DE2913553B1 - Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten - Google Patents
Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von EnzymsubstratenInfo
- Publication number
- DE2913553B1 DE2913553B1 DE2913553A DE2913553A DE2913553B1 DE 2913553 B1 DE2913553 B1 DE 2913553B1 DE 2913553 A DE2913553 A DE 2913553A DE 2913553 A DE2913553 A DE 2913553A DE 2913553 B1 DE2913553 B1 DE 2913553B1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- substrate
- reagent
- determination
- buffer
- enzyme
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/62—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving uric acid
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/54—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving glucose or galactose
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/60—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving cholesterol
Description
45
Die Erfindung betrifft ein Verfahren und ein Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten.
Enzymatische Bestimmungen von Enzymsubstraten, so wie z. B. Glucose, Harnsäure, Cholesterin, werden
häufig dadurch gestört, daß in den Reagenzien enthaltende Substanzen, beispielsweise reduzierende
oder oxidierende Substanzen, mit Zwischenprodukten oder Endprodukten des Testsystems reagieren. Diese
störende Nebenreaktion kann rein chemisch ablaufen oder die Störung kann durch Hemmung des Enzyms,
Eingang in die enzymatische Reaktion als konkurrierendes Substrat und dergleichen erfolgen. In jedem Fall
wird die Konzentration des eigentlichen Indikatorpro- so
dukts, welches gemessen wird, bei quantitativen, insbesondere photometrischen Bestimmungen, also
beispielsweise des gebildeten Farbstoffs, vermindert. Das für die Richtigkeit des Verfahrens essentielle
proportionale Verhältnis zwischen nachzuweisender &5
Substratkonzentration und Konzentration des gemessenen Indikatorprodukts wird auf diese Weise beseitigt.
Die Wiederfindung des nachzuweisenden Substrates weicht damit von 100% ab. Mit anderen Worten werden
falsche Ergebnisse erhalten.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, dieses Problem zu beseitigen und ein Verfahren und ein
Reagenz für die enzymatische Bestimmung eines Enzymsubstrats in Gegenwart von Störsubstanzen zu
schaffen, welches zu richtigen Ergebnissen führt und die oben aufgeführten Schwierigkeiten beseitigt.
Gelöst wird diese Aufgabe erfindungsgemäß durch ein Verfahren zur enzymatischen Bestimmung eines
Enzymsubstrates unter Verwendung eines enzymhaltigen Reagenzes unter Eliminierung von Störsubstanzen
in diesem Reagenz, die mit dem Substrat oder einem Zwischen- oder Endprodukt der Indikatorreaktion
reagieren können, dadurch gekennzeichnet, daß man vor Zugabe der zu untersuchenden Probe zuerst eine
bestimmte Menge des Substrates mit dem Reagenz zur Umsetzung bringt bis es abreagiert hat und erst danach
die zu bestimmende Probe zusetzt.
Durch den Zusatz der bestimmten Substratmenge, die stets deutlich unter der Substratbestimmungskapazität
des Analysensystems liegt, wird der Ablauf einer Vorreaktion veranlaßt, bis alles zugesetzte Substrat
verbraucht ist. Im Rahmen dieser Vorreaktion werden auch die störenden Substanzen vollständig verbraucht.
Sobald diese Reaktion zum Stillstand gekommen ist, wird dann die eigentliche zu untersuchende Probe mit
einem unbekannten Gehalt an dem zu bestimmenden Substrat zugesetzt. Die Menge des zu bestimmenden
Substrats ergibt sich dann aus der Differenz zwischen dem Endwert der Vorreaktion für das zu messende
Reaktionsprodukt und dem Endwert, der nach Zusatz der zu untersuchenden Probe erhalten wird. Wahlweise
ist es auch möglich, die eigentliche Probenbestimmung kinetisch zu verfolgen, d. h. nicht Endwerte, sondern nur
Reaktionsgeschwindigkeiten zu messen.
Für die Menge des erfindungsgemäß zuzusetzenden Substrats lassen sich keine allgemeinen Angaben
machen. Es hängt diese Menge von der Art des Bestimmungssystems und der Menge der zu erwartenden
Störsubstanzen ab. Im allgemeinen wird man einen genügenden Überschuß an Substrat bezüglich der
Störsubstanzen anwenden, um mit Sicherheit auszuschließen, daß noch nicht abreagierte Störsubstanzen
vorliegen, wenn die eigentliche unbekannte Probe zugesetzt wird. Andererseits wird man auch nicht zu viel
Substrat zusetzen, um nicht für die eigentliche Probenreaktion einen zu hohen und die Genauigkeit der
Meßreaktion negativ beeinflussenden Nullwert zu erhalten. Letzteres spielt z. B. eine Rolle bei photometrichen
Messungen eines als Verfahrensprodukt gebildeten Farbstoffs. Bei solchen, auf der photometrischen
Bestimmung eines als Reaktionsprodukt auftretenden Farbstoffs beruhenden Methoden wird man die
zugesetzte bestimmte Substratmenge so niedrig halten, daß noch keine störenden Konzentrationen an Farbstoff
gebildet werden. Dies läßt sich in der Praxis in jedem Falle leicht erreichen, da ja ein derartiger Farbstoff oder
ein sonstiges Indikatorprodukt erst von derjenigen Substratmenge gebildet wird, welche die zur Abreaktion
der Störsubstanzen erforderliche Substratmenge übersteigt
Beim Verfahren der Erfindung ist es nicht erforderlich, die Art der störenden Fremdsubstanzen zu kennen.
Häufig handelt es sich hierbei zwar um reduzierende Substanzen, aber auch oxidierende oder sonstige
störende Substanzen werden nach dem erfindungsgemäßen Verfahren mit Sicherheit ausgeschaltet.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Reagenz zur enzymatischen Bestimmung eines Enzymsubstrats,
enthaltend ein System zur Bestimmung des Substrats, welches aus wenigstens einem Enzym,
wenigstens einer Puffersubstanz und wenigstens einer Indikatorsubstanz sowie gegebenenfalls Hilfsstoffen
besteht und welches gekennzeichnet ist durch einen Gehalt an einer bestimmten Menge des Substrats im
Unterschuß bezüglich der Substratbestimmungskapazität des Systems zur Bestimmung dieses Substrats. ι ο
Wenn das in Trockenform vorliegende, erfindungsgemäße Reagenz in Wasser aufgelöst wird, läuft die
Reaktion zur Beseitigung der Störsubstanzen während und nach dem Lösungsvorgang bereits ab. Die so
erhaltene Lösung kann dann direkt für die eigentliche Bestimmung des Enzymsubstrats eingesetzt oder aber
erneut in ein Trockenreagenz überführt werden, welches zur späteren Wiederauflösung vor Durchführung
der Bestimmungsreaktion vorgesehen ist. Es ist aber auch möglich, das erfindungsgemäße Reagenz erst
unmittelbar vor seiner Verwendung durch den Substratzusatz zu komplettieren oder alternativ eine andere,
zum Start der Reaktion erforderliche Substanz erst nachträglich zuzusetzen, beispielsweise das Enzym oder
im Falle einer mehrstufigen Reaktion mit mehreren enzymatischen Schritten, eines der für die Reaktion
erforderlichen Enzyme.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Reagenz enthält dieses Glucose als
Substrat und das System zur Bestimmung des Substrats Glucose besteht aus Glucoseoxidase (GOD), Peroxidase
(POD), Puffer und ABTS® (2,2'-Azino-di-[3-äthyl-benzthiazolin-sulfonat(6)]) als Farbreagenz.
Bei einem derartigen Reagenz werden, bezogen auf 100 ml wäßriger Lösung des Substratbestimmungssystems,
etwa 750 bis 1500 U, vorzugsweise 900 bis 1200U, GOD einer spezifischen Aktivität von etwa
100 U/mg eingesetzt. Die entsprechenden Mengen für POD einer Aktivität von ebenfalls ca. 100 U/mg
betragen 10 bis 150 U, vorzugsweise 80 bis 120 U/100 ml gebrauchsfertiger Reagenzlösung. Die entsprechenden
Konzentrationen für ABTS betragen 75 bis 150 mg, vorzugsweise 90 bis 120 mg/100 ml. Als Puffer kommt
ein solcher von pH 6,5 bis 7,5, vorzugsweise 6,8 bis 7,2, in Betracht. Die Konzentration liegt zweckmäßig zwisehen
50 und 20OmMoI, vorzugsweise 80 bis 120 mMol/1. Als Puffer wird Natriumphosphatpuffer
(Na2HPO4/NaH2/PO4)
bevorzugt. Beispiele für andere geeignete Puffer sind so
Phosphat-Tris-Puffer, Zitronensäure-Tris-Puffer, Weinsäure-Tris-Puffer
und Maleinsäure-Tris-Puffer. Für die Konzentration und den pH-Wert gilt das gleiche wie
oben ausgeführt.
Bei einem in der vorstehend beschriebenen Weise zusammengesetzten Reagenz beträgt der Glucosegehalt
zweckmäßig 0,01 bis 0,05 mg, vorzugsweise 0,02 bis 0,04 mg/100 ml Lösung.
Bei einem weiteren bevorzugten erfindungsgemäßen Reagenz zur Glucosebestimmung enthält das System
zur Bestimmung des Substrats neben GOD und POD als Farbbildungskomponenten 4-Aminophenazon (PAP)
und Phenol. In diesem Falle werden an GOD pro 100 ml
gebrauchsfertige Reagenzlösung 3000 bis 5000U, vorzugsweise 3800 bis 4200 U/100 ml, an POD 50 bis
U, vorzugsweise 160 bis 200 LI/100 ml Lösung sowie 10 bis 20 mg, vorzugsweise 13 bis 17 mg/100 ml PAP
und 120 bis 240 mg, vorzugsweise 160 bis 200 mg/100 ml Phenol eingesetzt. Als Puffer wird in diesem Falle
Kaliumphosphat-Puffer des oben angegebenen pH-Wertbereiches bevorzugt. Die Konzentration sollte
zweckmäßig zwischen 150 und 250 mMol, vorzugsweise 180 bis 220 mMol/1 liegen.
Bei diesem Reagenz beträgt der Glucosegehalt zweckmäßig 0,05 bis 0,25 mg, vorzugsweise 0,1 bis
0,2 mg/100 ml Lösung.
Die obigen Angaben beziehen sich auf das gelöste Reagenz. Sie gelten in gleicher Weise auf die zur
Herstellung von 100 ml Lösung bestimmte Menge Trockenreagenz.
Ein weiteres bevorzugtes Reagenz enthält als Substrat Harnsäure und das System zur Bestimmung
dieses Substrats besteht aus Uricase, POD, Farbbildner und Puffer. Als Farbbildner wird ein Gemisch von
2,4-Dichlorphenolat und 4-Aminoantipyrin bevorzugt.
Ein derartiges Reagenz enthält in einer zweckmäßigen Ausführungsform 35 bis 45 U, vorzugsweise 38 bis
42 U/100 ml gebrauchsfertiger Lösung an Uricase mit einer spezifischen Aktivität von etwa 9 U/mg. Die
POD-Menge für ein Präparat von ca. 100 U/mg beträgt zweckmäßig 30 bis 40 U, vorzugsweise 33 bis 37 U/
100 ml Lösung. Das 2,4-Dichlorphenolat, welches als Alkalisalz, Ammoniumsalz oder Aminosalz, vorzugsweise
als Äthylammoniumsalz, eingesetzt wird, liegt zweckmäßig in Mengen zwischen 150 und 200 mg,
vorzugsweise 165 bis 180 mg/100 ml, bezogen auf das Äthylammoniumsalz, vor. Diese Mengenangaben verändern
sich natürlich mit der Natur des Kations. Das 4-Aminoantipyrin wird zweckmäßig in 150 bis 250 mg,
vorzugsweise 180 bis 220 mg/100 ml Reagenz, eingesetzt.
Die Puffersubstanz soll im pH-Bereich 8,5 bis 9,5, vorzugsweise 8,7 bis 9,3, puffern. Die Konzentration
beträgt zweckmäßig 100 bis 20OmMoI, vorzugsweise 130 bis 180mMol/I. Bevorzugt wird Tris-Citrat-Puffer,
andere, gut geeignete Puffersubstanzen sind Tris-Weinsäure und Tris-Maleinsäure.
Bei diesem Reagenz liegt der Harnsäurezusatz zweckmäßig zwischen 0,05 und 0,25 mg, vorzugsweise
0,1 bis 0,2 mg/100 ml, bezogen auf das Lithium- oder Natriumsalz.
Noch ein weiteres bevorzugtes Reagenz gemäß der Erfindung enthält Cholesterin als Substrat und das
System zur Bestimmung dieses Substrats besteht aus Cholesterinesterase, Cholesterinoxidase, POD und
Farbbildner sowie Puffersubstanz. Als Farbbildner eignet sich besonders eine Mischung von 4-Aminoantipyrin
und Phenol.
In einer zweckmäßigen Ausführungsform enthält dieses Reagenz 15 bis 25 U, vorzugsweise 17 bis
23 U/100 ml Reagenzlösung einer Cholesterinesterase mit einer spezifischen Aktivität von ca. 20 U/mg, 20 bis
30 U, vorzugsweise 22 bis 28 U/100 ml einer Cholesterinoxidase einer spezifischen Aktivität von ca. 25 U/mg,
50 bis 200 U, vorzugsweise 130 bis 180 U/100 ml Lösung
einer POD von ca. 100 U/mg, 15 bis 25 mg, vorzugsweise
17 bis 23 mg/100 ml Reagenzlösung 4-Aminoantipyrin und 40 bis 60 mg, vorzugsweise 45 bis 55 mg/100 ml
Phenol. Als Puffer wird eine geeignete Puffersubstanz, pH 7 bis 8,5, vorzugsweise 7,8 bis 8,2, mit einer
Konzentration zwischen 150 und 25OmMoI, vorzugsweise
180 bis 220 mMol/1 eingesetzt. Besonders geeignet ist Kaliumphosphat-Puffer, jedoch eignen sich
andere Puffersubstanzen, die im angegebenen Bereich zu puffern vermögen, ebenfalls. Der Cholesteringehalt
eines derartigen Reagenz beträgt zweckmäßig 0,20 bis
0,60 mg, vorzugsweise 0,30 bis 0,50 mg/100 ml Reagenzlösung
bzw. der zur Herstellung einer solchen Reagenzlösungsmenge vorgesehenen Trockenreagenzmenge.
Es versteht sich, daß die für die oben beschriebenen bevorzugten erfindungsgemäßen Reagenzzusammensetzungen
die angegebenen Enzymmengen nur für Enzyme der jeweils aufgeführten spezifichen Aktivität
gelten und durch Präparate anderer Aktivität ersetzt werden können.
Es ist ersichtlich, daß erfindungsgemäß Störreaktionen bei der enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten
beseitigt werden können. Dies ermöglicht es, weniger reine Reagenzien einzusetzen, die Lagerfähigkeit
von Reagenzien, bei denen Störsubstanzen während der Lagerung erst entstehen, zu verlängern
und die Genauigkeit der Bestimmungen zu erhöhen.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung weiter.
Reagenz zur Glucosebestimmung nach der ABTS-Methode
Natriumphosphat-Puffer, pH 7,0 100 mMol/1
Glucoseoxidase (ca. 100 U/mg) 1000 U/l 00 ml
Peroxidase (ca. 100 U/mg) 80 U/l 00 ml
ABTS*) 100 mg/100 ml
Glucose 0,05 mg/100 ml
*) 2,2'-Azino-di-[3-äthyl-benzthiazolin-suIfonsäure(6)]-diammoniumsalz.
Reagenz zur Glucosebestimmung nach der GOD-PAP-Methode
Kaliumphosphat-Puffer, pH 7,1 205 mMol/1
Glucoseoxidase
(GOD; ca. 100 U/mg) 4100 U/100 ml
Peroxidase (POD; ca. 100 U/mg) 190 U/100 ml
PAP (4-Aminophenazon) 17 mg/100 ml
Phenol 200 mg/100 ml
Glucose 0,2 mg/100 ml
Beispiel 3 Reagenz zur Cholesterinbestimmung
Kaliumphosphat-Puffer, pH 7,9 200 mMol/1
Cholesterinesterase
(ca. 20 U/mg) 22 U/100 ml
Cholesterinoxidase
(ca. 25 U/mg) 24 U/100 ml
Peroxidase (ca. 100 U/mg) 150 U/100 ml
4-Aminoantipyrin 21 mg/100 ml
Phenol 47 mg/100 ml
Cholesterin 0,4 mg/100 ml
Beispiel 4 Reagenz zur Harnsäurebestimmung
Tris-Citrat-Puff er, pH 9,1
Uricase (ca. 9 U/mg)
Peroxidase (ca. 100 U/mg)
2,4-Dichlorphenolatäthylammoniumsalz
4-Aminoantipyrin
Harnsäure (Li- oder Na-SaIz)
Uricase (ca. 9 U/mg)
Peroxidase (ca. 100 U/mg)
2,4-Dichlorphenolatäthylammoniumsalz
4-Aminoantipyrin
Harnsäure (Li- oder Na-SaIz)
15OmMoVl 39 U/100 ml 36 U/100 ml
170 mg/100 ml 190 mg/100 ml 0,16 mg/100 ml
Beispiel 5
Vergleichende Glucosebestimmung
Vergleichende Glucosebestimmung
Um die erfindungsgemäß verbesserte Genauigkeit der Glucosebestimmung zu zeigen, wurde wie folgt
vorgegangen:
Zwei Reagenzienlösungen A und B wurden durch Auflösen von Reagenz gemäß Beispiel 1 in der
erforderlichen Menge Wasser hergestellt. Bei Lösung A wurde jedoch der Glucosezusatz weggelassen. Zur
Bestimmung wurde eine Glucose-Standardreihe mit von 50 bis 400 mg/100 ml ansteigendem Glucosegehalt
sowie Humanserum eingesetzt.
Bestimmungsansatz:
Wellenlänge: Hg 436 nm.
Küvette: 1 cm Schichtdicke.
Inkubationstemperatur: 20 bis 25° C.
Messung erfolgte gegen Leerwert in handelsüblichem Photometer. In die Küvetten wurden folgende Lösungen
einpipettiert:
Leerwert | Standard | Probe | |
Destl. Wasser | 0,1ml | — | — |
Verdünnte | — | 0,1ml | - |
Standardlösung | |||
Enteiweißte | — | - | 0,1ml |
Probe | |||
Testreagenz | 5,0 ml | 5,0 ml | 5,0 ml |
(A/B) |
mischen, bei 20 bis 25° C inkubieren. Nach 25 bis 50
Minuten Extinktion der Probe (Eprobe) und Extinktion
des Standards (Estandard) gegen Leerwert messen.
Berechnung der Glucosekonzentration in der Probe:
= 100
E1
Probe
-^Standard
[mg/100 ml]
Meßergebnisse:
Glucose-Standard-Reihe (50 bis 400 mg/100 ml).
Glucosekonzentration
Extinktion in Reagenz
A B
A B
50 mg/100 ml
100 mg/100 ml
200 mg/100 ml
300 mg/100 ml
400 mg/100 ml
100 mg/100 ml
200 mg/100 ml
300 mg/100 ml
400 mg/100 ml
0,060
0,236
0,400
0,577
0,236
0,400
0,577
0,095
0,170
0,353
0,533
0,700
0,170
0,353
0,533
0,700
Die obigen Meßergebnisse sind in der Figur der Zeichnung graphisch dargestellt. Die Kurve für Lösung
A zeigt, daß Probeflüssigkeiten mit einem Glucosegehalt unter ca. 70 mg/100 ml nicht gemessen werden, da
keine Extinktion, d.h. Farbentwicklung auftritt. Bei Verwendung des allgemein üblichen Ein-Punkt-Standards
(z. B. 100 mg Glucose/100 ml) werden Proben mit einer Glucosekonzentration zwischen 70 und 100 mg/
100 ml zu niedrig, Proben mit Glucosegehalten über 100 mg/100 ml zu hoch gegenüber dem tatsächlichen
Gehalt ermittelt. Nur Probekonzentrationen, die exakt der Konzentration des Standards entsprechen, liefern
korrekte Meßwerte. Das erfindungsgemäße Reagenz B hingegen liefert durchweg richtige Werte.
Die Ergebnisse mit Humanserumproben wurden in der oben beschriebenen Weise durchgeführt, wobei zum
Vergleich die nach der Hexokinase-Methode (Standardmethode) erhaltenen Werte bestimmt wurden. Die
Ergebnisse zeigt nachstehende Tabelle.
HK/G6P-DH
(Standard-Methode) Reagenz A
(Standard-Methode) Reagenz A
Reagenz B
Serum 1 | 53 mg/100 ml | kein Meßwert | 51mg/100ml |
Serum 2 | 84 mg/100 ml | 55 mg/100 ml | 83,5 mg/100 ml |
Serum 3 | 135 mg/100 ml | 213 mg/100 ml | 135 mg/100 ml |
Hierzu 1 Blatt Zeichnungen
030 141/382
Claims (6)
1. Reagenz zur enzymatischen Bestimmung eines Enzymsubstrats, enthaltend ein System zur Bestimmung
des Substrats, welches aus wenigstens einem Enzym, wenigstens einer Puffersubstanz und wenigstens
einer Indikatorsubstanz sowie gegebenenfalls Hilfsstoffen besteht, gekennzeichnet durch
einen Gehalt an einer bestimmten Menge des Substrats im Unterschuß bezüglich der Substratbestimmungskapazität
des Systems zur Bestimmung dieses Substrats.
2. Reagenz nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß es Glucose als Substrat enthält und das
System zur Bestimmung des Substrats aus Glucoseoxidase, Peroxidase, ABTS und Puffer besteht.
3. Reagenz nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß es Harnsäure als Substrat enthält und
das System zur Bestimmung eines Substrats aus Uricase, Peroxidase, 2,4-DichIorphenolat, 4-Aminoantipyrin
und Puffer besteht.
4. Reagenz nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß es Cholesterin als Substrat enthält und
das System zur Bestimmung eines Substrats aus Cholesterinesterase, Cholesterinoxidase, Peroxidase,
4-Aminoantipyrin, Phenol und Puffer besteht.
5. Reagenz nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß es Glucose als Substrat enthält und das
System zur Bestimmung eines Substrats aus Glucoseoxidase, Peroxidase, 4-Aminophenazon,
Phenol und Puffer besteht.
6. Verfahren zur enzymatischen Bestimmung eines Enzymsubstrats unter Verwendung eines enzymhaltigen
Reagenzes unter Eliminierung von Störsubstanzen in diesem Reagenz, die mit dem Substrat
selbst oder einem Zwischen- oder Endprodukt der Indikatorreaktion reagieren können, dadurch gekennzeichnet,
daß man vor Zugabe der zu untersuchenden Probe zuerst eine bestimmte Menge des Substrats mit dem Reagenz zur Umsetzung
bringt bis es abreagiert hat und erst danach die zu bestimmende Probe zusetzt.
Priority Applications (14)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE2913553A DE2913553C2 (de) | 1979-04-04 | 1979-04-04 | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten |
DE8080100841T DE3064075D1 (en) | 1979-04-04 | 1980-02-20 | Process and reagent for the enzymatic determination of enzymatic substrates |
EP80100841A EP0016947B1 (de) | 1979-04-04 | 1980-02-20 | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten |
AT80100841T ATE4126T1 (de) | 1979-04-04 | 1980-02-20 | Verfahren und reagenz zur enzymatischen bestimmung von enzymsubstraten. |
CA000347407A CA1152871A (en) | 1979-04-04 | 1980-03-11 | Process and reagent for the enzymatic determination of enzyme substrates |
AU56779/80A AU515851B2 (en) | 1979-04-04 | 1980-03-24 | Enzymatic determination of enzyme substrates |
US06/133,722 US4517287A (en) | 1979-04-04 | 1980-03-25 | Method and reagent for the enzymatic determination of enzyme substrates |
FI801025A FI70727C (fi) | 1979-04-04 | 1980-04-01 | Foerfarande och reagens foer enzymatisk bestaemning av enzymsubstrat |
HU8080795A HU181089B (en) | 1979-04-04 | 1980-04-02 | Process and reagent for enzymatical determining enzyme substrates |
DD80220176A DD150256A5 (de) | 1979-04-04 | 1980-04-02 | Verfahren und reagenz zur enzymatischen bestimmung von enzymsubstraten |
YU917/80A YU44100B (en) | 1979-04-04 | 1980-04-02 | Process for the enzymatic determination of enzymatic substrates |
CS802326A CS228127B2 (en) | 1979-04-04 | 1980-04-03 | Reagencni cinidlo |
JP4343980A JPS55135599A (en) | 1979-04-04 | 1980-04-03 | Reagent and method for enzymatic measurement of enzyme substrate |
CS817834A CS244665B2 (en) | 1979-04-04 | 1980-04-03 | Method of enzymatic determination of enzyme substrates |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE2913553A DE2913553C2 (de) | 1979-04-04 | 1979-04-04 | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2913553B1 true DE2913553B1 (de) | 1980-10-09 |
DE2913553C2 DE2913553C2 (de) | 1981-09-17 |
Family
ID=6067435
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2913553A Expired DE2913553C2 (de) | 1979-04-04 | 1979-04-04 | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten |
DE8080100841T Expired DE3064075D1 (en) | 1979-04-04 | 1980-02-20 | Process and reagent for the enzymatic determination of enzymatic substrates |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE8080100841T Expired DE3064075D1 (en) | 1979-04-04 | 1980-02-20 | Process and reagent for the enzymatic determination of enzymatic substrates |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4517287A (de) |
EP (1) | EP0016947B1 (de) |
JP (1) | JPS55135599A (de) |
AT (1) | ATE4126T1 (de) |
AU (1) | AU515851B2 (de) |
CA (1) | CA1152871A (de) |
CS (2) | CS228127B2 (de) |
DD (1) | DD150256A5 (de) |
DE (2) | DE2913553C2 (de) |
FI (1) | FI70727C (de) |
HU (1) | HU181089B (de) |
YU (1) | YU44100B (de) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0100217A2 (de) * | 1982-07-23 | 1984-02-08 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | Verfahren zur quantitativen Bestimmung eines mit Oxidase behandelten Substrates |
Families Citing this family (29)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS56164797A (en) * | 1980-05-21 | 1981-12-17 | Toyo Jozo Co Ltd | Improved method of determining components in samples |
DE3314308A1 (de) * | 1983-04-20 | 1984-10-25 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren und reagens zur bestimmung des haemoglobin-haptoglobin komplexes in gegenwart von freiem haemoglobin |
DE3509238A1 (de) * | 1985-03-14 | 1986-09-18 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Stabilisierung der aktivitaet von peroxidase in loesung |
US4937186A (en) * | 1988-01-28 | 1990-06-26 | Iqbal Siddiqi | Method for the determination of bilirubin in solution |
US5183743A (en) * | 1989-06-12 | 1993-02-02 | Miles Inc. | Chromogenic dibenzoxazepinone and dibenzothiazepinone enzyme substrates |
GB9113212D0 (en) * | 1991-06-19 | 1991-08-07 | Hypoguard Uk Ltd | Reagent mixture |
US5614010A (en) * | 1994-03-14 | 1997-03-25 | Clearwater, Inc. | Hydrocarbon gels useful in formation fracturing |
AUPM506894A0 (en) * | 1994-04-14 | 1994-05-05 | Memtec Limited | Novel electrochemical cells |
AUPN239395A0 (en) * | 1995-04-12 | 1995-05-11 | Memtec Limited | Method of defining an electrode area |
US6413410B1 (en) | 1996-06-19 | 2002-07-02 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
AUPN363995A0 (en) | 1995-06-19 | 1995-07-13 | Memtec Limited | Electrochemical cell |
US6863801B2 (en) | 1995-11-16 | 2005-03-08 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
US6521110B1 (en) | 1995-11-16 | 2003-02-18 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
US6638415B1 (en) * | 1995-11-16 | 2003-10-28 | Lifescan, Inc. | Antioxidant sensor |
AUPN661995A0 (en) * | 1995-11-16 | 1995-12-07 | Memtec America Corporation | Electrochemical cell 2 |
US6632349B1 (en) * | 1996-11-15 | 2003-10-14 | Lifescan, Inc. | Hemoglobin sensor |
AUPO855897A0 (en) * | 1997-08-13 | 1997-09-04 | Usf Filtration And Separations Group Inc. | Automatic analysing apparatus II |
US6193865B1 (en) | 1997-09-11 | 2001-02-27 | Usf Filtration And Separations Group, Inc. | Analytic cell |
RU2278612C2 (ru) | 2000-07-14 | 2006-06-27 | Лайфскен, Инк. | Иммуносенсор |
US6444115B1 (en) * | 2000-07-14 | 2002-09-03 | Lifescan, Inc. | Electrochemical method for measuring chemical reaction rates |
AU2002340079A1 (en) | 2001-10-10 | 2003-04-22 | Lifescan Inc. | Electrochemical cell |
US20030180814A1 (en) * | 2002-03-21 | 2003-09-25 | Alastair Hodges | Direct immunosensor assay |
US20060134713A1 (en) * | 2002-03-21 | 2006-06-22 | Lifescan, Inc. | Biosensor apparatus and methods of use |
US8529751B2 (en) * | 2006-03-31 | 2013-09-10 | Lifescan, Inc. | Systems and methods for discriminating control solution from a physiological sample |
US8778168B2 (en) * | 2007-09-28 | 2014-07-15 | Lifescan, Inc. | Systems and methods of discriminating control solution from a physiological sample |
US8513371B2 (en) * | 2007-12-31 | 2013-08-20 | Bridgestone Corporation | Amino alkoxy-modified silsesquioxanes and method of preparation |
US8603768B2 (en) | 2008-01-17 | 2013-12-10 | Lifescan, Inc. | System and method for measuring an analyte in a sample |
US8551320B2 (en) | 2008-06-09 | 2013-10-08 | Lifescan, Inc. | System and method for measuring an analyte in a sample |
CN111808921A (zh) * | 2020-06-15 | 2020-10-23 | 武汉生之源生物科技股份有限公司 | 一种基于Trinder反应的检测试剂盒及其应用 |
Family Cites Families (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
NL137003C (de) * | 1967-10-14 | |||
GB1385320A (en) * | 1971-09-22 | 1975-02-26 | Nat Res Dev | Cholesterol assay |
IT986838B (it) * | 1972-05-12 | 1975-01-30 | Sclavo Inst Sieroterapeut | Complesso di reagenti per la deter minazione enzimatica del glucosio sistema glucosio ossidasi perossi dasi con metodo manuale e automati co con lettura a termine o in cinetica |
US4000042A (en) * | 1973-09-06 | 1976-12-28 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Diagnostic reagent for the determination of amylase |
DE2417230A1 (de) * | 1974-04-09 | 1975-11-06 | Lebrecht Von Dr Klitzing | Verfahren und anordnung zur enzymatischen bestimmung der konzentration von substraten, insbesondere stoffwechselmetaboliten |
BE856461A (nl) * | 1977-07-04 | 1978-01-04 | Henau Paul | Indicator voor zuurstofoverdracht, preparaat voor het verrichten van enzymatische bepalingen op basis van deze indicator en werkwijze |
US4242446A (en) * | 1978-07-26 | 1980-12-30 | Coulter Electronics, Inc. | Method for determining a substance in a biological fluid and reagent combination for use in the method |
US4241179A (en) * | 1978-08-14 | 1980-12-23 | Coulter Electronics, Inc. | Method for determining a transaminase in a biological fluid and reagent combination for use in the method |
-
1979
- 1979-04-04 DE DE2913553A patent/DE2913553C2/de not_active Expired
-
1980
- 1980-02-20 AT AT80100841T patent/ATE4126T1/de not_active IP Right Cessation
- 1980-02-20 EP EP80100841A patent/EP0016947B1/de not_active Expired
- 1980-02-20 DE DE8080100841T patent/DE3064075D1/de not_active Expired
- 1980-03-11 CA CA000347407A patent/CA1152871A/en not_active Expired
- 1980-03-24 AU AU56779/80A patent/AU515851B2/en not_active Expired
- 1980-03-25 US US06/133,722 patent/US4517287A/en not_active Expired - Lifetime
- 1980-04-01 FI FI801025A patent/FI70727C/fi not_active IP Right Cessation
- 1980-04-02 YU YU917/80A patent/YU44100B/xx unknown
- 1980-04-02 DD DD80220176A patent/DD150256A5/de not_active IP Right Cessation
- 1980-04-02 HU HU8080795A patent/HU181089B/hu not_active IP Right Cessation
- 1980-04-03 CS CS802326A patent/CS228127B2/cs unknown
- 1980-04-03 JP JP4343980A patent/JPS55135599A/ja active Granted
- 1980-04-03 CS CS817834A patent/CS244665B2/cs unknown
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0100217A2 (de) * | 1982-07-23 | 1984-02-08 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | Verfahren zur quantitativen Bestimmung eines mit Oxidase behandelten Substrates |
EP0100217A3 (en) * | 1982-07-23 | 1985-04-10 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | Process for quantitative determination of substrate treated with oxidase |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
FI70727C (fi) | 1986-10-06 |
HU181089B (en) | 1983-05-30 |
YU44100B (en) | 1990-02-28 |
AU515851B2 (en) | 1981-05-07 |
JPS5646800B2 (de) | 1981-11-05 |
JPS55135599A (en) | 1980-10-22 |
FI70727B (fi) | 1986-06-26 |
ATE4126T1 (de) | 1983-07-15 |
CS783481A2 (en) | 1985-09-17 |
DE3064075D1 (en) | 1983-08-18 |
FI801025A (fi) | 1980-10-05 |
CS244665B2 (en) | 1986-08-14 |
US4517287A (en) | 1985-05-14 |
DE2913553C2 (de) | 1981-09-17 |
CA1152871A (en) | 1983-08-30 |
EP0016947A1 (de) | 1980-10-15 |
YU91780A (en) | 1984-04-30 |
AU5677980A (en) | 1980-10-09 |
CS228127B2 (en) | 1984-05-14 |
DD150256A5 (de) | 1981-08-19 |
EP0016947B1 (de) | 1983-07-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0016947B1 (de) | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten | |
EP0186134B1 (de) | Mittel zur Verbesserung des Nachweises Wasserstoffperoxid liefernder Oxidase-Reaktionen und seine Verwendung | |
EP0037056A1 (de) | Verfahren und diagnostische Mittel zum Nachweis von Redox-Reaktionen | |
EP0114267A1 (de) | Testsystem und Verfahren zur Bestimmung von NAD(P)H | |
DE2818603A1 (de) | Kinetisches glucosereagens und dessen verwendung in einem kinetischen nachweisverfahren | |
DE2653537C3 (de) | Verfahren und Mittel zur Bestimmung von Hydroperoxiden | |
CH622555A5 (de) | ||
DE2237940C3 (de) | Verfahren zur quantitativen Bestimmung von Harnsäure | |
DE3125667C2 (de) | Verfahren und Mittel zum Nachweis von Wasserstoffperoxid | |
DE2509156A1 (de) | Verfahren zur bestimmung der cholesteringesamtmenge in einer serumprobe und einzelreagens zur durchfuehrung dieses verfahrens | |
DE2459087C3 (de) | Verfahren und Reagenz zur Bestimmung von Serumtriglyceriden | |
DE2224132B1 (de) | Verfahren und reagenz zur bestimmung von cholesterin | |
DE3103612C2 (de) | Verfahren und Reagens zur direkten quantitativen Bestimmung von Chlorid im Blutserum | |
EP0048347B1 (de) | Verfahren und Reagens zur Bestimmung von Glycerin | |
DE2612725C3 (de) | Verfahren und Reagenz zur Bestimmung von Cholesterin | |
DE69534877T2 (de) | Verfahren zur bestimmung von bilirubin | |
DE4321807A1 (de) | Verfahren zur quantitativen Bestimmung von 1,5-Anhydroglucitol | |
DE4306278C2 (de) | Verfahren zur quantitativen Analyse von 1,5-Anhydroglucitol | |
EP0437254B1 (de) | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Creatinin | |
DE2729125A1 (de) | Enzymatisches reagens und dessen verwendung in einem verfahren zur erhoehung der empfindlichkeit von enzymatischen substratanlaysen unter verwendung von sauerstoffbestimmungsanalysatoren | |
DE3900755C2 (de) | ||
CH643661A5 (de) | Verfahren und reagens zur bestimmung von harnsaeure. | |
DE3114935C2 (de) | Verfahren zur Bestimmung von Wasserstoffperoxid | |
DE3117952C2 (de) | ||
DE2440011C2 (de) | Verfahren und Reagenz zur enzymkinetischen Konzentrationsbestimmung eines Substrates |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |