DE2638764C3 - Verwendung eines Austauscherharzes zum Auftrennen von Proteinen - Google Patents
Verwendung eines Austauscherharzes zum Auftrennen von ProteinenInfo
- Publication number
- DE2638764C3 DE2638764C3 DE2638764A DE2638764A DE2638764C3 DE 2638764 C3 DE2638764 C3 DE 2638764C3 DE 2638764 A DE2638764 A DE 2638764A DE 2638764 A DE2638764 A DE 2638764A DE 2638764 C3 DE2638764 C3 DE 2638764C3
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- solution
- exchange resin
- proteins
- exchange
- weight
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2462—Lysozyme (3.2.1.17)
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23C—DAIRY PRODUCTS, e.g. MILK, BUTTER OR CHEESE; MILK OR CHEESE SUBSTITUTES; MAKING THEREOF
- A23C9/00—Milk preparations; Milk powder or milk powder preparations
- A23C9/14—Milk preparations; Milk powder or milk powder preparations in which the chemical composition of the milk is modified by non-chemical treatment
- A23C9/146—Milk preparations; Milk powder or milk powder preparations in which the chemical composition of the milk is modified by non-chemical treatment by ion-exchange
- A23C9/1465—Chromatographic separation of protein or lactose fraction; Adsorption of protein or lactose fraction followed by elution
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
- A23J1/001—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from waste materials, e.g. kitchen waste
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
- A23J1/08—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from eggs
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
- A23J1/16—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from waste water of starch-manufacturing plant or like wastes
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J47/00—Ion-exchange processes in general; Apparatus therefor
- B01J47/014—Ion-exchange processes in general; Apparatus therefor in which the adsorbent properties of the ion-exchanger are involved, e.g. recovery of proteins or other high-molecular compounds
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J47/00—Ion-exchange processes in general; Apparatus therefor
- B01J47/016—Modification or after-treatment of ion-exchangers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
- C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
- C07K1/16—Extraction; Separation; Purification by chromatography
- C07K1/18—Ion-exchange chromatography
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/06—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies from serum
- C07K16/065—Purification, fragmentation
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12H—PASTEURISATION, STERILISATION, PRESERVATION, PURIFICATION, CLARIFICATION OR AGEING OF ALCOHOLIC BEVERAGES; METHODS FOR ALTERING THE ALCOHOL CONTENT OF FERMENTED SOLUTIONS OR ALCOHOLIC BEVERAGES
- C12H1/00—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages
- C12H1/02—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages combined with removal of precipitate or added materials, e.g. adsorption material
- C12H1/04—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages combined with removal of precipitate or added materials, e.g. adsorption material with the aid of ion-exchange material or inert clarification material, e.g. adsorption material
- C12H1/0432—Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages combined with removal of precipitate or added materials, e.g. adsorption material with the aid of ion-exchange material or inert clarification material, e.g. adsorption material with the aid of ion-exchange material
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S526/00—Synthetic resins or natural rubbers -- part of the class 520 series
- Y10S526/936—Physiological use, e.g. pharmaceutical, veterinary, dental
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S530/00—Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
- Y10S530/827—Proteins from mammals or birds
- Y10S530/829—Blood
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S530/00—Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
- Y10S530/827—Proteins from mammals or birds
- Y10S530/832—Milk; colostrum
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S530/00—Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
- Y10S530/859—Waste, waste material, refuse or sludge, e.g. effluents, fecal matter
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
- Y10T428/00—Stock material or miscellaneous articles
- Y10T428/29—Coated or structually defined flake, particle, cell, strand, strand portion, rod, filament, macroscopic fiber or mass thereof
- Y10T428/2982—Particulate matter [e.g., sphere, flake, etc.]
- Y10T428/2991—Coated
- Y10T428/2998—Coated including synthetic resin or polymer
Description
Die Erfindung betrifft die Verwendung eines Austauscherharzes mit bestimmten Eigenschaften zum Auftrennen
von Proteinen.
Die Auftrennung von Proteinen mittels Ionenaustausch ist bereits bekannt Man verwendet hierzu
Cellulose oder Dextran mit darauf fixierten bzw. gebundenen teit Aminen oder quaternären Ammoniumgruppen
oder Säuregruppen. Diese Ionenaustauscher besitzen aber keine mechanische Festigkeit und
können infolgedessen nicht in Säulen oder Kolonnen eingesetzt werden; ihr Volumen verändert sich je nach
lonenstärke und pH-Wert des Gebrauchsmediums. Außerdem sind diese Ionenaustauscher biologisch
abbaubar und können nicht sterilisiert werden.
0*3 aus der DE-OS 1951 222 bekannte Füllmaterial
für chromatographische Säulen besteht aus oberflächlich
porösen Makroteilchen, die aus einem undurchlässigen Kern und einem porösen Überzug aufgebaut sind.
Der Kern besteht aus anorganischem Material, vorzugsweise Glas und kann 5 bis 500 μΐη weite Kapillare
aufweisen. Der poröse Überzug besteht aus aufeinanderfolgenden
Monoschichten jeweils entgegengesetzt geladener Mikroteilchen, die nacheinander aufgebracht
werden, bis die gewünschte Schichtdicke erreicht ist Die spezifische Oberfläche eines solchen Materials
beträgt etwa 0,5 mVg. Verwendet werden soll dieses Fallmaterial für die analytische Chromatographie, z. B.
zur Trennung von Nucleotidsystemen. Für die präparative
Chromatographie eignet es sich nicht, weil die Bindungen, die die Mikroteilchen des porösen Überzugs
zusammenhalten, nicht beständig genug sind für starke Beanspruchung durch große Mengen Lösung und
Elutionsmittel.
Auch die aus »Nature«, Bd. 207 (1965), Seite 402-3
bekannten Perlen aus vernetzten! Polystyrol mit Ionenaustauschergruppen an der Oberfläche werden für
die analytische Chromatographie eingesetzt Ihre Wirksamkeit wurde mit 1 bis 10 μΙ Mengen von
Lösungen von Metallverbindungen oder Farbstoffen getestet
Der Erfindung lag die Aufgabe zugrunde, für die Aüftferinüng von Proteinen ein Material zur Verfügung
zu stellen, das gute mechanische Eigenschaften aufweist, unempfindlich gegenüber lonenstärke und pH-Wert des
Gebrauchsmediums ist, biologisch nicht abgebaut wird und sterilisiert werden kann und außerdem die
Gewinnung von Proteinen in sehr reiner Form ermöglicht.
Diese Aufgabe wird durch die Verwendung des im vorstehenden Patentanspruch näher- bezeichneten
Ionenaustauscherharzes gelöst
Dieses Austauscherharz besteht aus Titanoxid, Tonerde oder Kieselsäure als poröses Trägermaterial, das mit einem Polymerisatfilm überzogen ist, welcher Ionenaustauschergruppen aufweist Die Porosität des Trägermaterials bzw. Kerns bleibt erhalten. Die Proteine können daher in das Innere der
Dieses Austauscherharz besteht aus Titanoxid, Tonerde oder Kieselsäure als poröses Trägermaterial, das mit einem Polymerisatfilm überzogen ist, welcher Ionenaustauschergruppen aufweist Die Porosität des Trägermaterials bzw. Kerns bleibt erhalten. Die Proteine können daher in das Innere der
ίο Poren hineindiffundieren und die Austauscherkapazität
ist dementsprechend sehr groß. Dieses Austauscherharz kann somit für die Trennung
bzw. präparatäve Reindarstellung von Proteinen im technischen Maßstabe eingesetzt werden. Hierauf
beruht der technische Fortschritt der erfineungsgemäßen Verwendung.
Zur Erfindungshöhe wird geltend gemacht:
Mit den aus den oben zitierten Druckschriften bekannten Austauschermaterialien ist eine präparative
Mit den aus den oben zitierten Druckschriften bekannten Austauschermaterialien ist eine präparative
Reindarstellung von Proteinen im technischen Maßstab nicht möglich. Sie unterscheiden sich von dem
erfindungsgemäß verwendeten Austauscherharz prinzipiell dadurch, daß sie keinen porösen Kern aufweisen
und infolgedessen keine Diffusion der Proteine in den Kern bzw. das Trägermaterial hinein ermöglichen. Auf
dieser unterschiedlichen stofflich-physikalischen Beschaffenheit beruht die andersartige Verwendung der
bekannten Stoffe: sie werden, wie schon erwähnt, für
analytische Trennungen von Stoffgemischen eingesetzt,
bei denen mit sehr kleinen Stoffmengen gearbeitet wird.
Bei der erfindungsgemäßen Auftrennung von Proteinen wird eine proteinhaltige Lösung mit dem Ionenaustauscherharz
in Berührung gebracht, das aus Titanoxid, Tonerde oder Kieselsäure als poröses Trägermaterial in
einer Korngröße von 4 μπι bis 5 mm mit einer
spezifischen Oberfläche von 5 bis 150 mVg, einem Porendurchmesser von 50 bis 250 nm und einem Porenvolumen
von 0,4 bis 2 ml/g und einem filmartigen Überzug in einer Menge von weniger als 15 mg/m2 aus
einem vernetzten Polymerisat, der entweder Anionenaustauschergruppen wie tertiäre Amine oder quaternäre
Ammoniumsalze oder Kationenaustauscher wie Säuregruppen enthält, besteht und eine lonenaustauscherkapazität
<2mÄq7g aufweist
Das poröse anorganische Trägermaterial Titanoxid, Tonerde und vor allem Kieselsäure weist vorzugsweise
einen mittleren Porendurchmesser von 60 bis 150 nm und eine spezifische Oberfläche von 20 bis 50 mVg auf.
Die Korngrößenverteilung richtet sich nach der in Betracht gezogenen Verwendung. Die feinsten Teilchen
werden für analytische Zwecke und die gröberen Teilchen für präparative Zwecke verwendet.
Die funktioneilen Gruppen — tertiäre Amine oder quaternäre Ammoniumsalze — lassen sich durch die
allgemeinen Formeln
-CH2-N-CH2- oder -CH2-N^)-R
wiedergeben, in denen R gfeich oder verschieden ist und
jeweils für eine Alkyigruppe oder Hydroxyalkylgruppe mit I bis 4 Kohlenstoffatomen steht und X ein
anorganisches oder organisches Anion bedeutet, z. B. (,5 das Chlorid-, Sulfat-, Nitrat-, Phosphat- oder Citratanion.
Die funktioneilen Säuregruppen leiten sich von Carbonsäuren, Sulfonsäuren oder Phosohonsäuren ah
und entsprechen den allgemeinen Formeln -COOH, -SO3H. -PO(OH)2.
Diese funktioneilen Gruppen sind Teil der Kette des
vernetzten Polymerisats oder sind an das vernetzte Polymerisat, das die gesamte Trägeroberfläche überzieht,
gebunden bzw. fixiert
Die vernetzten Polymerisate, die die Oberfläche des anorganischen Trägermaterials überziehen, sind an sich
bekannte Stoffe, die nach beliebig bekannten Polymerisationsverfahren erhalten werden, ausgehend von
Monomeren, die entweder selbst vernetzen können oder zusammen mit einem anderen Monomer, gegebenenfalls
in Anwesenheit eines Katalysators. Hierzu gehören: Epoxyverbindungen, die mit Polyaminen als
Katalysatoren vernetzen; Monomere, die durch Polykondensation ohne Katalysator mit Formaldehyd
vernetzen wie
Harnstoff, Melamin, Polyamine, Phenole; Vüiylmonomere wie Vinylpyridin,
Styrol und seine Derivate,
Acrylsäure, Methacrylsäure,
Vinylbenzoesäure, die mit polyfunktioneUen
Acrylsäure, Methacrylsäure,
Vinylbenzoesäure, die mit polyfunktioneUen
Monomeren vernetzen, beispielsweise mit Mono- oder Polyalkylenglykol-diaqrylat oder
-dimethacrylat,
Divinylbenzol,
Divinylbenzol,
Vinyltrialkoxysilan, Vinyltrihalogensilan,
bis-Methylenacrylamid,
in Gegenwart eines freie Radikale bildenden Initiators
wie organische Peroxide oder Azonitrile oder in Gegenwart von UV-Strahlen.
Das Trägermaterial wird mit einer Lösung des Monomeren oder Monomerengemisches sowie gegebenenfalls
des Katalysators getränkt, wodurch eine gute Verteilung der Monomeren auf der gesamten Oberfläche
des anorganischen Trägermaterial erreicht wird. Das Lösungsmittel wird dann verdampft und die
Monomeren in bekannter Weise polymerisiert Als Lösungsmittel kommen alle Lösungsmittel für die
Monomeren und den Katalysator in Frage, deren Siedepunkt vorzugsweise so niedrig wie möglich ist um
das anschließende Verdampfen zu erleichtern, beispielsweise Methylenchlorid, Diäthyläther, Benzol, Aceton
und Äthylacetat
Ein besonders geeignetes Verfahren zur Herstellung von Kationenaustauscherharzen durch Überziehen
eines anorganischen Trägermaterials mit Epoxyverbindungen wird in dem älteren Vorschlag gemäß DE-OS
25 38 358 beschrieben.
Enthält das vernetzte Polymerisat auf der Oberfläche des anorganischen Trägermaterials keine wie oben
definierten funktionellen Gruppen in seiner Kette, so muß es auf beliebige, an sich bekannte Weise,
modifiziert werden.
Die Menge an eingesetztem Monomeren oder Monomergemisch wird so bemessen, daß das die
Oberfläche des Trägers überziehende vernetzte Polymerisat mit funktionellen Gruppen weniger als
15 mg/m2, vorzugsweise 1 bis 8 mg/mJ, ausmacht.
Das so erhaltene Austauscherharz besitzt eine Austauschkapazität <2mÄq7g, vorzugsweise im Bereich
von 03 bis 1,2 mAqJg.
Es läßt sich auf alle in wäßrigem Medium lösliche Proteine unabhängig von ihrem isoelektrischen Punkt
anwenden. Zu diesen Proteinen gehören Polypeptide und Enzyme, beispielsweise Albumin, Lactalbumine,
Ovalbumin, Serumalbumin, Hämoglobin, «-, ß- und
^-Globuline, Lactoglobuline, Fibrinogen, Urease, Trypsin, Lysozym, Pepsin, Proteasen und Cytochrom.
Die erfindungsgemäße Verwendung ermöglicht eine sehr leichte Abtrennung der Proteine aus ihren
Lösungen wie Milchserum, Bier, Blut, Organextrakten und allen Industrieabwässern, beispielsweise den Abwässern
aus Schlachthöfen, Lebensmittelfabriken und Stärkefabriken; sie stellt somit ein ausgezeichnetes
Mittel zur Bekämpfung der Umweltverschmutzung dar. Die zu behandelnde Lösung wird bei einer Temperatur,
Ionenstärke und einem pH-Wert, die mit dem Protein bzw. den Proteinen verträglich sind, mit dem
Austauscherharz in Berührung gebracht Man kann auch nacheinander ein oder mehrere Anionenaustauscherharze
und/oder Kationenaustauscherharze einsetzen. Dann werden die in der Lösung enthaltenen Proteine
selektiv auf jedem Harz fixiert
Wird das angestrebte Protein aus einer Lösung auf dem Austauscherharz fixiert, so wird anschließend mit
einer Lösung eluiert, deren pH-Wert und/oder Ionenstärke
sich von der zum Fixieren eingesetzten Lösung unterscheiden. Dadurch wird das Protein nicht nur aus
der Lösung abgetrennt sondern auch gereinigt und konzentriert Beispielsweise lassen sich auf diese Weise
Albumin, Pepsin und die Proteine des Milchserums mit einem Kationenaustauscherharz und Lysosym mit
jo einem Anionenaustauscherharz abtrennen und konzen-. trieren.
Verbleibt das gesuchte oder angestrebte Protein in der erfindungsgemäß behandelten proteinhaltigen Lösung,
werden also die anderen Proteine aus dem Gemisch fixiert, so wird die Trennung des gesuchten
Proteins von den anderen Proteinen, d.h. seine Reinigung, bewirkt Elution der fixierten Proteine führt
zu einer selektiven Trennung des Proteins bzw. der Proteine und zu ihrer Konzentrierung. Dieä txifft u. a. für
y-Globulin mit einem ICationenaustaascherAarz zu.
Werden mehrere gesuchte oder angestrebte Proteine gleichheitig auf einem Austauscherharz fixiert so
bewirkt die Elution bei von der Fixierungslösung verschiedenen pH· Wert und/oder verschiedener Ionenstärke
eine Abtrennung der Proteine aus der Lösung und ihre Konzentrierung. Wird mit Lösungen mit
steigendem pH-Wert und/oder steigender Ionenstärke eluiert, so wird zusättlich zu der selektiven Trennung
die Reinigung und Konzentrierung (der Proteine) bewirkt Dies trifft vor allem für das Serum des
Menschen zu.
Sollen die Proteine entfernt werden, so werden sie aus ihrer Lösung auf einem Austauscherharz fixiert Man
erhält proteinfreie, d.h. gerinigte, Lösungen. Das Austauscherharz kann durch Eluieren der gebundenen
Proteine regeneriert und darauf wieder eingesetzt werden. Anwendungsgebiete hierfür sind vor allem die
Klärung von Bier sowie die Behandlung von Hämoglobin enthaltenden Lösungen mit Anionenaustauscherharzen.
Die Trennung kann mit identischen Ergebnissen diskontinuierlich oder kontinuierlich durchgeführt werden.
Bei kontinuierlicher Arbeitsweise ermöglichen die Austauscherharze in leichtes Füllen der Säule, einen
f» großen Durchsatz und ein leichtes Eluieren.
Die erzielten Ergebnisse sind praktisch unabhängig von der Konzentration der behandelten Lösung, hängen
aber ab von der Beschaffenheit der AustauscheretniDoe
des Hartes, vom pH-Wert, der lonenstärke und der
Aufgabemenge bzw. des Durchsatzes sowohl der zu behandelnden Lösungen als auch des Eluens,
Die erfindungsgemäße Verwendung erstreckt sich auf Gebiete der Lebensmittelindustrie, vor allem der
Industrie für diätetische Lebensmittel, der pharmazeutischen Industrie und der tierverarbeitenden Industrie.
Die nachfolgenden Beispiele dienen zur näheren Erläuterung der Erfindung. Verwendet wurden dabei die
folgendermaßen hergestellten Austauscherharze:
A) 100 g Kieselsäure (Korngröße 100-200 μπι,
spezifische Oberfläche 24 mVg, mittlerer Porendurchmesser 140 nm und Porenvolumen 1 ml/g) wurden unter
vermindertem Druck 5 h bei 1500C getrocknet und in eine Lösung aus 250 ml Methylenchlorid, 60 ml zweifach
destilliertem Styrol, 20 ml Vinyltriäthoxysilan und 0,5 g
Azobis-isobutyronitril gegeben. Nach Abdampfen des Methylenchlorids bei Raumtemperatur wurde 6 h auf
120°C unter einem Druck von 3 bar erhitzt, um die
Vernetzung zu bewirken. Dann wurde die Kieselsäure in 309 m! XyIo! suspendiert, 2 h zum Sieden erhitzt,
abfiltriert, mit Aceton gewaschen rad schließlich
getrocknet Die Analyse ergab einen Kohlenstoffgehalt von 4 Gew.-%, bezogen auf die beschichtete Kieselsäure.
50 g davon wurden in 180 g Chlormethylather suspendiert, der 6 g Zinn(IV)-chIorid enthielt, und unter
Ausschluß von Wasser 4 h unter Rückfluß erhitzt Nach dem Abkühlen, Abschleudern, Waschen mit HCl-haltigem
Dioxan-Wasser 50 :50, Wasser und Trocknen betrug der Kohlenstoffgehalt 4,1 % und der Chlorgehalt
Das erhaltene Produkt wurde in 150 ml wäßriger 30%iger Trimethylaminlösung suspendiert und bei
Raumtemperatur 8 Tage stehengelassen. Nach dem Abschleudern und Waschen erhielt man ein Austau- r>
scherharz mit folgenden funktionellen Gruppen:
CHj
-CH2—N®—CH3CI-CH3
4,8Gew.-%
2Gew.-%
0,9Gew.-%
3,3 mg/m2
O^mAq
2Gew.-%
0,9Gew.-%
3,3 mg/m2
O^mAq
und Merkmalen:
Kohlenstoffgehalt
Chlorgehalt
Stickstoffgehalt
Fixiertes Polymerisat
Austauscherkapazität
Chlorgehalt
Stickstoffgehalt
Fixiertes Polymerisat
Austauscherkapazität
B) In 150 ml Methylenchlorid, da» 6,5 g N,N-bis(2,3-Epoxvoropyi)-äthyhunin
und 3 g Triäthylentetramin gelöst enthielt, wurden 50 g Kieselsäure (Korngröße 40
bis 100 μπι, spezifische Oberfläche 37 mVg, Porendurchmesser
110 ntti, Porenvolumen 1,05 ml/g) gegeben. Das
Methylenchlorid wurde bei Raumtemperatur verjagt, die imprägnierte Kieselsäure 60 h auf 6O0C erhitzt und
dann mit kochendem Wasser und mit Aceton gewaschen.
Das erhaltene Austauscherharz bestand aus Kieselsäure, überzogen mit einem vernetzten Polymerisat mit
funktionellen Gruppen
-CH2-N-CH2-
40
45
C2H5
fixiertes Polymerisat
8,8%
2,4%
2,4%
33 mg/m2
1 mÄq./g
1 mÄq./g
C) Es wurde wie unter B) verfahren, jedoch mit einer Kieselsäure mit Korngröße 100 bis 200 μπι und mit 6,5 g
N,N-bis(2r3-EpoxypropyI)-butyIamin anstelle des 64 g
N,N-bis(2^-Epoxypropyl)-äthylamins.
Das fertige Austauscherharz bestand aus Kieselsäure, überzogen mit einem vernetzten Polymerisat, das
funktioneile Gruppen
-CH2-N-CH2-QH9
aufwies; das Austauscherharz hatte folgende Merkmale:
fixiertes Polymerisat
S,2Gew.-
3,2 mg/m2
1,1 mAqyg
1,1 mAqyg
D) 100 g Kieselsäure (Korngröße 100 bis 200 μπι,
spezifische Oberfläche 25 m2/g, mittlerer Porendurchmesser
140 nm und Porenvolumen 1,1 ml/g) wurden mit einer Lösung aus 200 ml Methyleschlorid, 24 g Acrylsäure,
6 g Diäthylenglykol-di-methacrylat und 0,4 g
Benzoylperoxid imprägniert Das Methylenchlorid wurde bei Raumtemperatur und Atmosphärendruck bis zur
Gewichtskonstanz verjagt; darauf wurde die imprägnierte Kieselsäure 6 h auf 800C erhitzt um die
Polymerisation zu bewirken und dann in 300 ml Wasser suspendiert und 6 h gekocht Nach dem Abfiltrieren
wurde die Kieselsäure mit Aceton gewaschen und unter vermindertem Druck bei 80° C getrocknet
Man erhielt ein Austauscherharz mit funktionellen Gruppen — COOH, das folgende Merkmale aufwies:
gebundenes Polymerisat
Austauscherkapazität
Austauscherkapazität
10,55 Gew.-%
12. rng/m2
1,05 mÄq/g
12. rng/m2
1,05 mÄq/g
mit folgenden Kennzeichen:
E) 100 g Kieselsäure (Korngröße 100 bis 200 μπι,
spezifische Oberfläche 37 m2/g, mittlerer Porendurchmesser
120 nm, Porenvolumen 0,95 ml/g) wurden mit einer Lösung aus 150 ml Methylenchlorid, 60 ml
so destilliertem Styrol, 20 ml Vinyltriäthoxysilan und 0,5 g
Azobis-isobutyi onitril imprägniert Du Methylenchlorid
wurde bei Raumtemperatur und Atmosphäreniiruck bis zur Gewichtskonstanz verjagt und die imprägnierte
Kieselsäure 6 h auf 120° C erhitzt Dann wurde die
Kieselsäure in 300 ml Xylol 6 h zum Sieden erhitzt, abgeschleudert mit Aceton gewaschen und bei 80° C
getrocknet
50 g dieser modifizierten Kiselsäure suspendiert in 500 ml Chloroform wurden tropfenweise mit 50 g
entwickelte sich Chlorwasserstoff. Nach beendeter
erhitzt.
6; gewaschen, darauf mit Aceton gewaschen und im
Vakuum bei 800C getrocknet; man erhielt ein lonenaustauscherharz mit funktionellen Gruppen
—SOjH und folzenden Merkmalen:
Kohlenstoff
Schwefel
gebundenes Polymerisat
4 Gew.-%
l,4Gew.-%
2,8 mg/mJ
0,43 mÄqJg
l,4Gew.-%
2,8 mg/mJ
0,43 mÄqJg
Beispiel I
Behandlung einer Albuminlösung
Behandlung einer Albuminlösung
10 g Austauscherharz A wurden in eine 1 cm weite Säule gegeben, komprimiert gehalten und mit einer
0,01-m Phosphatpufferlösung auf pH-Wert 6.5 äquilibriert.
Darauf ließ man eine I gew.-% ige Albuminlösung in der gleichen Pufferlösung in einer Menge von 180 ml/h
bis zur Sättigung der Säule perkolieren; dies entsprach etwa 200 ml Lösung. Das Harz wurde dann mit 100 mi
der gleichen Pufferlösung gewaschen.
Das fixierte Albumin wurde mit einer 1-m NaCI-Lösung
im gleichen Puffer eluierf; das F.lnens wurde· mit
einer Geschwindigkeit von 180 ml/h aufgegeben. 45 ml Lösung wurden benötigt, um das Albumin in Form einer
33gew.-%igen Lösung zurückzugewinnen.
Hieraus ergab sich, daß der Ionenaustauscher eine Kapazität bezüglich A'.bumin von 150 mg/g hatte und
daß mit seiner Hilfe die Albuminlösung konzentriert werden konnte.
Der Arbeitsgang wurde 30maI wiederholt, ohne Anzeichen von Quellen oder Altern des Austauscherharzes.
Beispiel I wurde mit einer 0,2gew.-%igen Albuminlösung
wiederholt.
Es wurden die gleichen Ergebnisse erzielt, d. h. man erhielt die gleiche Konzentration an Albumin unabhängig
von der Konzentration der Ausgangslösung, die behandelt wurde.
Beispiel 1 wurde wiederholt, als Eluens jedoch eine 0,05-m Citratpufferlftsung mit pH-Wert 6,5 verwendet
Man erhielt 59 ml 2,5gew.-%ige Albuminlösung.
Dieses Bcis^ic! icigi, üaB uie Beschaffenheit der ais
Eluens verwendeten Pufferlösung die Konzentration des Eluats beeinflußt
Eine Albuminlösung wurde in gleicher Weise wie in Beispiel 1 behandelt, jedoch unter Einsatz von 41 g
Austauscherharz A in einer 1 cm weiten Kolonne und mit einer Aufgabegeschwindigkeit des Eluens von
80 ml/h.
Die Albuminkonzentration in der erhaltenen Lösung (Eluat) betrug 7 Gew.-%. Dies zeigt, daß die
Konzentration im Eluat durch Erhöhen der Nutzhöhe in der Säule und durch Verringern der
Elutionsgeschwindigkeit erhöht wird.
Beispiel 5
Abtrennung von y-Gobulin
Abtrennung von y-Gobulin
10 g Austauscherharz B wurden in eine 1 cm weite Säule gegeben, komprimiert gehalten und mit 0,1 n-Salzsäure
und anschließend mit 0,02-m Phosphatpufferlösung von pH-Wert 65 äquilibriert
Anschließend HeB man 20 ml einer lgew.-%igen
Lösung von von Fettstoffen befreitem und Iyophilisiertem
Humanserum in der gleichen Phosphatpufferlösung mit einer Geschwindigkeit von 100 ml/h perkolieren
Dann wurde das Austauscherharz mit 50 ml der gleichen Phosphatpufferlösung gewaschen.
Die auslaufende Lösung enthielt das in der Ausgangs-ι
lösung enthaltene y-Globulin elektrophoretisch rein.
Die anderen in der Ausgangslösung enthaltenen Proteine; «-Globuline, ^-Globuline und Albumin, waren
an das Austauscherharz gebunden, sie wurden mit einer 3-m NaCI-Lösung im gleichen Phosphatpuffer eluiert.
ίο Wurden zum Eluieren Pufferlösungen mit zunehmender Ionenstärke eingesetzt durch Erhöhen der NaCl-Konzentration, so erhielt man an «-Globulinen, /7-Globulinen und Albumin angereicherte Lösungen.
ίο Wurden zum Eluieren Pufferlösungen mit zunehmender Ionenstärke eingesetzt durch Erhöhen der NaCl-Konzentration, so erhielt man an «-Globulinen, /7-Globulinen und Albumin angereicherte Lösungen.
Beispiel 6
Extraktion von Proteinen
Extraktion von Proteinen
IO g AnUaiiseherharz C. wurden in eine I cm weite
Säule gegeben, darin komprimiert und mit nacheinander 0,1 η-Salzsäure und 0,01-m Phosphatpufferlösung von
pH-Wert 7,5 äquilibriert.
30 ml einer 1gew.-%igen Lösung aus ultrafiltriertem
Milchserumpulver enthaltend 75 Gew.% Proteine in r> der gleichen Phosphatpufferlösung wurde mit einer
Geschwindigkeit von 80 ml/h perkoliert. Anschließend wurde das Austauscherharz mit 100 ml der gleichen
Phosprntpufferlösung gewaschen.
Die auslaufenden Lösungen enthielten die in der in Ausgangslösung vorhandenen Fettstoffe und die Lactose.
Die Proteine, Lactalbumine, Lsctoglobuline, Serumalbumin
und ein kleiner Teil der Immunoglobuline aus der Ausgangslösung waren an das Austauscherharz gebun-J-,
den und wurden mit 0,5-m Mac-Ilvaine-Pufferlösung
von pH-Wert 4 eluiert und gereinigt.
Beispiel 7
jo Extraktion von Proteinen
jo Extraktion von Proteinen
20 g Austauscherharz A, jedoch mit einer Korngrö-UCIiVCi
leitung von 2GC bis jvG μιη, wurden κι eine 2,5 cm
weite Säule gegeben und komprimiert bzw. festgepackt gehalten. Das Austauscherharz wurde mit nacheinander
0,1 η-Salzsäure und 0,01-m »Tris-HCI« Pufferlösung von
pH-Wert 7 äquilibriert
600 ml einer Lösung aus 300 ml gleiche Pufferlösung und 300 ml von Fettstoffen befreites Milchserum mit 0,5
so Gew.-% löslichen Proteinen wurde mit einer Geschwindigkeit
von 300 ml/h perkoliert und das Austai'-cherharz
anschließend mit 100 ml der gleichen Pufferlösung
gewaschen.
Die aus der Sttule ablaufenden Lösungen enthielten die in der Ausgangslösung vorhandene Lactose. Die Proteine, Lactalbumine, Lactoglobuline, Senimalbumin und ein kleiner Teil der Immunoglobuline aus der Ausgangslösung war an das Austauscherharz gebunden und wurden mit einer 0,1 -m Gtrat-Natronlauge Pufferlösung von pH-Wert 7 eluiert Das Eluat enthielt die Gesamtmenge der vorher gebundenen Proteine in einer Konzentration von 4 Gew.-%.
Die aus der Sttule ablaufenden Lösungen enthielten die in der Ausgangslösung vorhandene Lactose. Die Proteine, Lactalbumine, Lactoglobuline, Senimalbumin und ein kleiner Teil der Immunoglobuline aus der Ausgangslösung war an das Austauscherharz gebunden und wurden mit einer 0,1 -m Gtrat-Natronlauge Pufferlösung von pH-Wert 7 eluiert Das Eluat enthielt die Gesamtmenge der vorher gebundenen Proteine in einer Konzentration von 4 Gew.-%.
Mit Hilfe dieses Arbeitsganges wurde ein Gemisch aus reinen Proteinen, frei von Lactose, als gegenüber
der Ausgangslösung wesentlich starker konzentrierte Lösung erhalten.
Nach 30 aufeinanderfolgenden Arbeitsgängen wurde keinerlei Altern des Austauscherharzes beobachtet
Beispiel 8
Behandlung einer Pepsinlösung
Behandlung einer Pepsinlösung
3 g Austauscherharz A wurden in eine 1 cm weite ί
Säule gegeben und mit 100 ml destilliertem Wasser gewaschen. Darauf wurden 150 ml einer Lösung aus
rohem Pepsin mit 20 Pepsineinheiten/ml in einer Geschwindigkeit von 100 ml/h perkoliert und das
Austauscherharz anschließend mit 20 ml destilliertem in
Wasser gewaschen.
Die aus der Kolonne ablaufende Lösung und das Waschwasser zeigten überhaupt keine Aktivität; das
gesamte Pepsin war an das Austauscherharz gebunden. Die Begleitstoffe blieben in Lösung, wie sich durch r,
Messungen am Feststoffextrakt zeigte.
Das gebundene Pepsin wurde dann durch Perkolieren einer 1-in NaCI-Lösung mit einer Geschwindigkeit von
100 ml/h eluiert.
16 ml Lösung wurden benötigt, um das Pepsin als >n
Lösung mit 170 Pepsineinheiten/ml zurückzugewinnen. Dies zeigt die starke Konzentrierung gegenüber der
Ausgangslösung.
Das Austauscherharz wurde nach Waschen mit 50 ml destilliertem Wasser erneut einge^tzt Nach 10
aufeinanderfolgenden Arbeitsgängen wurde keinerlei Altern festgestellt.
JO
Beispiel 9
Behandlung einer Lysozymlösung
Behandlung einer Lysozymlösung
10 g Austauscherharz D wurden in eine 1 cm weite Säule gegeben und komprimiert gehalten; darauf wurde
das Austauscherharz in die Ammoniumform (NH4 +)
gebracht durch Perkolieren von 21 wäßriger 0,5-m «
Ammoniumacetatlösung, gepuffert auf pH-Wert 8,2.
Das Harz wurde dann mit 100 ml Tris-maleinsäurepuffer
0,02-m äquilibriert
Darauf ließ man eine lgew.-%ige Lösung aus Lysozym in der gleichen Pufferlösung mit einer
Geschwindigkeit von 180 ml/h bis zur Sättigung der Säule perkolieren; dies entsprach etwa 200 ml Lösung.
Hue 14or»» «i
repuffer, pH 8,2, gewaschen.
Das gebundene Lysozym wurde darauf durch Perkolieren einer 1-m NaCI-Lösung in der gleichen
Pufferlösung mit einer Geschwindigkeit von 180 ml/h eluiert 50 ml Lösung wurden benötigt, um das Lysozym
in Form einer 2,5gew.-%igen Lösung zurückzugewinnen.
Hieraus ergab sich, daß der Austauscher eine Kapazität für Lysozym von 125 mg/g besaß und es
ermöglichte, die Lysozymlösung zu konzentrieren.
Beispiel 10
Extraktion von Hämoglobin
Extraktion von Hämoglobin
55
10 g Austauscherharz E wurden in eine 1 cm weite Säule gegeben und mit 0,02-m Phosphatpufferlösung auf
pH 6,5 äquilibriert Darauf wurden 500 m! einer eo
0,2gew.-%igen Hämoglobinlösung in dem gleichen Puffer mit einer Geschwindigkeit von 100 ml/h perkoliert.
Das Hämoglobin wurde an dem Austauscherharz adsorbiert bzw. fixiert. Die ablaufende farblose Lösung
enthielt kein Hämoglobin mehr und war somit gereinigt. Das adsorbierte Hämoglobin wurde mit einer 0,5-m
Ammoniumcarbonatlösung eluiert und die Säule anschließend mit 300 ml 0,1 η-Natronlauge und mit 50 ml
1 η-Salzsäure gewaschen, bevor sie erneut eingesetzt wurde.
Beispiel Il
Behandlung von Milchserum
Behandlung von Milchserum
In eine erste 2,5 cm weite Säule (Nr. 1) wurden 20 g Austauscherharz A und in eine zweite 2,5 cm weite
Säule (Nr. 2) 10 g Austauscherharz D gegeben. Die
beiden Säulen wurden in Reihe (hintereinander) angeordnet und die Austauscherharze mit 500 ml
Wasser gewaschen.
500 ml Milchserum, eingestellt auf pH 7,5 durch Zugabe von 0,1 η-Natronlauge, wurden filtriert, um die
Feststoffe zu entfernen und dann durch Säule Nr. 1 und Säule Nr. 2 mit einer Geschwindigkeit von 300 ml/h
perkoliert Der Test der Proteinfällung mit Trichloressigsäure zeigte, daß das aus der zweiten Säule
ablaufende Milchserum kein Protein mehr enthielt. Die Austauscherharze in den beiden Säulen wurden mit
100 ml Wasser gewaschen.
Die in der Ausgangslösung vorhandenen Proteine: Lactalbumine, Lactoglobuline, Serumalbumin und ein
sehr kleiner Teil der Immunoglobuline wurden vom Austauscherharz der Säule Nr. 1 Fixiert und dann wie in
Beispiel 7 beschrieben eluiert
Auf dem Austauscherharz der Säule Nr. 2 wurden im wesentlichen die vom Austauscherharz der Säule Nr. 1
nicht zurückgehaltenen Immunoglobuline fixiert Sie wurden mit einer 1-m Ammoniumcarbonatlösung
eluiert Das Eluat enthielt die Immunoglobuline, die etwa 16 Gew.-% der gesamten in der Ausgangslösung
vorhandenen Proteine ausmachten, in einer Konzentration von etwa 3 Gew.-%.
folgenden Arbeitsgängen wurde keinerlei Altern der Austauscherharze beobachtet
Beispiel 12
Extraktion der Proteine aus Bier
Extraktion der Proteine aus Bier
60 g Austauscherharz D wurden in eine 2,5 cm weite Säule gegeben und mit 250 ml Wasser gewaschen.
3 J nicht geklärtes Bier wurden mit einer Geschwindigkeit von 100 ml/h perkoliert Das aus der Säule
ablaufende Bier ergab keine Fällung mehr bei Zugabe von Picrinsäure und hatte alle Merkmale eines geklärten
Biers.
Die am Austauscherharz fixierten Produkte waren im wesentlichen Proteine und wurden mit 400 ml
0,1 η-Salzsäure eluiert
Vor erneutem Gebrauch wurde das Austauscherharz mit 250 ml Wasser gewaschen.
Claims (1)
- Patentanspruch:Verwendung eines Austauscherharzes, das aus Titanoxid, Tonerde oder Kieselsäure als poröses Trägermaterial mit Korngröße 4 μΐη bis 5 mm, spezifischer Oberfläche 5 bis 150 m2/g, Porendurchmesser 50 bis 250 um, Porenvolumen 0,4 bis 2 ml/g und einem Überzug in einer Menge von weniger als 15 mg/m2 aus vernetzten! Polymerisat mit Anionenaustauschergruppen wie tertiäre Amino- oder quaternäre Ammoniumsalzgruppen oder mit Säuregruppen als Kationenaustauschergruppen besteht und eine Austauscherkapazität < 2 mÄqVg aufweist, zum Auftrennen von Proteinen.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR7526530A FR2321932A1 (fr) | 1975-08-28 | 1975-08-28 | Procede de separation de proteines par echange d'ions |
FR7622985A FR2359634A2 (fr) | 1976-07-28 | 1976-07-28 | Procede de separation de proteines par echange d'ions |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2638764A1 DE2638764A1 (de) | 1977-03-03 |
DE2638764B2 DE2638764B2 (de) | 1978-09-14 |
DE2638764C3 true DE2638764C3 (de) | 1981-02-12 |
Family
ID=26219047
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2638764A Expired DE2638764C3 (de) | 1975-08-28 | 1976-08-27 | Verwendung eines Austauscherharzes zum Auftrennen von Proteinen |
Country Status (21)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4100149A (de) |
JP (1) | JPS5257200A (de) |
AR (1) | AR209193A1 (de) |
AU (1) | AU500134B2 (de) |
BR (1) | BR7605661A (de) |
CA (1) | CA1069843A (de) |
CH (1) | CH602780A5 (de) |
DE (1) | DE2638764C3 (de) |
DK (1) | DK156577C (de) |
ES (1) | ES451047A1 (de) |
GB (1) | GB1513195A (de) |
IE (1) | IE43536B1 (de) |
IT (1) | IT1066221B (de) |
MX (1) | MX4333E (de) |
NL (1) | NL178294C (de) |
NO (1) | NO145508C (de) |
NZ (1) | NZ181884A (de) |
RO (1) | RO78229A (de) |
SE (1) | SE426911B (de) |
SU (1) | SU688124A3 (de) |
YU (1) | YU209676A (de) |
Families Citing this family (60)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4259223A (en) * | 1976-03-29 | 1981-03-31 | California Institute Of Technology | Cross-linked polyvinyl pyridine coated glass particle catalyst support and aqueous composition or polyvinyl pyridine adducted microspheres |
US4326008A (en) * | 1976-08-27 | 1982-04-20 | California Institute Of Technology | Protein specific fluorescent microspheres for labelling a protein |
US4229342A (en) * | 1977-05-18 | 1980-10-21 | Rhone-Poulenc Industries | Process for extracting proteins from milk using silica and anion exchange resins |
GB1573684A (en) * | 1977-07-04 | 1980-08-28 | Trinchera C | Process for the production of lysozyme |
US4171204A (en) * | 1978-09-01 | 1979-10-16 | Abbott Laboratories | Precipitation of protein |
FR2439791A1 (fr) * | 1978-10-27 | 1980-05-23 | Rhone Poulenc Ind | Procede de purification de proteines vegetales |
JPS5598117A (en) * | 1979-01-17 | 1980-07-25 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | Purification of gamma-globulin derivative |
US4305870A (en) * | 1979-01-31 | 1981-12-15 | Immuno Aktiengesellschaft Fur Chemisch-Medizinische Produkte | Intravenous plasma derivatives and their production |
FR2452881A1 (fr) * | 1979-04-04 | 1980-10-31 | Bel Fromageries | Procede de preparation de proteines animales ou vegetales, particulierement de lactoproteines, et nouveaux produits ainsi obtenus |
IT1165079B (it) * | 1979-05-29 | 1987-04-22 | Anic Spa | Metodo di coagulazione del latte |
FR2470800A1 (fr) * | 1979-11-29 | 1981-06-12 | Rhone Poulenc Ind | Procede d'epuration des jus de betteraves au moyen d'echangeurs d'ions |
DE3009037A1 (de) * | 1980-03-08 | 1981-09-24 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur direkten bestimmung des lipidgehaltes der (beta) -lipoproteine des blutes |
FR2478434B1 (de) * | 1980-03-21 | 1984-06-08 | Rhone Poulenc Spec Chim | |
FR2490676B1 (fr) * | 1980-09-19 | 1985-07-19 | Rhone Poulenc Spec Chim | Procede d'epuration des jus de canne a sucre |
JPS57135356A (en) * | 1981-02-14 | 1982-08-20 | Tadao Hoshino | Analysis of hemoglobin |
FR2520235A1 (fr) * | 1982-01-27 | 1983-07-29 | Bel Fromageries | Procede de separation d'immunoglobulines a partir de colostrum |
CA1221307A (en) † | 1982-12-02 | 1987-05-05 | Nobutaka Tani | Adsorbent and process for preparing the same |
FR2548670B1 (fr) * | 1983-07-07 | 1985-10-25 | Merieux Inst | Procede de preparation des principales proteines du sang hemolyse sous forme non denaturee |
DE3480177D1 (en) * | 1983-11-25 | 1989-11-23 | Asahi Chemical Ind | A porous adsorbent for adsorbing low density lipoproteins |
US4724207A (en) * | 1984-02-02 | 1988-02-09 | Cuno Incorporated | Modified siliceous chromatographic supports |
HU191563B (en) * | 1984-10-26 | 1987-03-30 | Reanal Finomvegyszergyar | Process for preparing lysozyme enzyme |
FR2575666B1 (fr) * | 1985-01-04 | 1989-08-18 | Centre Nat Rech Scient | Procede et dispositif pour la separation chromatographique de macromolecules biologiques |
US4816252A (en) * | 1985-04-15 | 1989-03-28 | Protein Technology, Inc. | Product and process for transferring passive immunity to newborn domestic animals using ultrafiltered whey containing immunoglobulins |
US4834974A (en) * | 1986-01-13 | 1989-05-30 | Protein Technologies, Inc. | Immunologically active whey fraction and recovery process |
NZ216094A (en) * | 1985-05-15 | 1989-06-28 | Commw Serum Lab Commission | Method for purification of an immunoglobulin |
US4697003A (en) * | 1985-11-01 | 1987-09-29 | Miles Laboratories, Inc. | Method of preparing alpha-1-proteinase inhibitor |
US5242823A (en) * | 1986-03-07 | 1993-09-07 | International Genetic Engineering, Inc. | Cloning of the 38kd Mycoplasma hyorhinis regression-associated antigen |
JPH0662436B2 (ja) * | 1986-05-19 | 1994-08-17 | 株式会社ミドリ十字 | 静注用免疫グロブリン製剤の製造方法 |
IE61701B1 (en) * | 1986-07-17 | 1994-11-30 | Morinaga Milk Industry Co Ltd | Process for producing bovine lactoferrin in high purity |
FR2616628B1 (fr) * | 1987-06-19 | 1989-09-29 | Entremont Sa | Procede pour extraire des proteines du lactoserum par adsorption et elution |
CN1031394A (zh) * | 1987-07-08 | 1989-03-01 | 武田药品工业株式会社 | 酸性蛋白酶的纯化方法 |
EP0308265A3 (de) * | 1987-09-16 | 1991-02-06 | International Genetic Engineering, Inc. (Ingene) | Verfahren und Zusammensetzungen betreffend regressionszugehöriger Antigene |
US5451662A (en) * | 1987-10-23 | 1995-09-19 | Schering Corporation | Method of purifying protein |
US5216127A (en) * | 1987-11-20 | 1993-06-01 | Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha | Adsorbent for serum amyloid protein |
JP2732252B2 (ja) * | 1987-12-07 | 1998-03-25 | 株式会社ジェイ・エム・エス | ヘモグロビン選択吸着剤 |
ATE115982T1 (de) * | 1988-11-23 | 1995-01-15 | Cytec Tech Corp | Poröse polymerperlen und verfahren. |
JPH07119767B2 (ja) * | 1989-03-07 | 1995-12-20 | 積水化学工業株式会社 | 梅毒検査用試薬及びその製造法 |
US5418284A (en) * | 1989-05-08 | 1995-05-23 | Cytec Technology Corp. | Surface-modified polyacrylonitrile beads |
SE8902315D0 (sv) * | 1989-06-27 | 1989-06-27 | Pharmacia Ab | Anjonbytare |
EP0416748B1 (de) * | 1989-08-07 | 1994-03-30 | J.T. Baker Inc. | Feste Träger aus quaternisierter PEI-Kieselsäure für die Chromatographie |
DE3926539A1 (de) * | 1989-08-11 | 1991-02-14 | Braun Melsungen Ag | Verwendung von tentakel-kationenaustauschern zur selektiven eliminierung von low-density-lipoproteinen (ldl), fibrinogen und/oder harnstoff aus fluessigkeiten |
US5439882A (en) * | 1989-12-29 | 1995-08-08 | Texas Tech University Health Sciences Center | Blood substitute |
US5510439A (en) * | 1993-11-04 | 1996-04-23 | Nalco Chemical Company | Vinyl alkoxysilane copolymer polyelectrolytes for pitch deposit control |
SE9601789D0 (sv) * | 1996-05-10 | 1996-05-10 | Pharmacia Biotech Ab | Beverage stabilization |
US6187374B1 (en) | 1998-09-02 | 2001-02-13 | Xim Products, Inc. | Coatings with increased adhesion |
SE9904197D0 (sv) * | 1999-11-22 | 1999-11-22 | Amersham Pharm Biotech Ab | A method for anion exchange adsorption on matrices carrying mixed mode ligands |
JP4433617B2 (ja) | 2001-01-24 | 2010-03-17 | 東ソー株式会社 | アニオン交換体、その製造方法及びそれを用いた用途 |
EP1226869B1 (de) | 2001-01-29 | 2010-08-11 | Tosoh Corporation | Kationenaustauscher, Verfahren zu dessen Herstellung und dessen Verwendung |
US6833238B2 (en) * | 2002-01-04 | 2004-12-21 | Applera Corporation | Petal-array support for use with microplates |
US20040016702A1 (en) * | 2002-07-26 | 2004-01-29 | Applera Corporation | Device and method for purification of nucleic acids |
US20050181378A1 (en) * | 2004-02-18 | 2005-08-18 | Applera Corporation | Polyelectrolyte-coated size-exclusion ion-exchange particles |
US20050196856A1 (en) * | 2004-02-18 | 2005-09-08 | Applera Corporation | Polyelectrolyte-coated size-exclusion ion-exchange particles |
US20060160122A1 (en) * | 2004-02-18 | 2006-07-20 | Applera Corporation | Polyelectrolyte-coated size-exclusion ion-exchange particles |
EP1831344B1 (de) * | 2004-10-21 | 2011-12-28 | Diageo North America, Inc | Verfahren zur herstellung von gereinigten getränkeprodukten |
JP2011511062A (ja) * | 2008-02-06 | 2011-04-07 | バイオコン リミティド | ペプチドの精製方法 |
RU2015114330A (ru) | 2012-09-17 | 2016-11-10 | У.Р. Грейс Энд Ко.-Конн. | Хроматографические среды и устройства |
ES2929099T3 (es) | 2014-05-02 | 2022-11-24 | Grace W R & Co | Material de soporte funcionalizado y métodos de fabricación y uso de material de soporte funcionalizado |
JP2018517559A (ja) | 2015-06-05 | 2018-07-05 | ダブリュー・アール・グレース・アンド・カンパニー−コーンW R Grace & Co−Conn | 吸着性バイオプロセス清澄化剤並びにその製造及び使用方法 |
IT201800004721A1 (it) | 2018-04-19 | 2019-10-19 | Dispositivo per la stabilizzazione del vino ed altre bevande vegetali e relativo procedimento di stabilizzazione. | |
CN112521485A (zh) * | 2020-12-17 | 2021-03-19 | 中国科学院过程工程研究所 | 一种犬血白蛋白的制备方法、利用其得到的犬血白蛋白和应用 |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3234199A (en) * | 1958-12-18 | 1966-02-08 | Allen F Reid | Ion exchange process for separating proteins |
US3557082A (en) * | 1969-01-24 | 1971-01-19 | Tee Pak Inc | Process for separating ionic materials from component mixtures |
DE2319581C2 (de) * | 1973-04-18 | 1975-03-27 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren zur chromatographischen Fraktionierung von Molke |
FR2236552B1 (de) * | 1973-07-13 | 1977-05-06 | Rhone Progil | |
JPS5426396B2 (de) * | 1974-06-04 | 1979-09-04 |
-
1976
- 1976-08-16 US US05/714,308 patent/US4100149A/en not_active Expired - Lifetime
- 1976-08-26 SE SE7609479A patent/SE426911B/xx unknown
- 1976-08-26 JP JP51102167A patent/JPS5257200A/ja active Granted
- 1976-08-26 IT IT51043/76A patent/IT1066221B/it active
- 1976-08-27 NL NLAANVRAGE7609562,A patent/NL178294C/xx not_active IP Right Cessation
- 1976-08-27 ES ES451047A patent/ES451047A1/es not_active Expired
- 1976-08-27 NZ NZ181884A patent/NZ181884A/xx unknown
- 1976-08-27 DK DK389176A patent/DK156577C/da active
- 1976-08-27 CH CH1092476A patent/CH602780A5/xx not_active IP Right Cessation
- 1976-08-27 AR AR264478A patent/AR209193A1/es active
- 1976-08-27 SU SU762392409A patent/SU688124A3/ru active
- 1976-08-27 AU AU17217/76A patent/AU500134B2/en not_active Expired
- 1976-08-27 IE IE1918/76A patent/IE43536B1/en not_active IP Right Cessation
- 1976-08-27 NO NO762959A patent/NO145508C/no unknown
- 1976-08-27 GB GB35774/76A patent/GB1513195A/en not_active Expired
- 1976-08-27 YU YU02096/76A patent/YU209676A/xx unknown
- 1976-08-27 MX MX764865U patent/MX4333E/es unknown
- 1976-08-27 RO RO7687387A patent/RO78229A/ro unknown
- 1976-08-27 DE DE2638764A patent/DE2638764C3/de not_active Expired
- 1976-08-27 CA CA260,064A patent/CA1069843A/en not_active Expired
- 1976-08-27 BR BR7605661A patent/BR7605661A/pt unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DK389176A (da) | 1977-03-01 |
DE2638764A1 (de) | 1977-03-03 |
YU209676A (en) | 1982-10-31 |
SU688124A3 (ru) | 1979-09-25 |
AU1721776A (en) | 1978-03-02 |
SE7609479L (sv) | 1977-03-01 |
JPS5257200A (en) | 1977-05-11 |
DE2638764B2 (de) | 1978-09-14 |
NL7609562A (nl) | 1977-03-02 |
MX4333E (es) | 1982-03-26 |
IE43536B1 (en) | 1981-03-25 |
CH602780A5 (de) | 1978-07-31 |
DK156577B (da) | 1989-09-11 |
NL178294C (nl) | 1986-03-03 |
CA1069843A (en) | 1980-01-15 |
DK156577C (da) | 1990-01-29 |
US4100149A (en) | 1978-07-11 |
NZ181884A (en) | 1978-04-28 |
AR209193A1 (es) | 1977-03-31 |
RO78229A (ro) | 1982-02-26 |
SE426911B (sv) | 1983-02-21 |
NO145508C (no) | 1982-04-14 |
IT1066221B (it) | 1985-03-04 |
ES451047A1 (es) | 1978-05-01 |
AU500134B2 (en) | 1979-05-10 |
JPS5715840B2 (de) | 1982-04-01 |
BR7605661A (pt) | 1978-03-21 |
NO145508B (no) | 1981-12-28 |
NO762959L (de) | 1977-03-01 |
IE43536L (en) | 1977-02-28 |
GB1513195A (en) | 1978-06-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE2638764C3 (de) | Verwendung eines Austauscherharzes zum Auftrennen von Proteinen | |
DE2413362C2 (de) | Gelprodukt auf Basis von Agarose sowie Verwendung desselben für hydrophobe Entsalzungsadsorption | |
EP0154246B1 (de) | Phasenträger für die Verteilungschromatographie von Makromolekülen, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung | |
DE2026076C3 (de) | Verfahren zum selektiven Adsorbieren von einem oder mehreren, spezifischen, nicht-viralen Proteinen aus flüssigem Plasma oder Serum | |
DE60011584T2 (de) | Positiv geladene membran | |
DE2839170C2 (de) | Chromatographisches Material | |
DE2633246A1 (de) | Neue poroese materialien kationischen charakters sowie deren herstellung und deren anwendung zur reversiblen fixierung von biologischen makromolekuelen | |
DE2840503A1 (de) | Material zur reversiblen fixierung biologischer makromolekuele, verfahren zu seiner herstellung und seine verwendung | |
DD145108A1 (de) | Cyclodextrin-polyvinylalkohol-polymere und verfahren zu deren herstellung in form von folien,fibern,perl-und blockpolymerisation | |
DE2505870C2 (de) | ||
CH647158A5 (de) | Verfahren zur reinigung von interferon. | |
DE2229298C3 (de) | In wäßrigen Medien unlösliches Produkt mit enzymatischer Aktivität sowie Verfahren zu seiner Herstellung | |
DE1442443B2 (de) | Verwendung von vernetzten PoIyacrylamiden zur chromatographischen Trennung von proteolytischen Enzymen und zur Entwässerung von Proteinlösungen | |
DE3713892A1 (de) | Material fuer reverse phasen und verfahren zum herstellen | |
DE3926539C2 (de) | ||
DE2321784C2 (de) | Verfahren zur Herstellung von vernetzten Gelose- oder Agarose-Gelen sowie deren Verwendung | |
DE3713705A1 (de) | Kationenaustauschermaterial und verfahren zur herstellung | |
EP0185161B1 (de) | Makroporöse Perlpolymerisate zur Reinigung von Acarbose | |
DE2802789C3 (de) | Verfahren zum Reinigen von wäßrigen Anthocyanlösungen | |
EP0351621B1 (de) | Verfahren zur Herstellung von bifunktionellen Anionenaustauschharzen, neue bifunktionelle Anionenaustauschharze und ihre Verwendung | |
EP0789620B1 (de) | Trennmaterialien und verfahren zu ihrer herstellung | |
DE2448371A1 (de) | Verfahren zur isolierung der transferrine aus biologischen stoffen | |
DE2821392C3 (de) | Verfahren zur Gewinnung von Milchproteinen | |
DE2924893A1 (de) | Anionische ionenaustauschharze zur senkung des cholesterinspiegels | |
WO1996014151A9 (de) | Trennmaterialien und verfahren zu ihrer herstellung |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) |