DE3042860A1 - Kollagenpraeparate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung in der human- und veterinaermedizin - Google Patents

Kollagenpraeparate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung in der human- und veterinaermedizin

Info

Publication number
DE3042860A1
DE3042860A1 DE19803042860 DE3042860A DE3042860A1 DE 3042860 A1 DE3042860 A1 DE 3042860A1 DE 19803042860 DE19803042860 DE 19803042860 DE 3042860 A DE3042860 A DE 3042860A DE 3042860 A1 DE3042860 A1 DE 3042860A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
collagen
heat treatment
preparations
aqueous
proteolysis
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
DE19803042860
Other languages
English (en)
Inventor
Antrag Auf Nichtnennung
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Heyl Chemisch-Pharmazeutische Fabrik & Co Kg GmbH
Original Assignee
Heyl & Co Chemisch-Pharmazeutische Fabrik 1000 Berlin
Heyl and Co Chemisch-Pharmazeutische Fabrik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Heyl & Co Chemisch-Pharmazeutische Fabrik 1000 Berlin, Heyl and Co Chemisch-Pharmazeutische Fabrik filed Critical Heyl & Co Chemisch-Pharmazeutische Fabrik 1000 Berlin
Priority to DE19803042860 priority Critical patent/DE3042860A1/de
Priority to EP81109375A priority patent/EP0052288B1/de
Priority to AT81109375T priority patent/ATE19924T1/de
Priority to DE8181109375T priority patent/DE3174731D1/de
Priority to US06/319,882 priority patent/US4597762A/en
Priority to JP56182164A priority patent/JPS57168920A/ja
Publication of DE3042860A1 publication Critical patent/DE3042860A1/de
Withdrawn legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3683Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix subjected to a specific treatment prior to implantation, e.g. decellularising, demineralising, grinding, cellular disruption/non-collagenous protein removal, anti-calcification, crosslinking, supercritical fluid extraction, enzyme treatment
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23JPROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
    • A23J3/00Working-up of proteins for foodstuffs
    • A23J3/04Animal proteins
    • A23J3/06Gelatine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23JPROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
    • A23J3/00Working-up of proteins for foodstuffs
    • A23J3/30Working-up of proteins for foodstuffs by hydrolysis
    • A23J3/32Working-up of proteins for foodstuffs by hydrolysis using chemical agents
    • A23J3/34Working-up of proteins for foodstuffs by hydrolysis using chemical agents using enzymes
    • A23J3/341Working-up of proteins for foodstuffs by hydrolysis using chemical agents using enzymes of animal proteins
    • A23J3/342Working-up of proteins for foodstuffs by hydrolysis using chemical agents using enzymes of animal proteins of collagen; of gelatin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L15/00Chemical aspects of, or use of materials for, bandages, dressings or absorbent pads
    • A61L15/16Bandages, dressings or absorbent pads for physiological fluids such as urine or blood, e.g. sanitary towels, tampons
    • A61L15/40Bandages, dressings or absorbent pads for physiological fluids such as urine or blood, e.g. sanitary towels, tampons containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. plant or animal extracts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/14Macromolecular materials
    • A61L27/22Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
    • A61L27/24Collagen
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/78Connective tissue peptides, e.g. collagen, elastin, laminin, fibronectin, vitronectin, cold insoluble globulin [CIG]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61FFILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2310/00Prostheses classified in A61F2/28 or A61F2/30 - A61F2/44 being constructed from or coated with a particular material
    • A61F2310/00005The prosthesis being constructed from a particular material
    • A61F2310/00365Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2430/00Materials or treatment for tissue regeneration
    • A61L2430/40Preparation and treatment of biological tissue for implantation, e.g. decellularisation, cross-linking

Description

PATENTANWÄLTE
J. REITSTÖTTER
PROF. DR. DR. DIPL. ING.
W. BUNTE (1ΘΒ8-1Θ7Θ) DR. ING.
W. KINZBBACH
DR. PHIL. DIPL. CHBM.
K. P. HÖLLER
DR. RKR. NAT. DIPU CHBM.
TELEFON! (OSO) a7 0BB3 TELEXl B216208 18AH D
BAUERSTRASSB 22, 80OO MÜNCHEN 40
München, 13. November 1980 M/21 222
HEYL & CO.
Chem.-Pharm.Fabrik
Goerzaliee 253
1000 Berlin 37
Kollagenpräparate, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung in der Human- und Veterinärmedizin
Μ/21 222
Die Erfindung betrifft Kollagenpräparate, ein Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung in der Human- und Veterinärmedizin.
Die Häufigkeit und Bedeutung von Hautdefekten vor allem nach Verbrennungs- und anderen Unfal 1verletzungen sind bekannt. Zu ihrer Versorgung diente bisher neben der übrigen Wundbehandlung das autologe Hautpräparat. Seiner Verwendung sind jedoch von der Defektgröße her Grenzen gesetzt. Es hat deshalb nicht an Versuchen gefehlt Kollagene, die einen Hauptbestandteil von \
Lederhaut (Corium), Bindegewebe, Sehnen, Fascien und Bändern bilden, in der Medizin z.B. als temporären Hautersatz, für Gefäßprothesen usw. anzuwenden (vgl. z.B. Umschau 6£, 1966, 230). über bisherige Bemühungen, ein geeignetes Hautersatzmaterial zu entwickeln, gibt z.B. die Monographie "Experimental Skin Grafts and Transplantation Immunity" von D.L.Ballantyne und J.M.Converse, Springer-Verlag Berlin 1979 Auskunft. Für Blutgefäßprothesen werden seit einigen Jahren modifizierte Blutgefäße vom Rind (sogenannte "Bovine heterograft") verwendet (vgl. z.B. Rosenberg, Surg. Forum ]_, 1956, 243). Solche Prothesen haben die Erwartungen jedoch noch nicht erfüllts weil sich durch übertritt von Stoffen aus dem durchströmenden Blut irreversible Wandveränderungen entwickeln. Sie werden heute kaum mehr verwendet.
über die Herstellung und den Einsatz von Kollagenpräparaten unter Erhalt ihrer biologischen Textur für andere medizinische \ Anwendungen ist nichts bekannt. Die bisherige Verwendung von j Kollagenpräparaten in der Medizin beschränkt sich auf Kollagenschwamm bzw. Kollagenvlies. Die biologische Textur des Kollagens
ist in diesen Fällen zerstört, was zur Veränderung seiner !
physikalischen aber auch einiger biologischer Eigenschaften j
führt (vgl. z.B. M. Chvapil , Collagen Sponge: Theory and !
Practice of Medical Applications, J .Biomed.Mater .Res . , JJ_, ~\
1977, 721 bis 741). |
COf5Y
W O M /.
Μ/21 222
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es, unter Erhaltung der erwünschten biologischen Eigenschaften (Keimabwehr, Anregung der Grundsubstanzproduktion von Zellen, Granulationsförderung, Blutstillung usw.) ein modifiziertes Kollagen bereitzustellen, und seine physikalischen Eigenschaften dem jeweiligen VerwendungszwecK anzupassen.
Diese Aufgabe wird mit dem erfindungsgemäßen Verfahren zur Herstellung eines Kollagenpräparates gelöst, das dadurch gekennzeichnet ist, daß man tierische KoIlagensysteme proteolysiert, einer Quervernetzung unterwirft, reduziert und sterilisiert.
Als Ausgangsmaterial für das erfindungsgemäße Verfahren werden ; Kollagensysteme, vorzugsweise von der Ziege, insbesondere vom Rind und;Ri derfoeten, verwendet, die aus mindestens etwa 90 % Kollagen vom ;
Typ I -— '
bestehen. Die Art der eingesetzten Kollagensysteme richtet sich dabei insbesondere nach dem beabsichtigten Verwendungszweck:
Zur Versorgung von Körperoberflächen (Haut)-defekten (hetero- : loges Hauttransplantat, Wundpflaster, Tupfer), z.B. nach Ver- ; brennungen und anderen Unfal!Verletzungen, werden Häute in ihrer biologischen Textur eingesetzt,
Zur Förderung der Osteoneogenese nach Frakturen mit und ohne Substan; verlust werden Fascien unterschiedlicher Stärke und vor allem -I das Corium (Lederhaut) insbesondere von erwachsenen Rindern,
.._. ohne Epidermisdecke, als solches oder auch in
dünne Schichten gespalten, verwendet.
Für Bandersatzpräparate (heterologer Bandersatz bei Rupturen : von Gewebsbändern) werden strangförmige Formationen aus Sehnen;, wie z.B. Beugesehnen von Rindern verwendet.
OFUGiNiAL
M/21 222
Zur Herstellung elastischer Schläuche für defekte schlauchförmige Hohlorgane (Blutgefäße, Gallengang usw.) dienen vorzugsweise röhrenförmige Formationen aus schlauchförmigen Hohlorganen, wie aus Arterien gewonnene Kollagenschläuche, und zum Schlauch · vernähte Fascien, während
für den Sehnenscheidenersatz praktisch alle Kollagenformationen, wie die oben genannten, verwendet werden können. :
Dicke Kollagensysteme, wie z.B. strangförmige Formationen aus
Sehnen, werden vorzugsweise vor dem eigentlichen Verfahren einer! Proteolyse unterworfen und dann manuell parallel zur Faserrichtung durch Längsspaltung in die gewünschte Dicke gebracht.
So wird z.B. der etwa mittelfingerstarke und 30 bis 40 cm lange
verwendbare Teil der Beugesehnen von Rindern vorzugsweise zunächst als Ganzes einer 24-stündigen Proteolyse unterworfen,
dann manuell parallel zur Faserrichtung durch Längsspaltung das
gewünschte Bandkaliber (z.B. mit einer Stärke von ca. 2,5 mm
und darüber) gewonnen, woran sich eine nachfolgende 24-stündige
Proteolyse anschließt. Ein Ende des Bandes wird danach vorzugsweise geknotet und dann den weiteren Verfahrensschritten unterr ι worfen. ;
Werden behaarte Häute als Ausgangsmaterial verwendet, so erfolgt vor dem eigentlichen Verfahren eine Enthaarung, wobei man zweck-mäßigerweise nach dem aus der Gerberei-Technik bekannten j "Äschern" arbeitet. Vorzugsweise werden dazu die Häute in ge- j löschten Kalk eingelegt, dem pro kg 1 g Naferfumsulfit zugesetzt wird. Nach einer Verweildauer von 6 bis 10 Tagen werden
die Häute gewässert, anschließend für 3 Stunden in 1 %-ige
Essigsäure eingelegt und dann nochmals 24 Stunden gewässert.
ORIGINAL INSPECTED
042860
Zweckmäßigerweise sollte das Ausgangsmaterial unmittelbar nach der Tötung (Schlachtung) der Tiere gewonnen werden. Wenn sich daran nicht sofort das erfindungsgemäße Präparationsverfanren anschließt, so ist eine Konservierung der Konagensysteme durch Einfrieren und Lagerung bei Tiefkühltemperaturen nahezu praktisch unbegrenzt möglich. Eine solche Konservierung ist auch noch nach einer Enthaarung möglich.
Das erfindungsgemäße Verfahren ist für alle genannten Ausgangsmaterialien gleichermaßen gut geeignet. Es kann aber zweckmäßig sein, je nach der Art des eingesetzten Ausgangsmaterials in einer oder mehreren der Verfahrensstufen verschiedene Reaktionszeiten, Reaktionstemperaturen und/oder Konzentrationen einzuhalten.
Die Proteolyse wird insbesondere mit den in der Lederindustrie zur Weiche und Beize eingesetzten Proteasen und unter den dafür üblichen Bedingungen durchgeführt. Als besonders zweckmäßig habe sich dabei die Proteolyse in Gegenwart von Ficin und L-Cystein erwiesen, wobei man vorzugsweise in einer wäßrigen Lösung bei einem pH-Wert von ca. 5,5 bis ca. 6,5, und insbesondere 6, und bei 30 bis 50 0C, insbesondere bei 37 0C arbeitet. Die Einstellung des pH-Wertes erfolgt dabei zweckmäßigerweise durch Zusatz von 1N Trinatriumcitratpuffer. Die Reaktionszeit beträgt, abhängig von der Dicke der Kollagensysteme, im allgemeinen 8 bis 24 Stunden.
Di- oder polyfunktionelle organische Verbindungen sind zur Vernetzung von Peptidstrukturen befähigte organische Verbindungen, wie insbesondere di- oder polyfunktionelle Aldehyde, wie z.B. Alkandiale mit 2 bis 10 und insbesondere 4 bis 7 Kohlenstoffatomen, aber auch Formaldehyd (Dihydroxymethylen). Als besonders zweckmäßig hat sich dabei aufgrund seines hohen Penetrationsvermögens und dem hohen Diffusionsgrad Glutardialdehyd erwiesen. Die Modifizierung des Vernetzungsgrades des Kollagens und damit die Steifigkeit des Materials ist stark von der Konzentration des Vernetzungsmittels abhängig. Insbesondere die
M/21 222
Herstellung von Material für Hohlorgane (Blutgefäße usw.) erfordert ein besonders weiches, flexibles Material. Die Konzentration (Angaben beziehen sich auf Glutardialdehyd) liegen im allgemeinen zwischen 1 und 10 Gew.-%, wobei die bevorzugten Konzentrationen bei Häuten mit biologischer Textur, Fascien und Corium 3 bis 5 %, für strangförmige Formationen aus Sehnen 5 bis 10 %, für röhrenförmige Formationen aus schlauchförmigen Hohlorganen 1 bis 3 % und für die Herstellung eines heterologen Sehnenscheidenersatzes bei 5 bis 8 % liegt. Im allgemeinen wird das Material in eine wäßrige Lösung des Aldehyds eingebracht und darin mehrere Tage, zweckmäßigerweise ca. 7 Tage, bei Raumtemperatur belassen.
Die Reduktion wird vorzugsweise mit einem in der Lederindustrie verwendeten reduzierenden Bleichmittel unter den dafür üblichen Bedingungen durchgeführt, insbesondere aber mit einem Alkaliborhydrid, wie z.B. Natriumborhydrid. Durch diese Reduktion wird eine Unlöslichkeit des Kollagens in saurem und alkalischem Milieu erreicht und gleichzeitig die durch den Quervernetzungsprozeß eingetretene Starre des Materials weitgehend aufgehoben. Das Material wird geschmeidiger unter Beibehaltung seiner Reißfestigkeit. Der damit außerdem verbundene zusätzliche Bleich- · effekt ist, insbesondere für die Anwendung als Wundpflaster, sehr vorteilhaft. ."/ Die Reduktion mit Alkaliborhydrid ; erfolgt in wäßrigem Medium. Man kann dabei im allgemeinen soviel! Natriumborhydrid anwenden, wie dies zur Erreichung einer gleich-! mäßig weiß gebleichten Oberfläche erforderlich ist; in der Regel arbeitet man mit 0,5 bis 1,5 g Natriumborhydrid/Liter Wasser. j Zur Reduktion wird das Material in die wäßrige Natriumborhydrid-! lösung eingebracht und darin mehrere Stunden, in der Regel 4 bis: 24 Stunden, bei Raumtemperatur belassen. ' j
.. ι Die Sterilisation kann nach einer der zur Sterilisation von j
chirurgischem Material verwendeten üblichen Methoden durchge- \
COPY
M/21 222 -
flihrt werden; als besonders geeignet, insbesondere auch für eine nachfolgende .gebrauchsfähige Lagerung, hat sich eine Sterilisation mit wäßrigem Alkohol in Gegenwart geringer Mengen an Propylenoxid, wie z.B. Einlagern des Materials in 5U %-iges wäßriges Äthanol, das 1 Gew.-% Propylenoxid enthält, während cn.10 Tagen erwiesen. Das auf diese Weise sterilisierte Material wird anschließend in eine sterile, gepufferte Kochsalzlösung (BSS) eingelegt, aus der man den Rest der Sterilisationslösung abdampft (z.B. im Thermostat während 3 bis 8 Stunden). In diesem ; Zustand ist das Material lagerfähig und gebrauchsfertig. Zur j Vermeidung einer Ablagerung von Calciumsalzen soll die Koch- | salzlösung frei sein von Calciumionen. Wird im Hinblick auf ; die spätere Anwendung eine Lagerung in einer sterilen Vakuumverpackung, also in trockener Form, oder in einer nativen Kollaf genlösung bevorzugt, so kann sich an die Sterilisation eine ι Lyophilisation (Gefriertrocknung) oder auch eine Trocknung an j der Luft anschließen. Insbesondere bei Hautersatzpräparaten ist eine Aufbewahrung in einer nativen Kollagenlösung zweck- :
mäßig, weil sie ihrerseits den Heilprozeß günstig beeinflußt. ■ Zwischen den einzelnen Verfahrensstufen wird das Material zur Entfernung der Reagentien einer Wässerung unterzogen. Im all- : gemeinen wird das Material dazu mehrere Stunden, insbesondere I 24 Stunden, fließend gewässert. |
JUm zu verhindern, daß trotz Wässerung die Proteolyse durch nicht vollständig entfernte Proteasereste in geringem Umfang ' '. weitergeht, ist es sehr zweckmäßig, nach dem Verfahrensschritt der Proteolyse eine Behandlung mit Natriumchlorit zwischenzuschalten, wordurch die Proteolyse gestoppt wird. Vorzugsweise wird dazu eine verdünnte wäßrige Natriumchloritlösung, z.B. : eine 1 %-ige Lösung, verwendet.
Als besonders zweckmäßig hat sich die folgende Verfahrensaus- :
führung erwiesen, nach der man das Kollagenaus- — —
gangsmaterial 8 bis 24 Stunden (in Abhängigkeit von seiner Stärke) mit einer wäßrigen Lösung, die 10 g Ficin/Liter und 1 g L-Cystein/Liter enthält, bei einem pH-Wert von 6 und einer ! ' Temperatur von 37°C behandelt, danach 24 Stunden mit einer · 1 %-igen wäßrigen Natriumchloritlösung, 7 Tage mit einer 1 bis 10 %-igen wäßrigen Glutardialdehydlösung (je nach Ausgangsmaterial), 24 Stunden mit einer wäßrigen Natriumborhydridlösung behandelt und anschließend sterilisiert, wobei zwischen jedem
COPY
ORIGINAL INSPECTED
M/21 222
einzelnen Verfahrensschritt eine 24-stündige Wässerung mit fließendem Wasser erfolgt.
Das nach dem Verfahrensschritt der Reduktion erhaltene Kollagenmaterial kann vor der Sterilisation zur Verbesserung der Elastizität einer Hitzebehandlung in mit Wasserdampf gesättigter Luft unterworfen werden, wobei man in der Regel einige Minuten bei 80 bis maximal 1000C und einem Druck von 1,5 atü arbeitet. Die Hitzebehandlung kann in einem üblichen Dampfsterilisationsgefäß durchgeführt werden.
Zur Erzeugung glatter, geschlossener Oberflächen kann das ; Kollagenmaterial in einem zweiten Teil dieser Hitzebehandlung mit der Oberfläche eines gegen das Material inerten, glatten, -, festen Gegenstandes, wie z.B. Glas, in Kontakt gebracht werden,: der auf ca. 80 bis maximal 1000C aufgeheizt ist. Gut geeignet i sind dafür auch silikonbeschichtete Oberflächen.Diese Heißkontak1 tierung dauert . in der Regel einige Minuten, z.B. 1 bis 15 Minu-' ten. 'j
Die Heißkontaktierung ist insbesondere für die Abdichtung der ; inneren Oberflächen von Hohlorganen, wie z.B. von Blutgefäßen, von großer Bedeutung, da auf diese Weise völlig dichte und glatte innere Oberflächen erzielt werden, im Unterschied zu den bisher verwendeten modifizierten Blutgefäßen ("Bovine heterograft") nach dem Stand der Technik.
Nach diesem Verfahren lassen sich Gefäße mit einem bestimmten Durchmesser relativ leicht dadurch herstellen, daß man das Kollagenmaterial (z.B. aus Arterien gewonnene Schläuche oder zum Schlauch vernähte Fascienpräparate) auf einen stabförmigen Träger, z.B. einen silikonbeschichteten Glasstab vor- ■ gegebener Stärke aufzieht und danach der Heißbehandlung unterwirft. Dabei schrumpft das Ausgangsmaterial auf dem Glasstab
Μ/21- 222
und erhält auf seiner ganzen Länge gleichmäßig den vorgegebenen Durchmesser. Auf diese Weise können durch geeignete Wahl des Durchmessers des Trägermaterials die Durchmesser der Gefäße eingestellt werden. Es wird außerdem die Elastizität vor. Gummischläuchen bei absoluter Dichte erreicht.
Auf die gleiche Weise können auch Material stücke ohne Vernähung oder andere mechanische Hilfsmittel durch Heißbehandlung völlig dicht verschweißt werden, wobei die Stoßstellen gewissermaßen miteinander verschmelzen. Dies ist insbesondere sehr wichtig bei der Verbindung von Gefäßstücken, da die natürlichen Quellen, nämlich die isolierten Gefäßstücke, nur eine begrenzte Länge haben und bisher längere Gefäßstücke nur durch Aneinan.dernähen von kürzeren Stücken erhältlich waren. Dieser Vernähungsprozeß kann durch den Verschweißungsprozeß ersetzt werden, was ins- ; besondere den Vorteil hat, daß an den Verschweißungsstellen keine Undichtigkeiten auftreten.
Die nach dem erfindungsgemäßen Verfahren erhaltenen Kollagen- ' Präparate eignen sich hervorragend für die chirurgische Versorgung von defekten Körperoberflächen, von Frakturen, Rupturen, defekten Sehnenscheiden und defekten Hohlorganen. Gegenstand der Erfindung ist deshalb auch die Verwendung der nach dem erfindungsgemäßen Verfahren erhaltenen Kollagenpräparate.
Die erfindungsgemäß hergestellten Präparate werden vom Empfänger nicht nur toleriert, sondern integriert. Körperflächenabdeckungen werden kurzfristig integriert und nach erfolgter Granulation abgestoßen. Insbesondere hat sich gezeigt, daß der von Rindern und Ziegen erhaltene Kollagentyp für den Menschen unbedenklich ist» weil seine Aminosäuresequenz weitgehend derjenigen des menschlichen Kollagens entspricht.
Die nach dem Verfahren aus Haut von Rindern und Ziegen erhaltenen flächigen Präparate können in der Gesamtgröße der entspre-
M/21 222 - „laTierhaut hergestellt werden. Im Tierexperiment zeigen Präparate mit einer erfindungsgemäß künstlich verschlossenen Oberfläche ähnlich gute Resultate wie solche, bei denen die geschlossene Epidermis erhalten bleibt. Von der Präparation her sind die letztgenannten bevorzugt. Die flächigen Präparate können am Operationstisch kurz vor der Anwendung mit der Schere in die passende Form und Größe gebracht werden. Die Applikation erfolgt mit fortlaufender Naht, wobei exakt auf Stoß genäht wird. Die Fäden werden nach 14 Tagen gezogen. Die Abstoßung des Implantats beginnt mit einem Abheben der Ränder nach 18 bis 20 Tagen und wird zwischen 3 und 7 Wochen beendet. Erfin- I dungsgemäß hergestellte Coriumpräparate ohne Epidermisdecke können in jeder beliebigen Größe zu resorbierbaren bzw. einbaufähigen Wundpflastern, Tupfern und Tampons verarbeitet werden. Tupfer und Tampons werden nach Lyophilisierung oder nach Trocknung in atmosphärischer Luft vorzugsweise trocken steril verpackt.
Präparate zur Förderung der Osteoneogenese nach Frakturen mit I und ohne Substanzverlust werden nach dem in der Chirurgie ; üblichen Osteosyntheseverfahren appliziert unter zusätzlicher Anwendung von Kollagenbandagen über der Fraktur. Die Bandagen werden aus Fascienpraparaten gewonnen, wie Binden gewickelt und wenn möglich wie ein Wundverband angebracht, andernfalls durch eine Naht verschlossenA
Präparate zum Sehnenscheidenersatz können praktisch aus allen Kollagenformationen gewonnen werden. Entscheidend ist die Erzielung einer glatten Oberfläche für die Innenseite der Prothese. Dies wird bei der Verwendung von Blutgefäßen als Ausgangsmaterial (beim Rind nahezu alle Kaliber von wenigen mm Durchmesser bis zur Unterarmstärke) schon durch die Proteolyse erreicht. Der erfindungsgemäß hergestellte Kollagenschlauch kann bei Sehnenrupturen auf einen Sehnenstumpf vor der Sehnen-
'S,
M/21 222 - *< -
naht gestülpt und anschließend in die endgültige Position gebracht werden. Längsspaltung des Schlauchs vor der Applikation und anschließend dichtes Vernähen mit evertierter Naht führt ebenfalls zu guten Ergebnissen.

Claims (28)

Μ/21 222 Patentansprüche
1. Kollagenpräparate aus Kollagen I, dadurch erhältlich, daß man tierische Kollagensysteme unter Bewahrung ihrer biologischen Textur proteolysiert, vernetzt, reduziert und schließlich sterilisiert.
2. Verfahren zur Herstellung eines Kollagenpräparates, dadurch gekennzeichnet, daß man tierische Kollagensysteme proteolysiert, einerQuervernetzung unterwirft, reduziert und sterilisiert.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man j als tierisches Kollagensystem Kollagensysteme von Ziege und Rind verwendet.
4. Verfahren nach Anspruch 2 oder 3, dadurch gekennzeichnet, I daß man als tierische Kollagensysteme Häute in ihrer biologi-jsehen Textur, Corium, strangförmige Formationen aus Sehnen, röhrenförmige Formationen aus schlauchförmigen Hohlorganen ; und Fascien verwendet.
5. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 4, dadurch gekenn- : zeichnet, daß man dicke Kollagensysteme zunächst einer Pro- \ teolyse unterwirft und dann durch manuelle Spaltung in Faserrichtung in die gewünschte Dicke bringt und das so erhaltene Material dann proteolysiert, einer Quervernetzung unterwirft reduziert und sterilisiert.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß man behaarte Häute vor der Proteolyse durch Äschern enthaart.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß man das Kollagenmaterial vor der Sterilisation einer Hitzebehandlung in mit Wasserdampf gesättigter Luft unterzieht.
ORIGINAL INSPECTED
M/21 222 - 2 -
8. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch oekennzeichnet, daß das Kollagenmaterial während der zweiten Hälfte der Hitzebehandlung in Kontakt mit einer inerten, glatten und festen Oberfläche steht.
9. Verfahren nach Anspruch 7 oder 8, dadurch gekennzeichnet, daß man die Hitzebehandlung bei 80 bis 1000C und 1,5 atü durchführt.
10· Verfahren nach einem der Ansprüche 7 bis 9, dadurch gekenn-j zeichnet, daß man die Hitzebehandlung während der Dauer i von einigen Minuten durchführt. j
11. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 10, dadurch gekenn-'
zeichnet, daß man die Proteolyse in Gegenwart von Ficin und L-Cystein durchführt. ί
12. Verfahren nach Anspruch 1.1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Proteolyse in einem wäßrigen Medium bei einem pH-Wert von 6 und einer Temperatur von 30 bis 500C durchführt.
13. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 12, dadurch gekennr zeichnet, daß man die Quervernetzung mit einer oder mehreren di- und/oder polyfunktionellen organischen Verbindungen ! durchführt. i
14. Verfahren nach Anspruch 13, dadurch gekennzeichnet, daß man'
als di- und/oder polyfunktionelIe Verbindungen di- und/oder polyfunktionelIe Aldehyde verwendet. '
15. Verfahren nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet, daß man'
als Aldehyde Alkandiale mit 2 bis 7, insbesondere 4 bis 7 j Kohlenstoffatomen verwendet.
ORIGINAL INSPECTED
M/21 222 - 3 -
16. Verfahren nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß man als Aldehyd Glutardialdehyd verwendet.
17. Verfahren nach Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet, daß man eine 1 bis 10 %-ige wäßrige Glutardialdehydlösung verwendet.
18. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 17, dadurch gekennzeichnet, daß man die Reduktion mit Alkaliborhydrid durchführt.
19. Verfahren nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, daß man die Reduktion mit Natriumborhydrid in wäßrigem Medium durchführt.
20. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 19, dadurch gekennzeichnet, daß man nach der Proteolyse eine Behandlung mit verdünnter wäßriger Natriumchlorit-Lösung zwischenschaltet.
21. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 20, dadurch gekennzeichnet, daß man zwischen den einzelnen Verfahrensstufen eine Wässerung zwischenschaltet.
?2. Verfahren nach Anspruch 21, dadurch gekennzeichnet, daß man mit fließendem Wasser wässert.
23. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 22, dadurch gekennzeichnet, daß man das Kollagenausgangsmaterial 8 bis 24 Stunden mit einer wäßrigen Lösung, die 10 g Ficin/Liter und 1 g L-Cystein/Liter enthält, bei einem pH-Wert von 6 und einer Temperatur von 37 0C behandelt, dann 24 Stunden mit einer 1 %-igen wäßrigen Natriumchloritlösung, 7 Tage mit einer 1 bis 10 %-igen wäßrigen Glutardial dehydlösung, 24 Stunden mit einer wäßrigen Natriumborhydridlösung behandelt und anschließend sterilisiert, wobei zwischen jedem einzelnen Verfahrensschritt eine 24-stündige Wässerung mit fließendem Wasser erfolgt.
Μ/21 222 - 4 -
24. Verfahren nach einem der Ansprüche 8 bis 23, dadurch gekennzeichnet, daß man schlauchförmige Hohlorgane mit einem bestimmten Durchmesser dadurch herstellt, daß man das Kollagenmaterial nach 'der Reduktion auf ein stabförmiges Trägermaterial der gewünschten Stärke aufgibt und einer Hitzebehandlung in mit Wasserdampf gesättigter Luft unterwirft.
25. Verfahren nach Anspruch 24, dadurch gekennzeichnet, daß man als stabförmiges Trägermaterial einen silikonbeschichteten Glasstab verwendet.
26. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 25, dadurch gekennzeichnet, daß man aus zwei oder mehreren Stücken zusammengesetzte Kollagenpräparate durch "Verschweißen" der Stücke mittels Hitzebehandlung in mit Wasserdampf gesättigter Luft herstellt.
27. Die nach dem Verfahren der Ansprüche 2 bis 26 hergestellten KoIlagenpräparate.
28. Verwendung der KoIlagenpräparate nach Anspruch 1 und 27 für die chirurgische Versorgung von defekten Körperoberflächen, von Frakturen, Rupturen, defekten Sehnenscheiden und defekten Hohlorganen.
ORIGINAL INSPECTED
DE19803042860 1980-11-13 1980-11-13 Kollagenpraeparate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung in der human- und veterinaermedizin Withdrawn DE3042860A1 (de)

Priority Applications (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19803042860 DE3042860A1 (de) 1980-11-13 1980-11-13 Kollagenpraeparate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung in der human- und veterinaermedizin
EP81109375A EP0052288B1 (de) 1980-11-13 1981-10-30 Kollagenpräparate, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung in der Human- und Veterinärmedizin
AT81109375T ATE19924T1 (de) 1980-11-13 1981-10-30 Kollagenpraeparate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung in der humanund veterinaermedizin.
DE8181109375T DE3174731D1 (en) 1980-11-13 1981-10-30 Collagen preparations, process for their preparation and their use in human and veterinary medicine
US06/319,882 US4597762A (en) 1980-11-13 1981-11-10 Collagen preparation
JP56182164A JPS57168920A (en) 1980-11-13 1981-11-13 Collagen blend, manufacture and use

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19803042860 DE3042860A1 (de) 1980-11-13 1980-11-13 Kollagenpraeparate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung in der human- und veterinaermedizin

Publications (1)

Publication Number Publication Date
DE3042860A1 true DE3042860A1 (de) 1982-06-09

Family

ID=6116702

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE19803042860 Withdrawn DE3042860A1 (de) 1980-11-13 1980-11-13 Kollagenpraeparate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung in der human- und veterinaermedizin
DE8181109375T Expired DE3174731D1 (en) 1980-11-13 1981-10-30 Collagen preparations, process for their preparation and their use in human and veterinary medicine

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE8181109375T Expired DE3174731D1 (en) 1980-11-13 1981-10-30 Collagen preparations, process for their preparation and their use in human and veterinary medicine

Country Status (5)

Country Link
US (1) US4597762A (de)
EP (1) EP0052288B1 (de)
JP (1) JPS57168920A (de)
AT (1) ATE19924T1 (de)
DE (2) DE3042860A1 (de)

Families Citing this family (91)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2530955B1 (fr) * 1982-07-30 1987-11-13 Hecmati Michel Implant anti-ride et son procede de fabrication
WO1985001651A1 (en) * 1983-10-20 1985-04-25 Vettivetpillai Ketharanathan Biomaterial
CA1259914A (en) * 1984-07-06 1989-09-26 Donald G. Wallace Methods of bone repair using collagen
CA1260391A (en) * 1985-03-28 1989-09-26 Karl A. Piez Xenogeneic collagen/mineral preparations in bone repair
JPH0679616B2 (ja) * 1985-07-25 1994-10-12 株式会社高研 架橋化医用品
US4772284A (en) * 1986-03-27 1988-09-20 Collagenix Corporation Breast prosthesis with improved biocompatibility and method of making the same
US4865850A (en) * 1986-09-08 1989-09-12 See/Shell Biotechnology, Inc. Dietary fat reduction
US5350583A (en) * 1988-03-09 1994-09-27 Terumo Kabushiki Kaisha Cell-penetrable medical material and artificial skin
JP2610471B2 (ja) * 1988-03-09 1997-05-14 テルモ 株式会社 細胞侵入性医用材料およびその製造法
DE68909933T2 (de) * 1988-03-09 1994-03-03 Terumo Corp Für zellen eindringbares medizinisches material und kunsthaut.
AU632273B2 (en) * 1988-03-09 1992-12-24 Terumo Kabushiki Kaisha Medical material permitting cells to enter thereinto and artificial skin
JPH0669486B2 (ja) * 1988-12-09 1994-09-07 株式会社サンギ 生物学的機能を有するコラーゲン膜の製造法
US5026381A (en) * 1989-04-20 1991-06-25 Colla-Tec, Incorporated Multi-layered, semi-permeable conduit for nerve regeneration comprised of type 1 collagen, its method of manufacture and a method of nerve regeneration using said conduit
US5100429A (en) * 1989-04-28 1992-03-31 C. R. Bard, Inc. Endovascular stent and delivery system
US6004261A (en) * 1989-04-28 1999-12-21 C. R. Bard, Inc. Formed-in-place endovascular stent and delivery system
US5091192A (en) * 1990-01-16 1992-02-25 Natur-All Systems, Inc. Bile salts permanently bound to insoluble cellulose as a dietary supplement
FR2675048B1 (fr) * 1991-04-12 1995-06-23 Coletica Utilisation de collagene reticule par un agent de reticulation pour la fabrication de fils de collagene destines a constituer un implant pour le comblement de tissus mous et implant ainsi obtenu.
FR2679778B1 (fr) * 1991-08-02 1995-07-07 Coletica Utilisation de collagene reticule par un agent de reticulation pour la fabrication d'une membrane suturable, biocompatible, a resorption lente, ainsi qu'une telle membrane.
US5376376A (en) * 1992-01-13 1994-12-27 Li; Shu-Tung Resorbable vascular wound dressings
JPH0753009B2 (ja) * 1992-01-17 1995-06-05 日本電信電話株式会社 とう道用のケーブル布設ローラ
EP0664699A1 (de) * 1993-08-13 1995-08-02 Vitaphore Corporation Arzneimittelabgabesystem auf der Basis von Hydrogelmikrokugeln
US5487895A (en) * 1993-08-13 1996-01-30 Vitaphore Corporation Method for forming controlled release polymeric substrate
US5676698A (en) * 1993-09-07 1997-10-14 Datascope Investment Corp. Soft tissue implant
US5571216A (en) * 1994-01-19 1996-11-05 The General Hospital Corporation Methods and apparatus for joining collagen-containing materials
US6334872B1 (en) 1994-02-18 2002-01-01 Organogenesis Inc. Method for treating diseased or damaged organs
US5558875A (en) * 1994-06-06 1996-09-24 Wang; Su Method of preparing collagenous tissue
DE69523074T2 (de) 1994-07-29 2002-06-06 Edwards Lifesciences Corp Verfahren zur behandlung von implantierbaren biologischen geweben zur verringerung von verkalkung
US5733337A (en) * 1995-04-07 1998-03-31 Organogenesis, Inc. Tissue repair fabric
US20020095218A1 (en) * 1996-03-12 2002-07-18 Carr Robert M. Tissue repair fabric
US5876444A (en) * 1996-04-01 1999-03-02 Lai; Wen-Fu Reconstituted collagen template and the process to prepare the same
US5782914A (en) * 1996-11-29 1998-07-21 Bio-Vascular, Inc. Method for preparing heterogeneous tissue grafts
US5814328A (en) * 1997-01-13 1998-09-29 Gunasekaran; Subramanian Preparation of collagen using papain and a reducing agent
US5862806A (en) * 1997-10-30 1999-01-26 Mitroflow International, Inc. Borohydride reduction of biological tissues
US6290718B1 (en) 1998-02-02 2001-09-18 Regeneration Technologies, Inc. Luminal graft, stent or conduit made of cortical bone
MXPA00012063A (es) * 1998-06-05 2003-04-22 Organogenesis Inc Protesis de soporte de injerto vascular biodisenadas.
ATE423577T1 (de) * 1998-06-05 2009-03-15 Organogenesis Inc Biologisch modellierte implantierbare prothesen
WO1999063051A2 (en) * 1998-06-05 1999-12-09 Organogenesis Inc. Bioengineered flat sheet graft prostheses
DE69940507D1 (de) * 1998-06-05 2009-04-16 Organogenesis Inc Biotechnisch erzeugte gefässprothese für die implantation
CA2422852C (en) * 2000-09-18 2012-06-26 Organogenesis Inc. Methods for treating a patient using a bioengineered flat sheet graft prostheses
US7303907B2 (en) 2001-01-08 2007-12-04 Health Protection Agency Degradation and detection of TSE infectivity
JP4427252B2 (ja) * 2001-01-08 2010-03-03 ヘルス プロテクション エージェンシー Tse感染力の低下および検出
US20020192731A1 (en) * 2001-04-12 2002-12-19 H. Shih Jason C. Method and composition for sterilizing surgical instruments
US6716225B2 (en) * 2001-08-02 2004-04-06 Collagen Matrix, Inc. Implant devices for nerve repair
US6878168B2 (en) * 2002-01-03 2005-04-12 Edwards Lifesciences Corporation Treatment of bioprosthetic tissues to mitigate post implantation calcification
US8308797B2 (en) 2002-01-04 2012-11-13 Colibri Heart Valve, LLC Percutaneously implantable replacement heart valve device and method of making same
US20050283256A1 (en) * 2004-02-09 2005-12-22 Codman & Shurtleff, Inc. Collagen device and method of preparing the same
CA2518298A1 (fr) * 2005-09-06 2007-03-06 Chaimed Technologies Inc. Polymeres biodegradables, leur preparation et leur usage pour la fabrication de pansements
US7429241B2 (en) * 2005-09-29 2008-09-30 Codman & Shurtleff, Inc. Dural graft and method of preparing the same
GB0603775D0 (en) * 2006-02-24 2006-04-05 Health Prot Agency Infectivity assay
US7491541B2 (en) * 2006-09-21 2009-02-17 Kci Licensing, Inc. Method for quantitation of collagen in tissue
CN101622007A (zh) 2006-10-06 2010-01-06 人类起源公司 天然(端肽)胎盘胶原组合物
US9308068B2 (en) 2007-12-03 2016-04-12 Sofradim Production Implant for parastomal hernia
AU2009201541B2 (en) * 2008-04-23 2014-12-04 Integra Lifesciences Corporation Flowable collagen material for dural closure
US9242026B2 (en) 2008-06-27 2016-01-26 Sofradim Production Biosynthetic implant for soft tissue repair
FR2949688B1 (fr) 2009-09-04 2012-08-24 Sofradim Production Tissu avec picots revetu d'une couche microporeuse bioresorbable
ITMI20092124A1 (it) * 2009-12-02 2010-03-03 Franca Schiavi Processo per la preparazione di una membrana a base di pericardio animale
SG186837A1 (en) 2010-03-01 2013-02-28 Colibri Heart Valve Llc Percutaneously deliverable heart valve and methods associated therewith
AU2011276503B2 (en) 2010-06-28 2015-09-17 Colibri Heart Value LLC Method and apparatus for the endoluminal delivery of intravascular devices
SG10201601962WA (en) 2010-12-14 2016-04-28 Colibri Heart Valve Llc Percutaneously deliverable heart valve including folded membrane cusps with integral leaflets
FR2972626B1 (fr) 2011-03-16 2014-04-11 Sofradim Production Prothese comprenant un tricot tridimensionnel et ajoure
FR2977790B1 (fr) 2011-07-13 2013-07-19 Sofradim Production Prothese pour hernie ombilicale
FR2977789B1 (fr) 2011-07-13 2013-07-19 Sofradim Production Prothese pour hernie ombilicale
WO2013046058A2 (en) 2011-09-30 2013-04-04 Sofradim Production Reversible stiffening of light weight mesh
US8895034B2 (en) 2011-11-02 2014-11-25 Mark K Bennett Collagen production compound
US20130122583A1 (en) * 2011-11-10 2013-05-16 Celxcel Pty Ltd Sterilization process
FR2985271B1 (fr) 2011-12-29 2014-01-24 Sofradim Production Tricot a picots
FR2985170B1 (fr) 2011-12-29 2014-01-24 Sofradim Production Prothese pour hernie inguinale
FR2994185B1 (fr) 2012-08-02 2015-07-31 Sofradim Production Procede de preparation d’une couche poreuse a base de chitosane
FR2995778B1 (fr) 2012-09-25 2015-06-26 Sofradim Production Prothese de renfort de la paroi abdominale et procede de fabrication
FR2995788B1 (fr) 2012-09-25 2014-09-26 Sofradim Production Patch hemostatique et procede de preparation
FR2995779B1 (fr) 2012-09-25 2015-09-25 Sofradim Production Prothese comprenant un treillis et un moyen de consolidation
AU2013322268B2 (en) 2012-09-28 2017-08-31 Sofradim Production Packaging for a hernia repair device
RU2019101641A (ru) 2012-12-07 2019-03-20 Антродженезис Корпорейшн Лечение поражений полости рта при помощи внеклеточного матрикса плаценты
US10561762B2 (en) * 2013-03-14 2020-02-18 Lifenet Health Crosslinked soft tissue graft and methods of use thereof
NO2975611T3 (de) 2013-03-15 2018-06-09
FR3006578B1 (fr) 2013-06-07 2015-05-29 Sofradim Production Prothese a base d’un textile pour voie laparoscopique
FR3006581B1 (fr) 2013-06-07 2016-07-22 Sofradim Production Prothese a base d’un textile pour voie laparoscopique
US20140363418A1 (en) * 2013-06-10 2014-12-11 Molecular Biology International, Inc. Method of producing collagen from hydrolyzed egg membrane
WO2014209856A1 (en) 2013-06-24 2014-12-31 Anthrogenesis Corporation Extracellular matrix composition beads for cell culture
EP3000432B1 (de) 2014-09-29 2022-05-04 Sofradim Production Textilbasierte Prothese für die Behandlung von Leistenbruch
EP3000433B1 (de) 2014-09-29 2022-09-21 Sofradim Production Vorrichtung zur Einführung einer Prothese zur Hernie-Behandlung in einen Einschnitt und flexible textile Prothese
EP3029189B1 (de) 2014-12-05 2021-08-11 Sofradim Production Prothetisches poröses Netz, sein Herstellungsverfahren und Hernienprothese
EP3059255B1 (de) 2015-02-17 2020-05-13 Sofradim Production Verfahren zur Herstellung einer Matrix auf Chitosanbasis mit faseroptischem Verstärkungselement
EP3085337B1 (de) 2015-04-24 2022-09-14 Sofradim Production Prothese zur unterstützung einer bruststruktur
ES2676072T3 (es) 2015-06-19 2018-07-16 Sofradim Production Prótesis sintética que comprende un tejido de punto y una película no porosa y método para formarla
EP3195830B1 (de) 2016-01-25 2020-11-18 Sofradim Production Prothese zur hernienreparatur
EP3312325B1 (de) 2016-10-21 2021-09-22 Sofradim Production Verfahren zur herstellung eines netzes mit einem daran befestigten nahtmaterial mit widerhaken und dadurch erhaltenes netz
EP3398554A1 (de) 2017-05-02 2018-11-07 Sofradim Production Prothese zur leistenbruch-reparatur
WO2019051476A1 (en) 2017-09-11 2019-03-14 Incubar, LLC SEALING DEVICE FOR USE AS A VASCULAR DUCT IMPLANT FOR REDUCING ENDOFUCTION
WO2019211854A1 (en) 2018-05-03 2019-11-07 Collplant Holdings Ltd. Dermal fillers and applications thereof
EP3653171A1 (de) 2018-11-16 2020-05-20 Sofradim Production Implantate zur weichgewebereparatur

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE1063330B (de) * 1955-11-01 1959-08-13 Dr Med Norman Rosenberg Stoffe fuer Fremdtransplantationen
US3093439A (en) * 1961-07-05 1963-06-11 Johnson & Johnson Process for preparing tanned collagenous material with dialdehyde starch
US3131130A (en) * 1961-07-31 1964-04-28 Ethicon Inc Method of producing soluble collagen
US3455776A (en) * 1967-01-24 1969-07-15 Ethicon Inc Method for swelling and dispersing collagen
US3927422A (en) * 1973-12-12 1975-12-23 Philip Nicholas Sawyer Prosthesis and method for making same
US4233360A (en) * 1975-10-22 1980-11-11 Collagen Corporation Non-antigenic collagen and articles of manufacture
US4082507A (en) * 1976-05-10 1978-04-04 Sawyer Philip Nicholas Prosthesis and method for making the same
US4193813A (en) * 1976-09-07 1980-03-18 Medi-Coll, Inc. Method for making collagen sponge
DE2843963A1 (de) * 1978-10-09 1980-04-24 Merck Patent Gmbh Im koerper resorbierbare geformte masse auf basis von kollagen und ihre verwendung in der medizin
US4223984A (en) * 1979-04-04 1980-09-23 Opticol Corporation Collagen soft contact lens
US4409332A (en) * 1982-01-12 1983-10-11 Jefferies Steven R Collagen-enzyme conjugates that exhibit no inflammatory response and method for making the same

Also Published As

Publication number Publication date
US4597762A (en) 1986-07-01
DE3174731D1 (en) 1986-07-03
EP0052288A3 (en) 1983-01-12
EP0052288A2 (de) 1982-05-26
EP0052288B1 (de) 1986-05-28
ATE19924T1 (de) 1986-06-15
JPS57168920A (en) 1982-10-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0052288B1 (de) Kollagenpräparate, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung in der Human- und Veterinärmedizin
DE69731553T2 (de) Rohrförmiges transplantat aus gereinigter submukosa
DE69827402T2 (de) Chemische reinigung von biologischem material
DE69734218T2 (de) Gewebetransplantat aus der Magensubmukosa
DE69925632T2 (de) Verfahren zur gewebefixierung mittels epoxiden
DE1620795C3 (de) Verfahren zur Herstellung von gegebenenfalls gegerbten und/oder sterilen Kollagenschwämmen
DE102011008604A1 (de) Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis mit Natriumsulfidlösung
EP0438499B1 (de) Verfahren zur herstellung von rinder-pericard-materialien und ihre verwendung
DE2854490C2 (de) Knochenersatzmaterial mit verbesserter biologischer Stabilität auf Basis von Kollagen
AT398373B (de) Biologisches resorbierbares implantationsmaterial sowie verfahren zur herstellung desselben
DE2625289A1 (de) Verfahren zur herstellung eines sterilen kollagenproduktes mit filz- bzw. vliesartiger faserstruktur
DE2531588C2 (de) Transplantate aus Nabelschnurgefäßen und ihre Herstellung
Strömberg et al. An experimental study of autologous digital tendon transplants in the horse
EP1354515B1 (de) Konservierte Gewebematrix eines Hohlorganes, insbesondere eines Blutgefässes, Verfahren zur Herstellung und Verwendung dieser
French et al. Treatment of equine leg wounds using skin grafts: Thirty-five cases, 1975-1988
DE852905C (de) Fuer therapeutische Zwecke geeigneter Schwamm
DE4425776C2 (de) Verfahren zur Herstellung eines verbesserten Kollagentransplantats mit aufgelockerter Struktur
TWI763265B (zh) 一種結構性蛋白器官修補膜及其處理方法與處理劑
DE1745676B1 (de) Verfahren zur Herstellung resorbierbarer Formstuecke fuer chirurgische Zwecke
EP3110246B1 (de) Verfahren zur konservierung von porcinem knorpelgewebe
DD233785A1 (de) Verfahren zur herstellung von haemostyptika aus tierhautkollagen
DE4325954C2 (de) Verfahren zum Herstellung eines Knochentransplantates mit veredelter Oberfläche
DE3111601C2 (de) Homotransplantat für die Schichtkeratoplastik
JP2005518226A (ja) 胎児組織由来のebマトリックスの作製及び組織修復のためのその使用
Marcy THE ANIMAL SUTURE; ITS PLACE IN SURGERY

Legal Events

Date Code Title Description
8127 New person/name/address of the applicant

Owner name: HEYL CHEMISCH-PHARMAZEUTISCHE FABRIK GMBH & CO KG,

8139 Disposal/non-payment of the annual fee