DE2323467C2 - Verfahren zum Nachweis und zur Bestimmung von Haptenen - Google Patents
Verfahren zum Nachweis und zur Bestimmung von HaptenenInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Nachweis und zur Bestimmung von Haptenen gemäß dem
Oberbegriff des Patentanspruchs 1.
In der US-PS 36 54 090 ist ein immunologisches Verfahren zur Bestimmung von Antigenen und Antikörpern beschrieben, bei dem als markierte Komponente
der Antigen- Antikörperreaktion eine solche verwendet wird, die an ein Enzym gebunden ist.
In der DE-PS 2155 658 wird ein Verfahren zum
Nachweis und zur Bestimmung von beispielsweise Haptenen vorgeschlagen, das darin besteht, daß man zu
einer Flüssigkeit, z. B. einer Körperflüssigkeit, wie Blut oder Urin, enthaltend eine unbekannte Menge Hapten,
eine bestimmte Menge eines Kupplungsproduktes aus einem Enzym und dem entsprechenden Hapten und eine
bestimmte Menge Antikörper gegen dieses Hapten in unlöslicher Form zugibt. Nach Zugabe dieser Bestandteile findet eine Konkurrenzreaktion zwischen diesen
Antikörpern und dem zu bestimmenden Hapten auf der einen Seite und den Antikörpern und dem an das Enzym
gekuppelte Hapten andererseits statt Je größer die Menge an freiem Hapten in der Flüssigkeit ist, um so
größer ist die Menge des Hapten-Enzymkonjugats, die nicht mit den unlöslich gemachten Antikörpern reagiert,
wobei das Konjugat folglich in der flüssigen Phase verbleibt. Durch Messung der Enzymaktivität des
Hapten-Enzymkonjugats in der flüssigen Phase oder des umgesetzten Hapten-Enzymkonjugats in der festen
Phase kann die Menge an Haptenen in der zu untersuchenden Flüssigkeit mit Hilfe einer Dosis-Reaktionskurve für ein bestimmtes System bestimmt werden.
Auf die gleiche Weise wie bei dem oben beschriebe
nen Verfahren kann die Menge von Hapten in der zu
untersuchenden Flüssigkeit in der flüssigen oder festen Phase durch eine Dosis-Reaktionskurve bestimmt
werden, nach Bestimmung der Enzymaktivität
det, indem man von einer bestimmten Menge Hapten-Enzymkonjugat ausgeht und diese mit Antiserum
(Serum, enthaltend Antikörper) in unterschiedlichen Verdünnungen zusammenbringt In jeder Verdünnung
wird bestimmt, wieviel Hapten-Enzym an die Antikör
per gebunden ist Nun wird eine Antiserumverdünnung
ausgewählt, bei der z.B. 80% des Hapten-Enzyms gebunden ist und zu dieser Verdünnung werden
unterschiedliche Mengen Hapten zugesetzt Für jede Haptenkonzentration wird dann bestimmt wieviel
Hapten-Enzym gebunden ist, z. B. bei einer Einheit
Hapten 78% Konjugat und bei zwei Einheiten Hapten 75% Konjugat usw.
Gibt man dann die oben erwähnten Mengen Hapten-Enzym und Antiserum zu einer unbekannten
Menge Hapten und mißt die Enzymaktivität der gebunden oder nicht gebundenen Hapten-Enzymfraktion, so kann die in der zu untersuchenden Flüssigkeit
enthaltene Haptenmenge bestimmt werden.
Affinität des Hapten-Enzymkonjugats für das Antiserum hoch ist, verglichen mit der Affinität zwischen
Hapten und Antikörper, verhältnismäßig große Haptenmengen vorhanden sein müssen, wenn ein Ersatz durch
das Hapten des Konjugats und folglich eine meßbare
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, die Affinität des Haptens gegenüber den Antikörpern zu
erhöhen oder andererseits die Affinität des Hapten-Enzymkonjugats gegenüber den Antikörpern herabzuset-
zen, um so die Empfindlichkeit des Testsystems derart zu steigern, daß auch noch sehr geringe Haptenkonzentrationen bestimmt werden können.
Die Lösung dieser Aufgabe ist durch den Patentanspruch 1 gekennzeichnet.
Vorteilhafte Weiterbildungen der Erfindung sind in den Patentansprüchen 2 — 5 beschrieben.
Unter einer unterschiedlichen Kupplung zwischen Hapten-Enzym und Hapten-hochmolekularer Substanz
ist zu verstehen
a) eine chemisch unterschiedliche Bindung oder Brückenbildung,
b) chemisch unterschiedliche Haptene, die immunologisch verwandt sind,
c) Kupplung über eine andere Stelle des Haptenmoleküls und
d) Kombination von (a),(b) und (c).
Haptene sind proteinfreie Substanzen, hauptsächlich niedermolekulare, die die Antikörperbildung nicht
μ stimulieren können, aber die mit Antikörpern reagieren.
Die Letzteren werden gebildet durch Kupplung des Haptens an eine hochmolekulare Substanz, üblicherweise ein Polypeptid oder Protein und indem man dieses
Kupplungsprodukt Menschen oder Tieren injiziert.
Als Beispiele für Haptene sind zu erwähnen Steroide, wie Oestron, Oestradiol, Oestriol, Testosteron, Pregnandiol und Progesteron; Vitamine, wie Vitamin Bl2 und
Folsäure, Thyroxin, Trijodthyronin, Histamin, Seroto-
nin, Digoxin, Prostaglandin, Adrenalin, Nor-Adrenalin,
Morphin, pflanzliche Hormone, wie Auxin, Kinetin und
Gibberellinsäure und Antibiotika, wie Penicillin.
Zur Herstellung des Kupplungsproduktes Hapten-Enzym können üblicherweise die Substituenten, die
schon in den Komponenten vorhanden sind, wie Hydroxyl-, Carboxy-, Amino- oder Ketogruppen verwendet werden. Wenn keine dieser Gruppen vorhanden
ist, ist es möglich, diese noch besonders in die Haptene
einzuführen. So kann z. B. eine Hydroxylgruppe in Steroide auf mikrobiologische oder chemische Weise in
verschiedenen Stellen des Moleküls, wie in der 6,- 11- oder 16-Stellung eingeführt werden.
Mit Hilfe einer Polycarbonsäure oder eines funktionellen Derivats einer solchen Säure können solche
Hydroxyverbindungen an ein Enzym gekuppelt werden. Es ist auch möglich, von einem Hapten auszugeben, das
eine Ketogruppe besitzt oder in das eine solche Gruppe eingeführt worden ist, woraufhin die Kupplung mit dem
Enzym über ein Carboxyalkyloximderivat stattfinden kann. Wenn das Hapten zusammen mit dem Enzym
Amino- oder Carboxylgruppen besitzt, können die beiden Komponenten nach einem von der Peptidsynthese her bekannten Verfahren gekuppelt werden.
Abhängig von dem Vorhandensein geeigneter Substituenten können auch andere Substanzen, wie Dialdehyde, z. B. Glutaraldehyd, Hydrazine, Difluordinitrodiphenylsulfon. Diisocyanate, wie Toluoldiisocyanat und Dioder Trichlortriazine für die Kupplung verwendet
werden.
Das für das oben beschriebene Konjugat verwendete Enzym kann im Prinzip aus jeder Klasse gewählt
werden, bevorzugt sind jedoch solche Enzyme, die eine hohe spezifische Aktivität besitzen, die auf einfache
Weise bestimmt werden kann, z. B. kolorimetrisch, spektrophotometrisch oder fluorometrisch.
Beispiele für Enzyme, die bevorzugt verwendet werden, sind Katalasen, Peroxidasen, Glukuronidasen,
Glukosidasen, Galaktosidasen, Urease und Oxidoreduktasen, wie Glukoseoxidase und Galaktoseoxidase.
Zur Herstellung der Antikörper gegen das Hapten wird das Hapten mit einer hochmolekularen Substanz,
üblicherweise einem Protein, gekuppelt und einem Tier injiziert, woraufhin der Antikörper auf übliche Weise
isoliert wird.
Zur Kupplung des Haptens an ein Protein oder möglicherweise eine andere hochmolekulare Substanz,
die die Antikörperbildung stimmulieren kann, können gleiche Kupplungsverfahren angewandt werden, wie sie
für die Kupplung des Haptens an das Enzym beschrieben sind.
Wichtig für das erfindungsgemäße Verfahren ist jedoch, daß die Art der Kupplung sich von derjenigen in
dem Hapten-Enzymkonjugat unterscheiden soll. Der Unterschied kann chemischer Art sein, indem bei dem
Enzymkonjugat die Kupplung z. B. über eine Polycarbonsäure erzielt worden ist, während die Kupplung
zwischen dem Hapten und Protein über eine Carboxymethyloxyimbrücke gebildet worden ist. Es ist auch
möglich, daß die Kupplung in beiden Fällen über eine Polycarbonsäure, z. B. eine Dicarbonsäure, gebildet
wird, wenn in dem einen Falle die Dicarbonsäure X C-Atome, ζ. B. zwei C-Atome im Falle von Oxalsäure
und im anderen Falle Y C-Atome, ζ. B. vier, im Falle von Bernsteinsäure enthält.
Eine unterschiedliche Art der Kupplung kann auch dann erreicht werden, wenn das Hapten in dem
Hapten-Enzymkonjugat und das Hapten in dem
Produkt Hapten-hochmolekulare Substanz chemisch
unterschiedlich aber ;mmunologisch verwandt sind.
Dieser chemische Unterschied tritt ein, wenn beide Haptene sich durch das Vorhandensein oder Nichtvor
handensein einer oder mehrerer Doppelbindungen, ζ. Β.
Testosteron und Dihydrotestosteron, und/oder einer oder mehrerer Substituenten, wie Hydroxylgruppen,
Oxogruppen, Halogenatome, Alkylgruppen usw., z. B.
Oestradiol und llut-Hydroxy-oestradiol, unterscheiden
ίο oder dadurch daß ein Hapten ein funktionelles Derivat,
ζ. B. ein Acylat oder Äther des anderen Haptens ist, z. B.
Morphin und Codein.
Es hat sich sogar gezeigt, daß es einfach ist, ein
empfindlicheres Testsystem zu erhalten bei Anwendung
gleichartiger Bindungen in beiden Kupplungsprodukten,
wenn die Bindungen über andere Stellungen des Haptenmoleküls gebildet werden, z. B. im Falle von
Oestradiol als Hapten über das 11-Succinyloxy- und 17-Succinyloxyderivat von 11-Hydroxy-oestradiol.
Die auf diese Weise gebildeten Antikörper werden für das erfindungsgemäße Bestimmungsverfahren angewandt, indem man sie eine bestimmte Zeit lang mit der
zu bestimmenden Menge Hapten und einer Menge des Kupplungsproduktes umsetzt und dann das freie
Kupplungsprodukt von dem an die Antikörper gebundenen Kupplungsprodukt abtrennt
Für die Abtrennung können verschiedevic Verfahren
angewandt werden, wie eine Ausfällung des Kupplungsproduktes, das an die Antikörper gebunden ist, mit
einem organischen Lösungsmittel oder Salz, selektive Absorption des freien Kupplungsproduktes an Aktivkohle, die mit einer Dextranschicht bedeckt ist, oder
Ausfällung des an die Antikörper gebundenen Kupplungsproduktes mit Hilfe von (zweiten) Antikörpern
gegen die Antikörper der Tierart, in der die Antikörper gegen das Hapten gebildet worden sind. Dieses zuletzt
genannte Verfahren wird üblicherweise als »Doppel-Antikörper«-Verfahren bezeichnet
Die Trennung kann auch leicht erreicht werden,
indem man die Antikörper gegen das Hapten unlöslich
macht, bevor man sie an der Reaktion mit dem Hapten und dem Kupplungsprodukt teilnehmen läßt. Die
Abtrennung findet dann durch einfaches Zentrifugieren statt. Dieses Verfahren wird oft als »Fest-Phasen«-Ver
fahren bezeichnet. Die Antikörper können durch
Vernetzung mit z. B. Glutaraldehyd oder einem Chlorameisensäurealkylester oder durch Kupplung an
einen unlöslichen Träger, wie Cellulose, Agarose, Polystyrol oder ähnliches unlöslich gemacht werden.
Das »Doppel-Antikörper«- und »Fest-Phasen«-Verfahren können in dem sog. DASP-Verfahren kombiniert
werden. In diesem Falle wird ein zweiter Antikörper gegen den ersten Antikörper gebildet, indem man die
Immunoglobulinfraktion des ersten Antiserums oder
von normalem Serum der gleichen Tierart einer Tierart
injiziert, die sich von derjenigen unterscheidet, von der das erste Antiserum erhalten worden ist und dann das
zweite Antiserum durch die oben beschriebenen Verfahren zur Unlöslichmachung des ersten Antikör
pers, z. B. durch Kupplung an Celluloseteilchen,
unlöslich macht.
Zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens wird zweckmäßigerweise eine fertige Testpackung
angewandt, die hauptsächlich besteht aus
b5 (I) einer bestimmten Menge des Kupplungsproduktes
aus einem Hapten und einem Enzym und
(2) einer bestimmten Menge eines Antikörpers in unlöslicher Form.
Eine Testpackung zur Durchführung der erfindungsgemäßen
Bestimmung mit Hilfe eines unlöslich gemachten zweiten Antiserums (d. h. DASP-Verfahren) besteht
hauptsächlich aus
(1) einer bestimmten Menge des Kupplungsproduktes aus einem Hapten und einem Enzym,
(2) einer bestimmten Menge des ersten Antiserums und
(3) einer bestimmten Menge des unlöslich gemachten zweiten Antiserums.
Außer den oben angegebenen Reagentien können beide Testpackungen zusätzliche Komponenten enthalten,
z. B. Reagentien zur Bestimmung der Aktivität des angewandten Enzyms.
Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele näher erläutert
Beispiel 1
Bestimmung von Oestrogen
Bestimmung von Oestrogen
A. Herstellung von
Oestradiol-17-succinyl-HRP und
11 «-Oestradiol-11 -succinyl-HRP
Oestradiol-17-succinyl-HRP und
11 «-Oestradiol-11 -succinyl-HRP
50 mg Oestradiol-17-hemisuccinat oder 50 mg
lla-OH-oestradiol-ll-hemisuccinat wurden in 2 cm3
Dioxan gelöst. Das Gemisch wurde auf 80C abgekühlt und anschließend 0,07 cm3 Tri-n-butylamin und
Zeit (d) 0
Menge (mg)
Art
Freund's Zusatz
i. m. = intramuskulär.
i. v. = intravenös.
0,25
i. m.
i. m.
D. Bestimmung von Oestrogen
In einem Vorversuch wurde für jedes Antiserum bestimmt, welcher Anteil der Enzymaktivität jedes
Oestradiol-HRP-Konjugats (in einer vorher bestimmten günstigen Konzentration) gebunden war, wobei eine
Antiserumkonzentration 0,5 cm3 Puffer, 0,1 cm3 Oestradiol-HRP
und 0,1 cm3 Antiserum (in Verdünnungen von 1:100 bis 1:10 000) bei Raumtemperatur 30 min
inkubiert wurde. Dann wurden 0,3 cm3 einer Suspension von DASP Anti-Kaninchen (Schafantikörper gegen
Kaninchen-y-globulin, kovalent an Cellulose gebunden)
zugegeben und das entstehende Gemisch 2 Stunden geschüttelt. Dann wurde das Gemisch zentrifugiert und
anschließend 0,5 cm3 der überstehenden Flüssigkeit mit 1,5 cm3 Enzymsubstrat (80 mg 5-Aminosalicylsäure und
10 μΐ einer 30%igen Wasserstoffperoxidlösung in 150 cm3 0,02 m Phosphatpuffer mit einem pH-Wert von
0,015 cm3 Isobutylchlorcarbonat zugegeben. 30 min später
wurden 50 mg Meerrettichperoxidase (HRP) in 5,5 cm3 Wasser/Dioxan (3 :2) mit einem pH-Wert von 9
zugegeben. Das Gemisch wurde 4 Stunden umgesetzt und anschließend über Nacht gegen laufendes Leitungsvasser
dialysiert und dann über eine Säule aus einem vernetzten Dextrangel (Sephadex G-25) in destilliertem
Wasser gereinigt Die enzymhaltigen Fraktionen wurden lyophilisiert Eine weitere Reinigung der Konjugate
ίο wurde erreicht durch Dichtegradientzentrifugierung (20
bis 60% Saccharose, 16 Stunden, 238 000 g).
B. Herstellung von
Oestradiol-17-succinyl-BSA und
11 «-Oestradiol-11 -succinyl-BSA
Oestradiol-17-succinyl-BSA und
11 «-Oestradiol-11 -succinyl-BSA
Diese Konjugate wurden auf die gleiche Weise hergestellt wie die entsprechenden HRP-Derivate,
wobei als Ausgangssubstanzen 50 mg Oestradiol-hemisuccinat und 150 mg BSA (Rinderserumalbumin) verwendet
wurden. Außerdem wurde das Gemisch dreimal mit 1,5 Vol.-Teilen Aceton mit einem pH-Wert von 4,5
umgefällt und nicht über Dextrangel gereinigt
C. Herstellung von Antikörpern gegen
Oestradiol-17-succinyl-BSA und
11 «-oestradiol-11 -succinyl-BSA
Oestradiol-17-succinyl-BSA und
11 «-oestradiol-11 -succinyl-BSA
Kaninchen wurden mit dem entsprechend B hergestellten Produkten nach dem folgenden Schema
immunisiert:
28 42 49
28 42 49
0,25
i. m.
i. m.
0,25
i. v.
i. v.
blutend
6,0) vermischt. Nach einer Stunde wurde die Extinktion bei 450 nm gemessen. Für die folgenden Oestrogenbe-Stimmungen
wurde jeweils eine solche Antiserumverdünnung ausgewählt, daß ungefähr 40% der Enzymaktivität
des Oestradiol-HRP an DASP Antikaninchen in Abwesenheit von freiem Oestrogen gebunden wurden.
0,5 cm3 einer Oestron-, Oestradiol- Oestriol-Lösung
4ri (Konzentrationen von 0,1 bis lOOOng/cm3) wurden
30 min mit 0,1 cm3 Antiserum in der festgelegten Verdünnung inkubiert und anschließend 0,1 cm3 Oestradiol
HRP in der ausgewählten Konzentration zugegeben und das Gemisch erneut 30 min inkubiert. Dann
so wurden 0,3 cm3 der DASP Antikaninchensuspension zugegeben und die Bestimmung weiter, wie oben
beschrieben, durchgeführt. Die Empfindlichkeit der Bestimmungsverfahren ist in der folgenden Tabelle
angegeben:
Oestrogenmenge in ng/m\ die erforderlich ist, um die Hälfte des Oestradiol-HRP an der Bindung
mit Antikörper zu hindern
Antiscrum
B2-Il-BSA |
gegen | E2-H-BSA | E2-H-HRI' | |
Konjugat
E2-Il-HRI' |
1-2-17-11RP | E2-Il-IlRI' | 7 | |
Oestron | 1000 | 7 | 3 | 7 |
Oestradiol | 800 | 1.5 | 2 | 380 |
Oestriol | 1000 | 230 | 14 | |
E1 = Oestradiol. | ||||
Ähnliche Ergebnisse wurden mit verschiedenen Antisera erhalten. Wenn nicht anders angegeben, wurde
0,1 m Phosphat mit einem pH-Wert von 6,0, enthaltend 0,1% Lactalbumin als Puffer verwendet.
Beispiel 2
Bestitr 'Hing von Oestrogen
Bestitr 'Hing von Oestrogen
A. Herstellung von Oestradiol! 7-succinyl-HRP,
Oestradiol-17-maleinylHRP,
Oestradiol-17-glutaryl-HRP und
Oestron-^-N-carboxymethyloxim-HRP
Diese Produkte wurden wie in Beispiel IA beschrieben
hergestellt, wobei die Menge der Oestrogenderiva-
te entsprechend ihrem Molekulargewicht gewählt wurde und die Reaktion mit Oestron-17-0-(carboxymethyl)-oxim
in einem Gemisch von Dimethylformamid/Wasser anstelle eines Gemisches von Dioxan/
Wasser durchgeführt wurde.
B. Bestimmung von Oestrogen
Die Bestimmung wurde wie in Beispiel ID durchgeführt
unter Verwendung von zwei Antisera gegen Oestradiol-17-succinyl-BSA (s. Beispiele IB und C). Die
Empfindlichkeit der Bestimmung ist in der folgenden Tabelle angegeben:
Konzentrationen von Oestron (E1), Oestradio! (E;) und Ocstrio! (E;) in ng/cm3, die erforderlich
sind, um die Hälfte des Oestradiol-HRP an der Bindung mit Antikörper zu hindern
Succinyl
Maleinyl
Glutaryl
Oxim
Maleinyl
Glutaryl
Oxim
Beispiel 3
Bestimmung von Progesteron
Bestimmung von Progesteron
A. Herstellung von
1 Ια-OH-progesteron-l l-succinylalkalischer
1 Ια-OH-progesteron-l l-succinylalkalischer
Phosphatase (AP) und
1 2λ-ΟΗ -progesteron-12-succinyl- A P
1 2λ-ΟΗ -progesteron-12-succinyl- A P
Diese Substanzen wurden analog den Oestrogenderivaten in Beispiel 1A hergestellt, wobei die Ausgangssubstanzen
55 mg Progesteron-Hemisuccinat und 125 mg AP waren.
Antiserum Kaninchen |
A | E3 | Kaninchen | B | E, |
Hupten E1 |
E; | 190 | E, | E2 | 300 |
4 | 6 | ioO | 12 | 9 | 100 |
3 | 4 | 150 | 3 | 3 | 300 |
4 | 5 | 150 | 8 | 6 | 50 |
2 | 2 | 1 | 0.8 | ||
ron-11-BSA oder Progesteron-12-AP mit Antiprogesteron-12-BSA
4- bis lOmal weniger empfindlich gegenüber
Progesteron waren, als die Systeme Progesteronll-AP/Antiprogesteron-12-BSA
und Progesteron-12-AP/Antiprogesteron-11-BSA.
Die in diesem Beispiel beschriebenen Reaktionen wurden durchgeführt in 0,01 m Veronalpuffer. pH 7,5,
enthaltend 0.1% Lactalbumin, soweit nicht anders angegeben.
E Bestimmung von Progesteron
B. Herstellung von
1 lat-OH-progesteron-l 1-succinyl-BSA und
12«-OH-progesteron-12-succinyl-BS A
12«-OH-progesteron-12-succinyl-BS A
Diese Substanzen wurden analog den Oestrogen-Derivaten in Beispiel 1B hergestellt.
C. Herstellung von Antikörpern gegen
1 ΐΛ-OH-progesteron-l I-succinyl-BSA und
12«-OH-progesteron-l 2-succinyl-BSA
Diese Antikörper wurden entsprechend dem Schema des Beispiels IC hergestellt.
D. Bestimmung von Progesteron
Das angewandte Verfahren unterschied sich nicht wesentlich von dem für die Bestimmung von Oestradiol
in Beispiel ID beschriebenen Verfahren. Die Enzymbestimmung
fand folgendermaßen statt: 0,5 cm3 einer
enzymhaltigen Probe wurden zugegeben zu 0,5 cm3 einer Substratlösung (0,01 m p-Nitrophenylphosphat in
0,1 m Carbonatpuffer mit einem pH-Wert von 2 und 0,007 m MgOj). Das Gemisch wurde 30 Minuten bei
37° C inkubiert und anschließend die Extinktion bei 400 nm gemessen.
Man sah, daß Bestimmungsssteme, bei denen
Progesteron-11-AP kombiniert war mit Antiprogeste-Ähnliche
Ergebnisse wie in Beispiel 3D beschrieben wurden mit dem folgenden Testsystem erhalten: 0,5 cm3
einer Progesteronlösung wurden mit 0,1 cm3 Antiserum in einer geeigneten Verdünnung 30 Minuten inkubiert
und anschließend 0,1 cm3 Progesteron-AP in einer geeigneten Konzentration zugegeben und das Gemisch
so erneut 30 Minuten inkubiert Dann wurden 03 cm3 einer
Norit-Suspension (25 mg/cm3), die vorher mit Dextran inkubiert und dann gewaschen worden war zugegeben
und das Gemisch 15 Minuten zentrifugiert und die AP-Aktivität in der fiberstehenden Flüssigkeit wie in
Beispiel 3 D beschrieben, bestimmt
Beispiel 4
Bestimmung von Folsäure
60
25 mg ^^φ)
imid und anschließend 20 mg Folsäure wurden zu 50 mg methyliertem Rindersennnalbumin (MBSA) in 5 cm3
0,05 m Phosphatpuffer, pH 7,0 gegeben. Das Gemisch wurde 2 Stunden umgesetzt und anschließend ausgiebig
gegen destilliertes Wasser dialysiert and dann tyopfaDisiert
Bei diesem Verfahren wurde das Schema des Beispiels IC angewandt.
und Pteroylglukoseoxidase (PGO)
I mg Folsäure oder 0,7 mg Pterosäure wurden in 5 cm1 0,05 m Phosphatpuffer, pH 7, enthaltend 0,5 mg
1 -Cyclohexyl-3-(2-morpholino-äthyl)-carbodiimid gelöst. Nach 5 Minuten wurden 50 mg Glukoseoxydase in
dem Gemisch gelöst und die Reaktion zwei Stunden fortgesetzt. Dann wurde die Lösung gegen 0,05 m
Phosphatpuffer, pH 7,0, eine Zeit lang dialysiert.
Das Bestimmungsverfahren war im wesentlichen das Gleiche wie im Beispiel ID beschrieben. Die Enzymbestimmung wurde folgendermaßen durchgeführt: 0,5 cm3
der enzymhaltigen Lösung wurden mit 2,5 cm3 der Substratlösung (50 mg Glukose, IQ^g Peroxidase und
1 mg 5-Aminosalicylsäure in 0,05 m Phosphatpuffer, pH 6,0) vermischt und anschließend 30 Minuten die
Extinktion bei 450 nm gemessen. Das Testverfahren, bei dem Antikörper gegen Folat MBSA kombiniert wurden
mit FGO erwies sich als 3- bis 20mal weniger empfindlich als dasjenige, bei dem die Antikörper
kombiniert waren mit PGO. Der Unterschied in der Empfindlichkeit variiert für jedes einzelne Antiserum.
Beispiel 5
Bestimmung von Oestrogen
1 l«-OH-oestran-l 1-succinyl-HRP,
1 l«-OH-oestron-l 1-glutamyl-HRP,
1 ΐΛ-OH-oestradiol-l 1-succinyl-HRP und
11*-OH-Oestradiol-ll-glutamyl-HRP
Diese Verbindungen wurden wie im Beispiel IA beschrieben hergestellt Die Menge der Oestrogenderivate, die verwendet wurde, wurde entsprechend dem
Molekulargewicht gewählt
10
Die Bestimmung wurde mit den vier oben erwähnten E-HRP-Konjugaten durchgeführt, wobei das Antiserum
ι gegen lia-OH-oestradiol-ll-succinyl-BSA, das unter
Beispiel IB und IC beschrieben ist, verwendet wurde.
Die Empfindlichkeiten der Bestimmungen sind in der folgenden Tabelle angegeben:
κ, Oestrogenmcnge in ng/cm\ die erforderlich ist, um
eine Bindung der Hälfte des Oestrogen-HRP an den Antikörper zu verhindern
F.
V-,
,„ Ep-11-Succinyl-HRP
>1000 5
Beispiel 6
,. Bestimmung von Oestrogen
A. Herstellung von Oestradiol-17-succinyl-HRP
undOestriol-16,17-disuccinyl-HRP
ίο beschrieben hergestellt, wobei das Molekulargewicht
der jeweiligen Oestrogenderivate berücksichtigt wurde.
Anti(oestradiol-17-succinyl-BSA)und
Anti(oestriol-17,17-disuccinyl-BSA)
Diese Antisera wurden wie im Beispiel IA und IB
angegeben hergestellt.
Die vier möglichen Kombinationen von Oestrogen-HRP-Konjugat und Antisera wurden für Oestrogenbestimmungen, wie im Beispiel 1D beschrieben, verwendet.
5 folgenden Tabelle angegeben;
Oestrogenmenge in ng/m\ die erforderlich ist, um die Hälfte des Oestrogen-HRPan der Bindung mit dem Antikörper zu hindern
Konjugat
E3-16,17-HRP
Oestron
Oestriol
>300
>300
>300
6
16
70
30
30
100
100
150
300
Beispiel 7
Bestimmung von Morphin
Nach dem in Beispiel IA beschriebenen Verfahren wurde Codein-6-hemisuccinat in Codein-6-succinyi-HRP umgewandelt.
und Herstellung eines Antiserums
gegen dieses Produkt
Nach dem in Beispiel IB beschriebenen Verfahren
wurde Morphin-3,6-dihemiglutarat umgewandelt in
Morphin-3,6-diglutaryl-BSA und das Antiserum gegen
dieses Produkt wie unter IC beschrieben, hergestellt
it
C. Bestimmung von Morphin
Nach dem in Beisiel ID beschriebenen Verfahren wurde die Menge Morphin in einer Probe bestimmt,
indem die flüssige und feste Phase unter Verwendung von DASP-Antikaninchenserum getrennt wurden.
10 ng/cm3 Morphin waren für eine 50%ige Hemmung
der Bindung von Codein-6-succinyl-HRP an Antiserum gegen Morphin-3,6-diglutaryl-BSA erforderlich.
Beispiel 8
Bestimmung von Testosteron
Bestimmung von Testosteron
A. Herstellung von
1 ΐΛ-OH-Testosteron-l 1-succinyl-HRP,
lla-OH-Dihydrotestosteron-11-succinyl-HRP
undl l«-OH-nortestosteron-l1-succinyl-HRP
lla-OH-Dihydrotestosteron-11-succinyl-HRP
undl l«-OH-nortestosteron-l1-succinyl-HRP
Diese Verbindungen wurden nach den für die Oestrogene in Beispiel IA beschriebenen Verfahren
hergestellt.
B. Herstellung von
Anti(1 !«-OH-testosteron-ll-succinyl-BSA)
Anti(1 !«-OH-testosteron-ll-succinyl-BSA)
Dieses Antiserum wurde wie im Beisiel IB und C für
Oestrogenantisera beschrieben hergestellt.
C. Testosteronbestimmung
Testosteron wurde nach dem für Oestrogene in Beispiel 1D beschriebenen Verfahren bestimmt.
Unter Verwendung von Testosteron-HRP waren 30 ng/cm3 Testosteron für eine 50%ige Hemmung der
Bindung des Konjugais an Antiserum erforderlich. Unter Verwendung des gleichen Antiserums und
Dihydrotestosteron-HRP waren jedoch 5 ng/cm3 Testosteron
ausreichend, um die gleiche Reaktion zu erzielen. Nortestosteron-HRP war von mittlerer Empfindlichkeit
und es waren 15 ng/cm3 Testosteron für eine 50%ige Hemmung der Bindung an die Antikörper erforderlich.
Claims (5)
1. Verfahren zum Nachweis und zur Bestimmung von Haptenen, bei dem man eine flüssige Probe mit
vorher bestimmten Mengen eines Hapten-Enzym-Konjugsts und eines spezifisch bindenden Proteins
für das Hapten und Hapten-Enzym-Konjugat zusammenbringt, das an das Protein gebundene
Enzym-Konjugat von dem nicht gebundenen Konjugat abtrennnt und die Enzymaktivität in einer der
beiden Fraktionen mißt, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Hapten-Enzym-Konjugat
verwendet, bei dem sich die Kupplung zwischen dem Enzym und Hapten unterscheidet von der Kupplung
in dem Produkt Hapten-hochmolekulare Substanz, das zur Entwicklung des spezifisch bindenden
Proteins verwendet wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Trennung zwischen dem an
Protein gebundenen und nicht gebundenen Hapten-Enzym-Konjugat durchführt, indem man die zu
analysierende Probe mit einem unlöslich gemachten bindenden Protein zusammenbringt, das für das
Protein spezifisch ist, das zur Bindung des Haptens und Hapten-Enzym-Konjugats verwendet wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß man als Hapten ein östrogenderivat verwendet.
4. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß man als Hepten Progesteron
oder Folsäure verwendet.
5. Verfahren nach Anspruch 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß man das spezifische bindende
Protein für das Hapten und Hapten-Enzym-Konjugat in unlöslich gemachter Form verwendet
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