpha-Fetoprotein (AFP), carzinoembryonales Antigen (CEA), tumorassoziiertes Transplantationsantigen (TATA), humaner Epidermis Rezeptor (HER-2), Onkofetales Antigen, tumorspezifisches Transplantationsantigen (TSTA), p53-Protein, Melanom-Antigene (MAGE-1, MAGE-B2, DAM-6, DAM-10), Mucin (MUC1), Helicose-Antigen (HAGE), humanes Papilloma Virus (HPV-E7), CD3, CD10, CD20, CD28, CD30, CD25, CD64, Interleukin-2, Interleukin-9, Mamma-CA-Antigen, Prostata-spezifisches Antigen (PSA), GD2-Antigen, Melanocortin-Rezeptor (MCIR), 138H11-Antigen. Die entsprechenden Antikörper können dabei wahlweise als monoklonale oder polyklonale Antikörper, als Antikörper-Fragmente (Fab, F(ab')2), als Einzelkettenmoleküle (scFv), als „Diabodies", „Triabodies", „Minibodies" oder bispezifische Antikörper eingesetzt werden.An important extension of the range of applications described above, especially with regard to cell separation, results from the Coupling of antibodies or antibody fragments which are directed against a tumor cell antigen or marker. This opens up the possibility of isolating tumor cells from tissue or blood samples which after appropriate detachment from the polymer carrier further tests, eg. B. in the context of early diagnosis, can be subjected. Examples of such non-limiting tumor markers or antigens are caspase-8 (CASP-8), alpha-fetoprotein (AFP), carcinoembryonic antigen (CEA), tumor-associated transplantation antigen (TATA), human epidermis receptor (HERA). 2), oncofetal antigen, tumor-specific transplantation antigen (TSTA), p53 protein, melanoma antigens (MAGE-1, MAGE-B2, DAM-6, DAM-10), mucin (MUC1), helicose antigen (HAGE), human Papilloma virus (HPV-E7), CD3, CD10, CD20, CD28, CD30, CD25, CD64, interleukin-2, interleukin-9, mammary CA antigen, prostate-specific antigen (PSA), GD2 antigen, melanocortin Receptor (MCIR), 138H11 antigen. The corresponding antibodies can be employed either as monoclonal or polyclonal antibodies, as antibody fragments (Fab, F (ab ') 2 ), as single chain molecules (scFv), as "diabodies", "triabodies", "minibodies" or bispecific antibodies ,

Neben der spezifischen Bindung der Biosubstanzen über gekoppelte Bioliganden hat sich überraschenderweise gezeigt, daß auch mit geladenen Gruppen versehene Polymerträger zur Abtrennung von Biosubstanzen eignen. Dazu werden in die nach den oben beschriebenen Verfahren hergestellten Träger geladene Substituenten z. B. in Form von primären, sekundären oder tertiären Aminogruppen als kationische oder Sulfonsäure- oder Carboxylgruppen als anionische Substituenten eingeführt. Dazu werden die Träger nach den bekannten Verfahren entweder durch Addition der entsprechenden Aminoverbindung (primäre, sekundäre oder tertiäre Amine oder Ammoniak) an die epoxidierten Träger oder durch direkte Umsetzung von Hydroxylgruppen-tragenden Polymerträgern mit einer halogenierten, Aminofunktion-tragenden Verbindung (z. B. 2-Diethylamino-ethylchlorid) unter basischen Bedingungen hergestellt. Die Einführung anionischer Gruppen erfolgt, wie dem Fachmann auf diesem Gebiet bekannt, entweder durch Addition von Sulfaten oder Sulfiten (z. B. NaHSO3) an die epoxidierten Träger oder durch direkte Umsetzung von halogenierten Carbonsäuren (z. B. Chloressigsäure, Brompropionsäure) mit den Hydroxylgruppen-tragenden Polymeren. Die Abtrennung der Biosubstanzen mit Hilfe dieser geladenen Träger geschieht grundsätzlich in der Weise, daß zur Abreicherung von Zellen in der Regel kationische Polymerträger verwendet werden. Aufgrund der negativen Ladung der Zellmembran kommt es innerhalb weniger Minuten zu einer Bindung der Zellen an die positiv geladenen Polymerpartikel. Zur Abtrennung von Proteinen wird ein Inkubationspuffer gewählt, der die Proteine aufgrund des Isoelektrischen Punktes entweder mit einer positiven oder negativen Nettoladung versieht. Durch entsprechende Auswahl der Ladung des Trägers kann so ebenfalls eine Bindung des Proteins an den Träger herbeigeführt werden.In addition to the specific binding of the biosubstances via coupled bioligands, it has surprisingly been found that polymer carriers provided with charged groups are also suitable for the separation of biosubstances. For this purpose, in the support prepared by the method described above charged substituents z. B. introduced in the form of primary, secondary or tertiary amino groups as cationic or sulfonic acid or carboxyl groups as anionic substituents. For this purpose, the carriers are prepared by the known processes either by addition of the corresponding amino compound (primary, secondary or tertiary amines or ammonia) to the epoxidized carriers or by direct reaction of hydroxyl-carrying polymer carriers with a halogenated, amino-function-bearing compound (eg. 2-diethylamino-ethyl chloride) under basic conditions. The introduction of anionic groups takes place, as known to the person skilled in the art, either by addition of sulfates or sulfites (eg NaHSO 3 ) to the epoxidized carriers or by direct reaction of halogenated carboxylic acids (eg chloroacetic acid, bromopropionic acid) the hydroxyl group-carrying polymers. The separation of the biosubstances with the aid of these charged carriers is basically done in such a way that cationic polymer carriers are generally used to deplete cells. Due to the negative charge of the cell membrane, the cells bind to the positively charged polymer particles within a few minutes. For separation of proteins, an incubation buffer is chosen, which provides the proteins with either a positive or negative net charge due to the isoelectric point. By appropriate selection of the charge of the carrier, a binding of the protein to the carrier can thus likewise be brought about.

Nach Abtrennung der üblicherweise mit aqua dest oder einer Pufferlösung gewaschenen Biosubstanz-gebundenen Polymerpartikel werden die ionogen vernetzten Matrizes durch Inkubation in einer Komplexbildnerlösung aufgelöst. Dies geschieht durch Komplexierung des ionogenen Vernetzers (z. B. Ca2+), woraus die Auflösung des Polymerträgers resultiert. Als Komplexbildner kommen die bekannten Verbindungen wie z. B. Nitrilotriessigsäure, Ethylendiaminotetraessigsäure (EDTA), Citrat, Dithiocarbamat, Hydroxychinolin üblicherweise als 0,1 bis 2 molare Lösungen zum Einsatz. Je nach Konzentration des Komplexbildners sowie Größe und Vernetzungsgrad des Polymerträgers reichen 3 bis 30 Minuten Inkubation zur vollständigen Auflösung der Partikel aus, wobei sich in der Regel kleinere Partikel (1–10 μm) schneller auflösen (1–5 Minuten) als größere (> 5 Minuten). Bei den nach dem Suspensionspräzipitationsverfahren hergestellten Polymerträgern erfolgt der Auflösungsprozeß durch eine Erwärmung auf 35°C. Je nach Polymertyp und Molgewicht des betreffenden Polymeren, reichen Temperaturen zwischen 30 und 40°C aus, um die Träger innerhalb eines Zeitraumes von 1 bis 5 Minuten vollständig aufzulösen. In der Regel lassen sich Polymerträger, bestehend aus einem Polymeren mit einer Molmasse von < 40 kDa, bei Temperaturen unterhalb < 35°C auflösen, wohingegen aus höheren Molmassen (> 40 kDa) gebildete Polymerträger längere Lösezeiten und höherer Temperaturen (> 35°C ) bedürfen. In bezug auf das Löseverhalten der verschiedenen Polymertypen ergibt sich grundsätzlich, dass Träger aus Stärke, Gelatine oder Collagen durchweg leichter löslich sind als z. B. solche aus Agarose oder Polyvinylalkohol. Um etwaige wärmebedingte Schädigungen der Zellen oder Biomoleküle während des wärmebedingten Auflösungsprozesses weitestgehend zu unterdrücken, hat sich überraschenderweise die Zugabe von Mono-, Di- oder Trisacchariden oder Polyolen und/oder Proteinen als sehr günstig erwiesen. Beispiele für solche präservierenden Zusätze sind: Glycerin, Inosit, Mannose, Sucrose, Glucose, Sorbit, Trehalose, Polyvinylalkohol, (Human/Rinder)Serum Albumin (HSA, BSA) und/oder Gelatine. Die Konzentrationen dieser Stoffe liegen durchweg im Bereich von 0,5 bis 5 Gew.-%, bezogen auf die Polymerträger-Lösung. Im Hinblick auf die Feinheit der Partikel ergeben sich durchweg analoge Zusammenhänge wie bei den ionogen vernetzten Trägern.After separation of the biosubstance-bound polymer particles usually washed with distilled water or a buffer solution, the ionogenically crosslinked matrices are dissolved by incubation in a complexing agent solution. This is done by complexing the ionic crosslinker (eg Ca 2+ ), which results in the dissolution of the polymer support. As complexing agents, the known compounds such. As nitrilotriacetic acid, ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), citrate, dithiocarbamate, hydroxyquinoline usually as 0.1 to 2 molar solutions are used. Depending on the concentration of the complexing agent as well as the size and degree of crosslinking of the polymer carrier, 3 to 30 minutes of incubation are sufficient for complete dissolution of the particles, whereby smaller particles (1-10 μm) dissolve faster (1-5 minutes) than larger ones (> 5 minutes). In the polymer carriers prepared by the suspension precipitation method, the dissolution process is carried out by heating to 35 ° C. Depending on the polymer type and molecular weight of the polymer in question, temperatures between 30 and 40 ° C are sufficient to completely dissolve the carriers within a period of 1 to 5 minutes. As a rule, polymer carriers consisting of a polymer having a molecular weight of <40 kDa can be dissolved at temperatures below <35 ° C., whereas polymer carriers formed from higher molecular weights (> 40 kDa) allow longer dissolution times and higher temperatures (> 35 ° C.). require. With regard to the dissolving behavior of the different types of polymers, it basically results that starch, gelatin or collagen carriers are consistently more soluble than, for example, starch. As those of agarose or polyvinyl alcohol. Surprisingly, the addition of mono-, di- or trisaccharides or polyols and / or proteins has proved to be very favorable in order to suppress any possible heat-related damage to the cells or biomolecules during the heat-induced dissolution process. Examples of such preservative additives are: glycerol, inositol, mannose, sucrose, glucose, sorbitol, trehalose, polyvinyl alcohol, (human / bovine) serum albumin (HSA, BSA) and / or gelatin. The concentrations of these substances are consistently in the range of 0.5 to 5 wt .-%, based on the polymer carrier solution. With regard to the fineness of the particles, analogous contexts always result, as in the case of the ionogenically crosslinked supports.

Die Erfindung wird anhand nachfolgender Ausführungsbeispiele, deren Angaben nicht einschränkend sind, erläutert.The Invention will be described with reference to subsequent embodiments, their details are not limiting explained.

Beispiel 1example 1

In 100 ml Silikonöl (Silikonöl AK 350; Wacker Chemie, BRD) werden unter Rühren 6,7 ml der Emulgatoren Hostaphat KL 340 N® (Hoechst, BRD) und Isofol 16 (CONDEA, BRD) sowie 13,3 ml des Emulgators Synperonic PE L62 (C. H. Erbslöh, BRD) eingetragen. Diese Mischung wird zur Homogenisierung einige Minuten gerührt (800 U/min). Danach werden unter Rühren 2 ml einer frisch bereiteten 1,5%igen Na-Alginatlösung (Sigma, BRD, medium viscosity) zugesetzt. Der Rührvorgang wird für 5 Minuten fortgesetzt; dem schließt sich die Zugabe von 7 ml einer wäßrigen 0.1 M CaCl2–Lösung unter Rühren an. Die Suspension wird 15 Minuten weitergerührt und anschließend zentrifugiert. Der Überstand wird abdekantiert und der Rückstand mehrfach mit einer ausreichenden Menge einer Aceton/Methanol-Mischung (1:1), Hexan und schließlich 1%iger CaCl2-Lösung gewaschen. Nach mehrstündiger Trocknung im Vakuum (0,1 mm Hg) fallen Partikel mit einer mittleren Teilchengröße von 28 um an (Meßmethodik: Streulicht/Laserbeugung, Malvern MasterSizer 2000, Malvern Instruments, BRD). Durch Inkubation mit 4 ml 0,5 M Na2-Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA) lösen sich die Partikel innerhalb von 5 Minuten vollständig auf.In 100 ml of silicone oil (silicone oil AK 350; Wacker Chemie, BRD) are added with stirring 6.7 ml of the emulsifiers Hostaphat KL 340 N ® (Hoechst, FRG) and Isofol 16 (CONDEA, Germany) and 13.3 ml of the emulsifier Synperonic PE L62 (CH Erbslöh, FRG) registered. This mixture is stirred for a few minutes (800 rpm) for homogenization. Then, with stirring, 2 ml of a freshly prepared 1.5% Na alginate solution (Sigma, BRD, medium viscosity) are added. Stirring is continued for 5 minutes; this is followed by the addition of 7 ml of an aqueous 0.1 M CaCl 2 solution with stirring. The suspension is stirred for 15 minutes and then centrifuged. The supernatant is decanted off and the residue is washed several times with a sufficient amount of an acetone / methanol mixture (1: 1), hexane and finally 1% CaCl 2 solution. After drying for several hours in vacuo (0.1 mm Hg), particles having an average particle size of 28 μm are obtained (measuring methodology: scattered light / laser diffraction, Malvern MasterSizer 2000, Malvern Instruments, FRG). By incubation with 4 ml of 0.5 M Na 2 -ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), the particles dissolve completely within 5 minutes.

Beispiel 2Example 2

Zur Herstellung magnetischer Alginatpartikel wird der Ansatz aus Beispiele 1 verwendet. Dazu werden der Alginatlösung 0,8 ml eines Ferrofluides zugesetzt, das nach einer Vorschrift von Shinkai et al., Biocatalysis, Vol. 5, 1991, 61–69 , hergestellt wurde. Die Magnetkolloidenthaltenden Mikropartikel werden analog Beispiele 1 gewaschen und über Kalziumchlorid über Nacht getrocknet. Das gewonnene Produkt wir anschließend dreimal mit Acetonitril gewaschen. Danach erfolgt Inkubation des Polymerträgers unter leichtem Rühren in 4 ml Acetonitril, in dem 100 mg Chloressigsäureanhydrid und 6 mMol 4-Dimethylamino-pyridin gelöst sind. Die Aktivierung erfolgt über einen Zeitraum von 12 Stunden bei Raumtemperatur. Danach werden die Träger mehrfach mit Aceton/Äthanol (1:1) und schließlich mit 2%iger CaCl2-Lösung unter jeweiliger Zuhilfenahme eines magnetischen Abtrennschrittes (Neodym-Bor-Eisen Handmagnet) gewaschen. Danach wird der Träger in 3 ml 0.05 M Borat-Puffer/10 mM CaCl2, pH 9.3, in dem 3 mM anti-CD4-IgG (Invitrogen, BRD) gelöst sind, für 12 h bei 15°C inkubiert. Zur Deaktivierung wird der Polymerträger in 5 ml 0,05 M Ethanolamin/0.15 M NaCl/0.05% (v/v) Triton X-100-Lösung, pH 8.0, 60 Minuten bei 4°C inkubiert, gefolgt von mehrfachem Waschen mit PBS-Puffer, pH 7.4. Die gewaschenen Polymerträger werden in 2 ml PBS/1% Kalbserum, pH 7.4, suspendiert und analog der Vorschrift von Dyer at. al. ("Cell Separation" A Practical Approach, D. Fisher et al. Hrsg., Oxford University Press, Oxford, 1998, 191–207) bei 2–4°C unter vorsichtigem Rotieren für 30 Minuten mit antikoaguliertem Blut inkubiert. Danach werden die Träger magnetisch abgetrennt und zweimal mit PBS-Puffer/0,1% BSA gewaschen. Die gebundenen CD4+ T-Zellen werden mittels fünfminütiger Inkubation in 4 ml 0,5 M EDTA, pH 7.4, freigesetzt. Es werden 1.02 × 106 Zellen gewonnen (Durchflußzytometrie, Fa. Partec, BRD).To prepare magnetic alginate particles, the batch of Examples 1 is used. For this purpose, the alginate solution 0.8 ml of a ferrofluid, which according to a rule of Shinkai et al., Biocatalysis, Vol. 5, 1991, 61-69 , was produced. The magnetic colloid-containing microparticles are washed analogously to Examples 1 and dried over calcium chloride overnight. The recovered product is then washed three times with acetonitrile. This is followed by incubation of the polymer support with gentle stirring in 4 ml of acetonitrile, in which 100 mg of chloroacetic anhydride and 6 mmol of 4-dimethylamino-pyridine are dissolved. Activation takes place over a period of 12 hours at room temperature. Thereafter, the carriers are washed several times with acetone / ethanol (1: 1) and finally with 2% CaCl 2 solution, with the respective aid of a magnetic separation step (neodymium-boron-iron hand magnet). Thereafter, the support is incubated in 3 ml 0.05 M borate buffer / 10 mM CaCl 2 , pH 9.3, in which 3 mM anti-CD4 IgG (Invitrogen, FRG) are dissolved for 12 h at 15 ° C. For deactivation, the polymer carrier is incubated in 5 ml of 0.05 M ethanolamine / 0.15 M NaCl / 0.05% (v / v) Triton X-100 solution, pH 8.0, for 60 minutes at 4 ° C, followed by multiple washes with PBS. Buffer, pH 7.4. The washed polymer carriers are suspended in 2 ml PBS / 1% calf serum, pH 7.4, and analogously to the procedure of Dyer at. Al. ("Cell Separation" A Practical Approach, D. Fisher et al., Ed., Oxford University Press, Oxford, 1998, 191-207) at 2-4 ° C with gentle rotation for 30 minutes with anticoagulated blood. Thereafter, the carriers are separated magnetically and washed twice with PBS buffer / 0.1% BSA. The bound CD4 + T cells are liberated by incubation in 4 ml of 0.5 M EDTA, pH 7.4, for 5 min. There are obtained 1.02 × 10 6 cells (flow cytometry, Fa. Partec, FRG).

Beispiel 3Example 3

1 g Agarose (Sigma, BRD) werden in 50 ml 90°C heißem Wasser gelöst. Der Lösung werden bei 90°C 0,15 g Kobalt-Ferrit-Nanopartikel (CoFe2O4), die nach einer Vorschrift von Sato et al., J. Magn. Magn. Mat., Vol. 65, 252, 1987 , aus CoCl2 und FeCl3 hergestellt wurden, zugesetzt und anschließend mit Hilfe eines Hochleistungsultraschallfinger (Fa. Dr. Hielscher, 80% Amplitude) in der Polymerphase für zwei Minuten dispergiert. Diese Mischung wird in einer auf 50°C vorgewärmten organischen Phase, bestehend aus 490 ml Toluol und 110 ml Tetrachlorkohlestoff, in der 0,5 g Span 83 gelöst sind, unter Rühren (KPG, 650 U/min) suspendiert. Es wird kontinuierlich eine Minuten weitergerührt und anschließend mit einem Wasserbad auf Raumtemperatur abgekühlt. Nach 5 Minuten kontinuierlichen Weiterrührens wird die Polymerphase mittels eines Handmagneten (s. Beispiele 2) von der organischen Phase abgetrennt und mehrfach mit Äther und Eiswasser gewaschen. Nach zweistündiger Trocknung im Vakuum fallen Partikel mit einer mittleren Teilchengröße von 46 μm an. Danach wird das Produkt drei Tage gefriergetrocknet. 150 mg des so gewonnenen Produktes werden sodann mit je 1.5 ml Dimethylsulfoxid/Aceton-Lösung (1:1), in der je 6 mMol 4-Dimethylamino-pyridin und 5 mMol 2-Fluor-methyl-pyridinium-toluol-sulfonat gelöst sind, 45 Min. bei 10°C umgesetzt. Es folgt 5maliges abwechselndes Waschen mit eiskalter Aktivierungslösung und schließlich einmaligem Waschen mit eiskaltem Wasser unter jeweiliger Anwendung des obigen magnetischen Abtrennschrittes. Das aktivierte Produkt wird anschließend bei 4°C durch Inkubation mit 15 μg AnnexinV (Acris Antibodies, BRD), das in 3 ml 0.05 M N-Phosphat- Puffer, pH 7.5, gelöst ist, 4 Stunden bei 4°C umgesetzt. Nach mehrfachem Waschen mit dem eiskaltem Kopplungspuffer werden die restlichen nicht reagierten Gruppen durch einstündige Inkubation mit 3 ml 20 mMol Mercaptoäthanol enthaltendem 0.1 M Tris-HCl-Puffer, pH 8.5, deaktiviert. Danach werden die Magnetpartikel mit eiskaltem PBS-Puffer/0.05% Triton X-100, pH 7.2, gewaschen.1 g of agarose (Sigma, FRG) are dissolved in 50 ml of 90 ° C hot water. Be the solution at 90 ° C 0.15 g of cobalt ferrite nanoparticles (CoFe 2 O 4), according to a procedure of Sato et al., J. Magn. Magn. Mat., Vol. 65, 252, 1987 , made from CoCl 2 and FeCl 3 , were added and then dispersed in the polymer phase for two minutes using a high-performance ultrasound finger (Dr. Hielscher, 80% amplitude). This mixture is suspended in an organic phase preheated to 50 ° C., consisting of 490 ml of toluene and 110 ml of carbon tetrachloride material in which 0.5 g of Span 83 are dissolved, with stirring (KPG, 650 rpm). It is continuously stirred for one minute and then cooled to room temperature with a water bath. After 5 minutes of continuous stirring, the polymer phase is separated off from the organic phase by means of a hand magnet (see Examples 2) and washed several times with ether and ice-water. After drying for two hours in a vacuum, particles having a mean particle size of 46 μm are obtained. Thereafter, the product is freeze-dried for three days. 150 mg of the product thus obtained are then each with 1.5 ml of dimethyl sulfoxide / acetone solution (1: 1), in each of which 6 mmol of 4-dimethylamino-pyridine and 5 mmol of 2-fluoro-methyl-pyridinium-toluene-sulfonate are dissolved, 45 min. At 10 ° C reacted. This is followed by washing 5 times with ice-cold activating solution and finally washing once with ice-cold water, using the above magnetic separation step. The activated product is then reacted at 4 ° C. by incubation with 15 μg AnnexinV (Acris Antibodies, Germany), which is dissolved in 3 ml of 0.05M N-phosphate buffer, pH 7.5, for 4 hours at 4 ° C. After washing several times with the ice-cold coupling buffer, the remaining unreacted groups are deactivated by incubation with 3 ml of 0.1 ml Tris-HCl buffer, pH 8.5, containing 20 ml of mercaptoethanol for 1 hour. Thereafter, the magnetic particles are washed with ice-cold PBS buffer / 0.05% Triton X-100, pH 7.2.

Die Träger lassen sich zur Bestimmung apoptotischer Zellen gemäß B. R. Smith et al., Biomedical Microdevices, 9, 2007, 719 , einsetzen. 10minütiges Erwärmen auf 40°C löst den Träger vollständig auf.The carriers can be used to determine apoptotic cells according to BR Smith et al., Biomedical Microdevices, 9, 2007, 719 , deploy. Heating to 40 ° C for 10 minutes completely dissolves the carrier.

Beispiel 4Example 4

8 ml einer essigsauren 5%igen (w/v) Chitosan-Lösung werden mit 10 ml 10% (w/v), auf 70°C vorgewärmte Collagen-Lösung (Collagen Typ I, Fluka, BRD), in der 4 ml Ferrofluid ( Shinkai et al. , s. Beispiel 2) dispergiert sind, vermischt. Diese Lösung wird tropfenweise in 800 ml auf 60°C vorgewärmtes Macadamia Öl (Brookfarm Ltd, Australien) unter Rühren (KPG 600 U/min) eingegeben. Die Suspension wird 10 Minuten bei dieser Temperatur weitergerührt und anschließend auf 4°C mit Hilfe eines Eisbades heruntergekühlt. Die Polymerphase wird analog Beispiel 1 per Zentrifugation von der Ölphase abgetrennt und anschließend mehrfach mit eiskaltem Petroläther und Aceton/Äthanol (1:1) und schließlich mit eiskaltem PBS-Puffer, pH 7.4, mehrfach gewaschen; dem schließt sich eine 5stündige Vakuumtrocknung (0,1 mm Hg) an. Es fallen perlförmige Polymerträger mit einer mittleren Teilchengröße von 5.8 μm an, die anschließend über eine Zeitraum von 3 Tagen gefriergetrocknet werden. Der so hergestellte Träger wird zur Abtrennung von Nukleinsäuren analog dem Verfahren von M. J. Davies et al., Application. Biochem. Biotechn., 68, 1997, 95 , genutzt. 5minütige Erwärmung des Trägers auf > 35°C führt zu einer vollständigen Auflösung desselben.8 ml of an acetic 5% (w / v) chitosan solution are mixed with 10 ml of 10% (w / v) collagen solution (collagen type I, Fluka, FRG) preheated to 70 ° C in the 4 ml ferrofluid ( Shinkai et al. , s. Example 2) are mixed. This solution is added dropwise to 800 ml of macadamia oil preheated to 60 ° C (Brookfarm Ltd, Australia) with stirring (KPG 600 rpm). The suspension is stirred for 10 minutes at this temperature and then cooled down to 4 ° C using an ice bath. The polymer phase is separated off from the oil phase by centrifugation analogously to Example 1 and then washed several times with ice-cold petroleum ether and acetone / ethanol (1: 1) and finally with ice-cold PBS buffer, pH 7.4, several times; This is followed by a 5-hour vacuum drying (0.1 mm Hg). It fall to bead-shaped polymer carrier with an average particle size of 5.8 microns, which are then freeze-dried over a period of 3 days. The carrier thus prepared is used for the separation of nucleic acids analogously to the method of MJ Davies et al., Application. Biochem. Biotechn., 68, 1997, 95 , used. Heating the support for 5 minutes at> 35 ° C leads to a complete dissolution of the same.

Beispiel 5Example 5

5 ml einer 10%igen (w/v) Collagen-Lösung (Collagen Typ I, Fluka, BRD) werden durch Erwärmen auf 70°C hergestellt und anschließend sterilfiltriert. 4 ml dieser Lösung werden tropfenweise in 80 ml auf 70°C vorgewärmtes Rapsöl (Vandemoorlebe, BRD), in dem 0,4% Eumulgin R035 (Henkel, BRD) und 0,2% Pluronic L61 (Erbslöh, BRD) gelöst sind, unter Rühren (KPG, 600 U/min) zugegeben. Nach 10 Minuten wird die Suspension mittels eines Eisbades auf 4°C unter weiterem Rühren herruntergekühlt und der Rührvorgang für weitere 30 Minuten fortgesetzt. Die resultierenden Mikropartikel werden in kaltem Aceton mittels eines Dispergierwerkzeuges (Ultra-Turrax T25, 10.000 U/min) 15 Minuten homogenisiert. Danach werden die Polymerträger mittels Zentrifugation (5000 U/min, 4°C, 5 min) von der Ölphase abgetrennt. Es folgt fünfmaliges Waschen mit kaltem Petroläther und kalter Aceton/Wassermischung (1:1); dem schließt sich eine fünfstündige Vakuumtrocknung (0,1 mm Hg) an. Es werden Teilchen mit einer mittleren Partikelgröße von 4.3 μm gewonnen.5 ml of a 10% (w / v) collagen solution (collagen type I, Fluka, FRG) are prepared by heating to 70 ° C and then sterile filtered. 4 ml of this solution are preheated dropwise in 80 ml to 70 ° C Rapeseed oil (Vandemoorlebe, FRG) containing 0.4% Eumulgin R035 (Henkel, FRG) and 0.2% Pluronic L61 (Erbslöh, FRG) are added with stirring (KPG, 600 rpm). After 10 minutes the suspension is brought to 4 ° C by means of an ice bath further stirred undercurrent and the stirring continued for another 30 minutes. The resulting Microparticles are dissolved in cold acetone by means of a dispersing tool (Ultra-Turrax T25, 10,000 rpm) homogenized for 15 minutes. After that the polymer carriers are centrifuged (5000 rpm, 4 ° C, 5 min) separated from the oil phase. It follows Wash five times with cold petroleum ether and cold acetone / water mixture (1: 1); this is followed by a five hours of vacuum drying (0.1 mm Hg). It become particles with an average particle size of 4.3 microns won.

200 mg des getrockneten Produktes werden mit 3 ml Stickstoff durchspültem 0,1 M Tris/10 mM EDTA-Puffer, pH 8.0, in dem 45 mg 2-Iminothiolan (Pierce, USA) gelöst sind, 3 Stunden bei 4°C und unter ständiger Stickstoffeinleitung (2 cm3/min) inkubiert. Nach mehrmaligem Waschen mit Aceton/Äthanol-Lösung (1:1) und Eiswasser wird der Sulfhydrylgruppen-haltige Träger mit 20 mg m-Maleinimidobenzoyl-N-hydroxysulfosuccinimid, das in 3 ml 0,1 M Na-Phosphat/0,15 M NaCl/10 mM EDTA-Puffer, pH 7.5, gelöst ist, drei Stunden bei 10°C unter Stickstoffeinleitung umgesetzt. Es folgt mehrfaches Waschen mit eiskalter Aceton/Wasserlösung (1:1) und zweimaligem Waschen mit 0,1 M Na-Phosphat/0,15 M NaCl/10 mM EDTA-Puffer, pH 7.2. Die Kopplung von anti-CD8-IgG (Invitrogen, BRD) erfolgt anschließend über einen Zeitraum von 6 Stunden in 3 ml Waschpuffer, in dem 4,2 × 10–6 mM Antikörper gelöst sind. Zur Entfernung restlicher, unreagierter Sulfhydrylgruppen wird der gekoppelte Träger in 4 ml 2 mM Jodacetamid enthaltendem PBS-Puffer für eine Stunde bei 10°C inkubiert. Nach mehrfachem Waschen mit PBS-Puffer, pH 7.2, wird der Träger analog Beispiele 2 zur Isolierung von CD8+ T Zellen aus 2 ml Vollblut analog Beispiele 2 genutzt. Eine einminütige Erwärmung auf 35°C löst den Träger vollständig auf und gibt 0.98 × 106 CD8+ Zellen frei.200 mg of the dried product are dissolved in 3 ml of nitrogen-purged 0.1 M Tris / 10 mM EDTA buffer, pH 8.0, in which 45 mg of 2-iminothiolane (Pierce, USA) are dissolved at 4 ° C. for 3 hours and more continuously Nitrogen inlet (2 cm 3 / min) incubated. After washing several times with acetone / ethanol solution (1: 1) and ice-water, the sulfhydryl-containing carrier with 20 mg of m-maleimidobenzoyl-N-hydroxysulfosuccinimide dissolved in 3 ml of 0.1 M Na phosphate / 0.15 M NaCl / 10 mM EDTA buffer, pH 7.5, is reacted for three hours at 10 ° C with introduction of nitrogen. This is followed by repeated washing with ice-cold acetone / water solution (1: 1) and washing twice with 0.1 M Na phosphate / 0.15 M NaCl / 10 mM EDTA buffer, pH 7.2. The coupling of anti-CD8 IgG (Invitrogen, Germany) is then carried out over a period of 6 hours in 3 ml of washing buffer in which 4.2 × 10 -6 mM antibody are dissolved. To remove residual, unreacted sulfhydryl groups, the coupled support is incubated in 4 ml of PBS buffer containing 2 mM iodoacetamide for one hour at 10 ° C. After repeated washing with PBS buffer, pH 7.2, the support is used analogously to Examples 2 for the isolation of CD8 + T cells from 2 ml of whole blood analogously to Examples 2. Warming to 35 ° C for one minute completely dissolves the carrier and releases 0.98 x 10 6 CD8 + cells.

Beispiel 6Example 6

Die Herstellung erfolgt gemäß Beispiele 5. Nach Umsetzung des Trägers mit 2-Iminothiolan und Aktivierung mit m-Maleinimidobenzoyl-N-hydroxysulfosuccinimid analog Beispiel 5 werden die Träger mit 5 ml 0,1 M Na-Phosphat/0,15 M NaCl/10 mM EDTA-Puffer, pH 7.2, in dem 0,8 mg Streptavidin (Sigma, BRD) gelöst sind, über einen Zeitraum von 12 h bei 4°C inkubiert. Der gewonnene Träger ist nach entsprechender Deaktivierung mit Ethanolamin gemäß Beispiel 2 zur Abtrennung biotinylierter Biomoleküle analog den bekannten Verfahren ( M. Wilchek und E. A. Bayer, Anal. Biochem. 171, 1988, 1 ) befähigt.The preparation is carried out according to Example 5. After reaction of the carrier with 2-iminothiolane and activation with m-maleimidobenzoyl-N-hydroxysulfosuccinimide analogously to Example 5, the carrier with 5 ml of 0.1 M Na phosphate / 0.15 M NaCl / 10 mM EDTA buffer, pH 7.2, in which 0.8 mg streptavidin (Sigma, FRG) is dissolved, incubated at 4 ° C for a period of 12 h. The carrier obtained after appropriate deactivation with ethanolamine according to Example 2 for the separation of biotinylated biomolecules analogous to the known methods ( M. Wilchek and EA Bayer, Anal. Biochem. 171, 1988, 1 ).

Beispiel 7Example 7

Die Herstellung des Collagen-Chitosan-Trägers erfolgt analog Beispiel 4. Zur kovalenten Ankopplung von Bioliganden werden 200 mg des vakuumgetrockneten Trägers mit 3 ml Stickstoff durchspültem 0,1 M Tris-Puffer, pH 8.0, in dem 45 mg 2-Iminothiolan (Pierce, USA) gelöst sind, 12 Stunden bei 4°C inkubiert. Nach mehrfachem Waschen mit eiskaltem Aceton/Äthanol Lösung und Eiswasser werden 3 ml 0,1 M Na-Phosphat-Puffer/0,15 M NaCl/10 mM EDTA, pH 7.4, in dem 20 mg m-Maleinimidobenzoyl-N-hydroxysulfosuccinimid gelöst sind, zugesetzt und die Mischung für eine Stunde bei 15°C zur Reaktion gebracht. Es folgt mehrfaches Waschen mit kalter Aceton/Wasserlösung (1:1) und zweimaliges Waschen mit eiskaltem 0,1 M Na-Phosphat-Puffer/0,15 M NaCl/10 mM EDTA, pH 7.4. Die Kopplung von anti-CD56-IgG (Invitrogen, BRD) erfolgt anschließend in 3 ml Waschpuffer, in dem 3.12 10–6 mM des Antikörpers gelöst sind, über einen Zeitraum von 12 Stunden bei 4°C. Dem schließt sich die Deaktivierung mit Jodacetamid analog Beispiel 5 an. Der Träger wird zur spezifischen Abtrennung natürlicher Killerzellen aus unstimulierten mononuklearen Zellen analog B. Naume et al., J. Immunol. Methods, 136, 1991, 1–9 , verwendet. Dreiminütige Erwärmung auf 35°C führt zur vollständigen Auflösung des Trägers; es werden 0.76 × 106 Zellen freigesetzt.The preparation of the collagen-chitosan carrier is carried out analogously to Example 4. For the covalent coupling of bioligands 200 mg of the vacuum-dried carrier with 3 ml of nitrogen purged 0.1 M Tris buffer, pH 8.0, in the 45 mg 2-iminothiolane (Pierce, USA) are incubated for 12 hours at 4 ° C. After washing several times with ice-cold acetone / ethanol solution and ice-water, 3 ml of 0.1 M Na phosphate buffer / 0.15 M NaCl / 10 mM EDTA, pH 7.4, in which 20 mg of m-maleimidobenzoyl-N-hydroxysulfosuccinimide are dissolved , added and the mixture for 1 hour at 15 ° C reacted. This is followed by repeated washing with cold acetone / water solution (1: 1) and washing twice with ice-cold 0.1 M Na phosphate buffer / 0.15 M NaCl / 10 mM EDTA, pH 7.4. The coupling of anti-CD56 IgG (Invitrogen, Germany) is then carried out in 3 ml of washing buffer in which 3.12 10 -6 mM of the antibody are dissolved over a period of 12 hours at 4 ° C. This is followed by deactivation with iodoacetamide analogously to Example 5. The carrier becomes the specific separation of natural killer cells from unstimulated mononuclear cells analogous Naume et al., J. Immunol. Methods, 136, 1991, 1-9 , used. Heating to 35 ° C for 3 minutes results in complete dissolution of the carrier; 0.76 × 10 6 cells are released.

Beispiel 8Example 8

Eine 10%ige Polyvinylalkohol-Lösung, Molmasse 88 kDa (Höchst AG, BRD), wird durch Erhitzen von 30 ml Ethylenglykol bei 150°C hergestellt. Die Lösung wird sodann auf 70°C heruntergekühlt und in 350 ml auf 70°C vorgeheiztes Rapsöl (Vandemoortele, BRD), in dem 0,8% (v/v) Span 83 und 0,5% (v/v) Dehymuls HRE und 2% (v/v) Tween 85 gelöst sind, unter Rühren (1000 U/min) suspendiert. Die Mischung wird 5 Minuten bei dieser Temperatur weitergerührt und danach in einem Wasserbad auf Raumtemperatur heruntergekühlt, wobei innerhalb von 10 Minuten die Polymerträger als feste, perlförmige Partikel ausfallen. Die Polymerphase wird mittels Zentrifugation abgetrennt und mehrfach abwechselnd mit je 50 ml Petrolether und Äthanol unter Zuhilfenahme eines jeweiligen Zentrifugationsschrittes gewaschen; dem schließt sich dreimaliges Waschen mit Eiswasser an. Nach 5stündiger Trocknung im Vakuum (0,1 mm Hg) fallen Magnetpartikel mit einer mittleren Teilchengröße von 8,4 μm an. Danach erfolgt eine dreitägige Gefriertrocknung. 100 mg des gefriergetrockneten Polymerträgers werden in 3 ml 4 M NaOH-Lösung, in der 150 mg Bromessigsäure gelöst sind, über einen Zeitraum von 4 Stunden bei 10°C umgesetzt. Es folgt mehrfaches Waschen abwechselnd mit Eiswasser und Äthanol/Eiswasser-Mischungen (1:1).A 10% polyvinyl alcohol solution, molecular weight 88 kDa (max AG, FRG), by heating 30 ml of ethylene glycol at 150 ° C produced. The solution is then cooled down to 70 ° C and Rapeseed oil (Vandemoortele, preheated to 350 ° F) in 350 ml FRG), in which 0.8% (v / v) Span 83 and 0.5% (v / v) Dehymuls HRE and 2% (v / v) Tween 85 are dissolved, stirring (1000 Rpm). The mixture is kept at this temperature for 5 minutes further stirred and then in a water bath to room temperature cooled down, wherein within 10 minutes the polymer carrier precipitate as solid, bead-shaped particles. The polymer phase is separated by centrifugation and alternately several times with 50 ml of petroleum ether and ethanol with the aid of a each centrifugation step washed; that concludes Wash three times with ice water. After 5 hours Drying in vacuo (0.1 mm Hg) drops magnetic particles with a average particle size of 8.4 microns. This is followed by a three-day freeze-drying. 100 mg of the freeze-dried polymer carrier are dissolved in 3 ml of 4 M NaOH solution, dissolved in the 150 mg of bromoacetic acid are at 10 ° C over a period of 4 hours implemented. It is followed by several washing alternately with ice water and ethanol / ice water mixtures (1: 1).

Dem Produkt werden 3 ml 0,1 M MES-Puffer, pH 4.5, in dem 0,2 mM N-Cyclohexyl-N'-(2-morpholinoethyl)-carbodiimid-methyl-p-toluolsulfonat und 1 mM N-Hydroxysuccinimid gelöst sind, zugegeben. Die Mischung wird für 30 Minuten bei 15°C leicht geschüttelt. Danach wird der aktivierte Träger fünfmal mit Eiswasser gewaschen und mit 3 ml 0,1 M MES-Puffer/0,15 M NaCl, pH 6.5, in dem 3,5·10–6 mM anti-CD34-IgG (Invitrogen, BRD) gelöst sind, bei 4°C über einen Zeitraum von 6 Stunden zur Reaktion gebracht. Dem schließt sich eine 30minütige Deaktivierung mit Ethanolamin gemäß Beispiel 2 an. Nach mehrfachem Waschen mit eiskaltem PBS-Puffer/0,01% Triton X-100, pH 7.2, werden die Träger mit 3 ml PBS-Puffer, pH 7.2, in dem 0,1% HSA und 0,8% Polyvinylalkohol (Mw 22 kDa) gelöst sind, inkubiert. Die Träger lassen sich gemäß dem Verfahren von Y. Jing et al., Biotechn. Bioeng., 96 (6), 2007, 1139 , zur Isolierung hematopoetischer Stammzellen einsetzen. Der Träger läßt sich durch fünfminütiges Erwärmen auf > 35°C vollständig auflösen, wobei 3.6 × 104 Zellen wiedergewonnen werden.To the product are dissolved 3 ml of 0.1 M MES buffer, pH 4.5, in which 0.2 mM N-cyclohexyl-N '- (2-morpholinoethyl) -carbodiimide-methyl-p-toluenesulfonate and 1 mM N-hydroxysuccinimide are dissolved , added. The mixture is gently shaken for 30 minutes at 15 ° C. Thereafter, the activated carrier is washed five times with ice water and washed with 3 ml of 0.1 M MES buffer / 0.15 M NaCl, pH 6.5, in the 3.5 x 10 -6 mM anti-CD34 IgG (Invitrogen, FRG). dissolved, reacted at 4 ° C over a period of 6 hours. This is followed by a 30-minute deactivation with ethanolamine according to Example 2. After washing several times with ice-cold PBS buffer / 0.01% Triton X-100, pH 7.2, the carriers are mixed with 3 ml of PBS buffer, pH 7.2, in the 0.1% HSA and 0.8% polyvinyl alcohol (Mw 22 kDa) are dissolved, incubated. The supports can be prepared according to the method of Y. Jing et al., Biotechn. Bioeng., 96 (6), 2007, 1139 , for the isolation of hematopoietic stem cells. The support can be completely dissolved by heating to> 35 ° C for five minutes, recovering 3.6 x 10 4 cells.

Beispiel 9Example 9

10 ml einer 10%igen (w/v) wäßrigen Polymethacrylsäure-Lösung (Mw 9.500, Aldrich, BRD) werden mit 0,8 g Kobalt-Ferrit-Nanopartikel gemäß Beispiel 3 vermischt und mit Hilfe eines Hochleistungsultraschallfingers (s. Beispiel 3) über eine Zeitraum von 2 Minuten unter Eiskühlung homogenisiert. Die Suspension wird anschließend in 250 ml Xylol, in dem 0,4% Span 60 (v/v) und 0,85% (v/v) Hypermer A 60 (Fa. ICI, UK) gelöst sind, mit Hilfe eines Dispergierwerkzeuges (Ultra-Turrax T25, 12000 U/min) bei Raumtemperatur suspendiert. Während des Dispergiervorgangs werden tropfenweise 8,5 ml 0,5 M CaCl2-Lösung zugetropft. Nach der Zugabe des ionogenen Vernetzers wird noch 20 Sekunden weiter suspendiert und die Mischung 30 Minuten bei Raumtemperatur stehen gelassen. Danach erfolgt die magnetische Abtrennung der Polymerphase gemäß obigem Beispiel mit Hilfe eines Nd-B-Fe Handmagneten. Die Magnetpartikelfraktion wird mehrfach mit Äthanol und schließlich dreimal mit Eiswasser/2%CaCl2 gewaschen. Nach fünfstündiger Trocknung im Vakuum (0,1 mm Hg) fallen feste, sphärische Partikel mit einem mittleren Teilchengröße von 3.4 um an. Die Polymerfraktion wird anschließend drei Tage gefriergetrocknet. 250 mg des gewonnenen Produktes werden mit 4 ml 0,05 M MES/0,15 M NaCl-Puffer, pH 4.6, der 0,2 mM N-Cyclohexyl-N'-(2-morpholinoethyl)-carbodiimid-methyl-p-toluolsulfonat und 1 mM N-Hydroxysuccinimid gelöst enthält, über einen Zeitraum von 30 Minuten bei 10°C unter leichtem Rühren inkubiert. Es wird fünfmal mit Eiswasser unter Zuhilfnahme des oben beschriebenen magnetischen Abtrennschrittes gewaschen. 6.2 × 10–6 mM anti-CD19-IgG (Invitrogen, BRD), gelöst in 3 ml 0,01 MES-Puffer/0,15 M NaCl, pH 6.5, werden sodann mit dem aktivierten Träger über eine Zeitraum von 6 Stunden bei 4°C zur Reaktion gebracht. Danach wird mit eiskaltem MES- Puffer/0,15 M NaCl/0,05 Triton X-100, pH 6.5, mehrfach nachgewaschen. Das gewaschene Produkt wird anschließend zur Abtrennung von B-Lymphocyten aus Vollblut analog dem bekannten Verfahren ( Technical Handbook: Lymphocyte sorting, 1992, Dynal AS, Oslo Norwegen ) benutzt. Durch Zugabe einer 0,5 M EDTA-Lösung wird der Träger innerhalb von 5 Minuten bei Raumtemperatur unter vollständiger Freigabe der gebundenen Zellen aufgelöst. Es werden 0,76 × 107 B-Zellen wiedergewonnen.10 ml of a 10% (w / v) aqueous polymethacrylic acid solution (Mw 9,500, Aldrich, FRG) are mixed with 0.8 g of cobalt-ferrite nanoparticles according to Example 3 and mixed with the aid of a high-performance ultrasonic finger (see Example 3) homogenized for 2 minutes with ice-cooling. The suspension is then dissolved in 250 ml of xylene in which 0.4% Span 60 (v / v) and 0.85% (v / v) Hypermer A 60 (from ICI, UK) are dissolved by means of a dispersing tool ( Ultra-Turrax T25, 12000 rpm) at room temperature. During the dispersing, 8.5 ml of 0.5 M CaCl 2 solution are added dropwise dropwise. After the addition of the ionic crosslinking agent, the mixture is further suspended for a further 20 seconds and the mixture is allowed to stand at room temperature for 30 minutes. Thereafter, the magnetic separation of the polymer phase according to the above example with the aid of a Nd-B-Fe hand magnet. The magnetic particle fraction is washed several times with ethanol and finally three times with ice water / 2% CaCl 2 . After drying in vacuo (0.1 mm Hg) for five hours, solid spherical particles having an average particle size of 3.4 μm are formed. The polymer fraction is then freeze-dried for three days. 250 mg of the recovered product are mixed with 4 ml of 0.05 M MES / 0.15 M NaCl buffer, pH 4.6, containing 0.2 mM N-cyclohexyl-N '- (2-morpholinoethyl) -carbodiimide-methyl-p- toluene sulfonate and 1 mM N-hydroxysuccinimide dissolved, incubated for 30 minutes at 10 ° C with gentle stirring. It is washed five times with ice water using the magnetic separation step described above. 6.2 x 10 -6 mM anti-CD19 IgG (Invitrogen, FRG) dissolved in 3 ml of 0.01 MES buffer / 0.15 M NaCl, pH 6.5, are then added to the activated carrier over a period of 6 hours 4 ° C reacted. The mixture is then rinsed several times with ice-cold MES buffer / 0.15 M NaCl / 0.05 Triton X-100, pH 6.5. The washed product is then used to separate B lymphocytes from whole blood analogously to the known process (US Pat. Technical Handbook: Lymphocyte sorting, 1992, Dynal AS, Oslo Norway ) used. By adding a 0.5 M EDTA solution, the carrier is dissolved in 5 minutes at room temperature with complete release of the bound cells. 0.76 x 10 7 B cells are recovered.

Beispiel 10Example 10

1 g Cellulose (Fluka, BRD) werden in 50 ml 95°C heißer 2 M ZnCl2-Lösung gelöst. Der Lösung werden bei 90° 0,2 g des nach dem von Shinkai et al. beschriebenen Methode (s. Beispiel 2) hergestellten Eisenoxids, zugesetzt und anschließend mit Hilfe eines Hochleistungsultraschallfinger (Fa. Dr. Hielscher, 80% Amplitude) in der Polymerphase für eine Minute dispergiert. Die Mischung wird in 600 ml auf 95°C vorgeheiztes Maiskeim-Öl ("Timbu" Fa. Penny, BRD), das 0,5% (v/v) Prisorine, 0,2% (v/v) Span 83 und 0,1% (v/v) Tween 80 enthält, unter Rühren (KPG, 1200 U/min) suspendiert. Es wird kontinuierlich eine Minuten weitergerührt und anschließend mit einem Eiswasserbad abgekühlt. Nach 5 Minuten kontinuierlichen Weiterrührens wird die Polymerphase mittels des Handmagneten (s. Beispiele 2) von der organischen Phase abgetrennt und mehrfach mit Petroläther und schließlich zweimal mit Eiswasser gewaschen. Nach zweistündiger Lufttrocknung fallen Partikel mit einer mittleren Teilchengröße von 55 μm an. Danach wird das Produkt drei Tage gefriergetrocknet. 150 mg des so gewonnenen Produktes werden mit je 1.5 ml Dimethylsulfoxid/Aceton-Lösung (0.5:1), in der je 6 mMol 4-Dimethylamino-pyridin und 5 mMol 2-Fluor-methyl-pyridinium-toluol-sulfonat gelöst sind, 45 Min. bei 10°C umgesetzt. Es folgt 5maliges abwechselndes Waschen mit eiskalter Aktivierungslösung und schließlich einmaliges Waschen mit eiskaltem Wasser unter jeweiliger Anwendung des magnetischen Abtrennschrittes. Das aktivierte Produkt wird anschließend durch dreistündige Inkubation mit 4.8 10–6 mM Maus anti-CD34-IgG (Invitrogen, BRD), das in 3 ml 0.05 M K-Phosphat-Puffer/0,15 M NaCl, pH 7.2, gelöst ist, bei 4°C umgesetzt. Nach mehrfachem Waschen mit dem eiskaltem Kopplungspuffer werden die restlichen nicht reagierten Gruppen durch einstündige Inkubation bei 4°C in 3 ml 20 mMol Mercaptoäthanol enthaltendem 0.1 M Tris-HCl Puffer, pH 8.5, deaktiviert. Danach werden die Magnetpartikel mit eiskaltem PBS-Puffer/0,05% Triton X-100, pH 7.2, gewaschen und in 3 ml PBS-Puffer, pH 7.2, suspendiert. Die Suspension ist zur Abtrennung hematopoetischer Stammzellen analog dem Verfahren nach Ying et al. (s. Beispiel 8) geeignet. Durch 5minütiges Erwärmen auf 35°C wird der Träger vollständig aufgelöst, wobei 5,7 × 104 Zellen freigesetzt werden.1 g of cellulose (Fluka, FRG) are dissolved in 50 ml of 95 ° C. hot 2 M ZnCl 2 solution. The solution at 90 ° 0.2 g of the after Shinkai et al. described method (see Example 2) produced iron oxide, and then dispersed with the aid of a high-performance ultrasound finger (Dr. Hielscher, 80% amplitude) in the polymer phase for one minute. The mixture is dissolved in 600 ml of corn germ oil preheated to 95 ° C ("Timbu" Fa. Penny, FRG), the 0.5% (v / v) Prisorine, 0.2% (v / v) Span 83 and 0.1% (v / v) Tween 80, suspended with stirring (KPG, 1200 rpm). It is continuously stirred for a minute and then cooled with an ice-water bath. After 5 minutes of continuous stirring, the polymer phase is separated off from the organic phase by means of the hand magnet (see Examples 2) and washed several times with petroleum ether and finally twice with ice water. After air drying for two hours, particles with a mean particle size of 55 μm are obtained. Thereafter, the product is freeze-dried for three days. 150 mg of the product thus obtained are dissolved with 1.5 ml of dimethyl sulfoxide / acetone solution (0.5: 1), in each of which 6 mmol of 4-dimethylamino-pyridine and 5 mmol of 2-fluoro-methyl-pyridinium-toluene-sulfonate, 45 Min. Implemented at 10 ° C. This is followed by washing 5 times with ice-cold activating solution and finally washing once with ice-cold water, using the magnetic separation step in each case. The activated product is then incubated with 4.8 10 -6 mM mouse anti-CD34 IgG (Invitrogen, FRG) dissolved in 3 ml of 0.05 M K-phosphate buffer / 0.15 M NaCl, pH 7.2, for 3 hours, reacted at 4 ° C. After washing several times with the ice-cold coupling buffer, the remaining unreacted groups are deactivated by incubation at 4 ° C. in 3 ml of 0.1 M Tris-HCl buffer, pH 8.5, containing 20 mmol of mercaptoethanol for 1 hour. Thereafter, the magnetic particles are washed with ice-cold PBS buffer / 0.05% Triton X-100, pH 7.2, and suspended in 3 ml of PBS buffer, pH 7.2. The suspension is according to the method for the separation of hematopoietic stem cells Ying et al. (see Example 8). Heating to 35 ° C for 5 minutes completely dissolves the carrier, releasing 5.7 × 10 4 cells.

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Claims (30)

Magnetische und unmagnetische, sphärische, nicht covalent vernetzte Polymerpartikel zur Abtrennung von Biosubstanzen und Zellen, dadurch gekennzeichnet, daß Polymerpartikel durch Erwärmen oder Zugabe eines Metallkomplexbildners auflösbar sind.Magnetic and non-magnetic, spherical, non-covalently crosslinked polymer particles for the separation of biomaterials and cells, characterized in that polymer particles are resolvable by heating or adding a metal complexing agent. Polymerpartikel nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die die Partikel konstituierenden Polymere in einem Lösungsmittel nur oberhalb 35°C löslich sind und unterhalb dieser Temperatur als Feststoffe vorliegen.Polymer particles according to Claim 1, characterized that the polymers constituting the particles in a Solvent only above 35 ° C soluble are and are below this temperature as solids. Polymerpartikel nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Partikel ionogen vernetzt sind.Polymer particles according to Claim 1, characterized that the particles are ionogenically crosslinked. Polymerpartikel nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß der ionogene Vernetzer in einer Konzentration von 0,1 bis 10 Mol-%, bezogen auf die vernetzbaren Gruppen, vorliegt.Polymer particles according to Claim 3, characterized that the ionic crosslinker in a concentration of 0.1 to 10 mol%, based on the crosslinkable groups, is present. Polymerpartikel nach Ansprüchen 3 oder 4, dadurch gekennzeichnet, daß der ionogene Vernetzer ein zwei- oder dreiwertiges Metallion, ein positiv oder negativ geladenes Polymer oder ein positiv oder negativ geladenes Oligomer ist.Polymer particles according to claims 3 or 4, characterized characterized in that the ionic crosslinker is a two- or trivalent metal ion, a positively or negatively charged polymer or a positively or negatively charged oligomer. Polymerpartikel nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß die sie bildenden Polymere aus Polyaminosäuren, Alginat, Agarose, Pektinsäure, Proteinen, Polysacchariden, Stärke, Hyaluronsäure, Dextran, Sialinsäure, Collagen, Chitosan, Polyethylenglykolen, Polyvinylalkoholen, Gelatine, Amylose, Cellulose oder Polyacrylaten oder Mischungen derselben bestehen.Polymer particles according to one of the claims 1 to 5, characterized in that the polymers forming them from polyamino acids, alginate, agarose, pectic acid, Proteins, polysaccharides, starch, hyaluronic acid, Dextran, sialic acid, collagen, chitosan, polyethylene glycols, Polyvinyl alcohols, gelatin, amylose, cellulose or polyacrylates or mixtures thereof. Polymerpartikel nach einem der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß die Partikel superparamagnetische, ferromagnetische oder ferrimagnetische Teilchen mit einer Teilchengröße < 1 μm oder Magnetkolloide oder Ferrofluide enthalten.Polymer particles according to one of the claims 1 to 6, characterized in that the particles are superparamagnetic, ferromagnetic or ferrimagnetic particles with a particle size <1 μm or Magnetic colloids or ferrofluids included. Polymerpartikel nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß die Partikel 10 bis 40 Gew.-% magnetische Substanz enthaltenPolymer particles according to Claim 7, characterized that the particles 10 to 40 wt .-% magnetic substance contain Polymerpartikel nach einem der Ansprüche 1 bis 8, dadurch gekennzeichnet, daß die Partikel mit Biosubstanzen koppelnde, reaktive Gruppen aufweisen.Polymer particles according to one of the claims 1 to 8, characterized in that the particles with biosubstances have coupling, reactive groups. Polymerpartikel nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß die koppelnden Gruppen mit Antikörpern, sekundären Antikörpern, Peptiden, Proteinen, Antigenen, Enzymen, Zellrezeptor-Antikörpern, Antikörpern gegen Tumormarker, Antikörperfragmenten, künstlich hergestellten Antikörpern, abgewandelten Antikörpern, Antikörperkonjugaten, Oligosacchariden, Glykoproteinen, Lektinen, Nukleinsäuren, Streptavidin oder Biotin umgesetzt sind.Polymer particles according to Claim 9, characterized that the coupling groups with antibodies, secondary Antibodies, peptides, proteins, antigens, enzymes, cell receptor antibodies, Antibodies to tumor markers, antibody fragments, artificially produced antibodies, modified Antibodies, antibody conjugates, oligosaccharides, Glycoproteins, lectins, nucleic acids, streptavidin or Biotin are implemented. Polymerpartikel nach einem der Ansprüche 1–8, dadurch gekennzeichnet, daß die Polymerpartikel anionische oder kationische Gruppen enthalten.Polymer particles according to any one of claims 1-8, characterized in that the polymer particles are anionic or cationic groups. Polymerpartikel nach Anspruch 11, dadurch gekennzeichnet, daß die anionischen oder kationischen Gruppen in Form von primären, sekundären oder tertiären Aminofunktionen oder Carboxyl- oder Sulfonatfunktionen vorliegen.Polymer particles according to claim 11, characterized in that that the anionic or cationic groups in the form of primary, secondary or tertiary amino functions or carboxyl or sulfonate functions. Verfahren zur Herstellung von Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass eine lösliche Polymerphase durch Temperaturerniedrigung oder Zugabe eines ionogenen Vernetzers zu einem Festkörper verfestigt wird.Process for the preparation of polymer particles according to of claims 1 to 12, characterized in that a soluble polymer phase by lowering the temperature or Addition of an ionic crosslinker is solidified to a solid. Verfahren zur Herstellung von Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass eine lösliche Polymerphase, in der ein magnetisches Kolloid oder ein Ferrofluid oder eine magnetische Substanz mit einer Teilchengröße < 1 μm dispergiert ist, durch Temperaturerniedrigung oder Zugabe eines ionogenen Vernetzers zu einem Festkörper verfestigt wird.Process for the preparation of polymer particles according to of claims 1 to 12, characterized in that a soluble polymer phase containing a magnetic colloid or a ferrofluid or a magnetic substance having a particle size <1 μm dispersed is by lowering the temperature or adding an ionic crosslinker is solidified to a solid. Verfahren zur Herstellung von Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass eine Polymerlösung bei einer Temperatur > 40°C in einer nicht mit der Polymerphase mischbaren organischen Phase unter mechanischem Rühren suspendiert und durch Temperaturerniedrigung auf < 30°C zu sphärischen Partikeln verfestigt wird.Process for the preparation of polymer particles according to of claims 1 to 12, characterized in that a Polymer solution at a temperature> 40 ° C in a not with the Polymer phase miscible organic phase with mechanical stirring suspended and by lowering the temperature to <30 ° C to solidified spherical particles. Verfahren zur Herstellung von Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass eine Polymerlösung in einer nicht mit der Polymerphase mischbaren organischen Phase unter mechanischem Rühren suspendiert und durch Zugabe eines ionogenen Vernetzers zu sphärischen Partikeln verfestigt wird.Process for the preparation of polymer particles according to of claims 1 to 12, characterized in that a Polymer solution in a non-miscible with the polymer phase suspended organic phase with mechanical stirring and by adding an ionic crosslinker to spherical Particles is solidified. Verfahren zur Herstellung von Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass eine Polymerlösung bei einer Temperatur > 40°C in einer nicht mit der Polymerphase mischbaren organischen Phase unter mechanischem Rühren suspendiert und mittels Temperaturerniedrigung während des Suspensionsvorganges zu sphärischen Partikeln verfestigt wird.Process for the preparation of polymer particles according to of claims 1 to 12, characterized in that a Polymer solution at a temperature> 40 ° C in a not with the Polymer phase miscible organic phase with mechanical stirring suspended and by lowering the temperature during of the suspension process solidified into spherical particles becomes. Verfahren zur Herstellung von Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass eine Polymerlösung in einer nicht mit der Polymerphase mischbaren organischen Phase unter mechanischem Rühren dispergiert und während des Suspensionsvorganges durch Zugabe eines ionogenen Vernetzers zu sphärischen Partikeln verfestigt wird.Process for the preparation of polymer particles according to one of claims 1 to 12, characterized in that a polymer solution is dispersed in a non-polymerizable with the polymer phase organic phase with mechanical stirring and is solidified during the suspension process by adding an ionic crosslinker to spherical particles. Verfahren zur Herstellung löslicher Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 13 bis 18, dadurch gekennzeichnet, dass als Polymere Polyaminosäuren, Polysaccharide, Polysaccharid-(Meth)acrylat-Derivate, Stärke, Stärkederivate, Agarose, Collagen, Alginat, Chitosan, Polyvinylalkohol, Gelatine, Nukleinsäuren, Proteine, Hyaluronsäure, Dextran, Sialinsäure, Collagen, Polyethylenglykol, Amylose, Cellulose oder Polyacrylate oder Mischungen derselben verwendet werden.Process for the preparation of soluble polymer particles according to one of claims 13 to 18, characterized in that as polyamino acids, Polysaccharides, polysaccharide (meth) acrylate derivatives, starch, Starch derivatives, agarose, collagen, alginate, chitosan, polyvinyl alcohol, Gelatin, nucleic acids, proteins, hyaluronic acid, Dextran, sialic acid, collagen, polyethylene glycol, amylose, Cellulose or polyacrylates or mixtures thereof used become. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 13 bis 19, dadurch gekennzeichnet, dass der Polymerlösung ferromagnetische-, superparamagnetische- oder ferrimagnetische Substanzen oder Ferrite mit einer Teilchengröße < 1 μm oder Ferrofluide oder magnetische Kolloide zugesetzt werden.Method according to one of the claims 13 to 19, characterized in that the polymer solution ferromagnetic, superparamagnetic or ferrimagnetic substances or ferrites with a particle size <1 μm or Ferrofluids or magnetic colloids are added. Verfahren gemäß Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet, dass die magnetische Substanz in einer Konzentration von 5 bis 40 Gew.-%, bezogen auf die Polymerphase, zugesetzt wird.A method according to claim 20, characterized characterized in that the magnetic substance in a concentration from 5 to 40 wt .-%, based on the polymer phase, is added. Verfahren gemäß Ansprüchen 20 oder 21, dadurch gekennzeichnet, dass die magnetischen Substanzen vor der Zugabe zu der Polymerlösung durch oberflächenaktive Substanzen stabilisiert werden.Process according to claims 20 or 21, characterized in that the magnetic substances before addition to the polymer solution by surfactant Substances are stabilized. Verfahren gemäß Anspruch 22, dadurch gekennzeichnet, dass als oberflächenaktive Substanzen Alkylgruppen- oder Arylgruppen-tragende Sulfonsäure-, Sulfonat- oder Carboxylat-Derivate, Polyethylenglycol-Derivate oder Pyrophosphat verwendet werden.A method according to claim 22, characterized characterized in that as surface-active substances alkyl groups or aryl group-bearing sulfonic acid, sulfonate or Carboxylate derivatives, polyethylene glycol derivatives or pyrophosphate be used. Verfahren gemäß einem der Ansprüchen 15, 16 oder 17, dadurch gekennzeichnet, dass als organische Phase Mineralöle, Paraffinöle, Pflanzenöle oder Silikonöle mit einer Viskosität von 40 bis 800 Centipoise verwendet werden.Method according to one of the claims 15, 16 or 17, characterized in that as the organic phase Mineral oils, paraffin oils, vegetable oils or Silicone oils with a viscosity of 40 to 800 centipoise be used. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 15, 16 oder 17, dadurch gekennzeichnet, dass als organische Phase Lösemittel mit einem Verteilungskoeffizienten von 0,4 bis 11 (gemäß Laane et al.,"Biocatalysis in Organic Media", Laane et al., Hrsg., Elsevier, Amsterdam, 1987, pp65) verwendet werden.Method according to one of the claims 15, 16 or 17, characterized in that as the organic phase Solvents with a distribution coefficient of 0.4 to 11 (according to Laane et al., Biocatalysis in Organic Media ", Laane et al., Eds., Elsevier, Amsterdam, 1987, pp65) become. Verfahren gemäß Ansprüchen 24 und 25, dadurch gekennzeichnet, dass in der organischen Phase 0,1 bis 28% einer oder mehrerer oberflächenaktive(r) Substanz(en) gelöst wird/werden.Process according to claims 24 and 25, characterized in that in the organic phase 0.1 to 28% of one or more surfactant (s) is / are resolved. Verfahren gemäß Anspruch 26, dadurch gekennzeichnet, dass als oberflächenaktive Substanz Polyoxyethylensorbitan-Fettsäurester, Fettalkyltetraglykolether-Phosphorsäureester, Alkylsulfosuccinate, Polyoxyethylensorbitanester, Polyoxyethylenarylether, Polyoxyethylene, Polyoxyethylenaddukte, Polyethylenpropylenoxid-Blockcopolymere, Alkylphenoxypolyethoxyethanole, Polyglycerin-diisostearat, Fettalkoholpolyethylenglykolether, Polyglycerinester, Polyoxyethylenalkohole, Polyoxyethylensäuren oder Mischungen derselben zugesetzt werden.A method according to claim 26, characterized in that the surface-active substance used is polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester, Fatty alkyl tetraglycol ether phosphoric acid esters, alkyl sulfosuccinates, Polyoxyethylene sorbitan esters, polyoxyethylene aryl ethers, polyoxyethylenes, Polyoxyethylene adducts, polyethylene-propylene oxide block copolymers, Alkylphenoxypolyethoxyethanols, polyglycerol diisostearate, fatty alcohol polyethylene glycol ethers, Polyglycerol esters, polyoxyethylene alcohols, polyoxyethylene acids or Mixtures thereof are added. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 13 bis 27, dadurch gekennzeichnet, dass an die Polymerpartikel Antikörper, sekundäre Zellantikörper, primäre Zellantikörper, Antikörperfragmente, Peptide, Proteine, Antigene, Enzyme, Zellrezeptor-Antikörper, Antikörper gegen Tumormarker, Antikörper gegen Tumorantigene, künstlich hergestellte Antikörper, abgewandelte Antikörper, Antikörperkonjugate, Oligosaccharide, Glykoproteine, Lektine, Nukleinsäuren, Streptavidin oder Biotin gekoppelt werden.Method according to one of the claims 13 to 27, characterized in that antibodies to the polymer particles, secondary cell antibodies, primary cell antibodies, Antibody fragments, peptides, proteins, antigens, enzymes, Cell receptor antibodies, antibodies against tumor markers, Antibodies against tumor antigens, artificially produced antibodies, modified antibodies, antibody conjugates, Oligosaccharides, glycoproteins, lectins, nucleic acids, streptavidin or biotin can be coupled. Verwendung der auflösbaren, sphärischen, magnetischen oder nicht magnetischen, nicht covalent-vernetzten Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12 als Trennmedien für Zellen, Tumorzellen, Proteine, Nukleinsäuren, biotinylierte Biomoleküle, Steroide, Viren oder Bakterien.Use of resolvable, spherical, magnetic or non-magnetic, non-covalently cross-linked polymer particles according to one of claims 1 to 12 as Separation media for cells, tumor cells, proteins, nucleic acids, biotinylated biomolecules, steroids, viruses or bacteria. Verwendung der auflösbaren, sphärischen, magnetischen oder nicht magnetischen, nicht covalent-vernetzten Polymerpartikel gemäß einem der Ansprüche 1 bis 12 als Trennmedien für Zellen, Tumorzellen, Proteine, Nukleinsäuren, biotinylierte Biomoleküle, Steroide, Viren oder Bakterien in einer Lösung, die 0,5 bis 5 Gew.-% zell- oder proteinpräservierende Mittel in Form von Polyvinylalkoholen, Polysacchariden, Mono-, Di-, Trisacchariden, Polyethylenglykolen und/oder Glycerin und/oder Proteinen enthält.Use of resolvable, spherical, magnetic or non-magnetic, non-covalently cross-linked polymer particles according to one of claims 1 to 12 as Separation media for cells, tumor cells, proteins, nucleic acids, biotinylated biomolecules, steroids, viruses or bacteria in a solution containing 0.5 to 5% by weight cell or protein preserving Agents in the form of polyvinyl alcohols, polysaccharides, mono-, di-, Trisaccharides, polyethylene glycols and / or glycerol and / or proteins.
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