WO1991019195A2 - Methode de detection et/ou de dosage des hormones et anticorps utilisables dans ladite methode de detection - Google Patents

Methode de detection et/ou de dosage des hormones et anticorps utilisables dans ladite methode de detection Download PDF

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Definitions

  • the present invention relates to a method for detecting and / or assaying hormones including placental hormones, as well as to antibodies which can be used in said detection method.
  • hormones are meant the substances produced by the various human and animal endocrine glands and in particular, pituitary hormones (FSH, LH, TSH, GH, ACTH, prolactin, oxytocin, MSH, ADH), related placental hormones [human choriogonadotropins ( hCG) and equine (eCG), choriosomatomammotropin (CS), placental GH], thyroid hormones, adrenal hormones, gonadal hormones and pancreatic hormones.
  • FSH pituitary hormones
  • LH pituitary hormones
  • TSH GH
  • ACTH prolactin
  • oxytocin MSH
  • ADH related placental hormones
  • hCG human choriogonadotropins
  • eCG equine
  • CS choriosomatomammotropin
  • placental GH thyroid hormones
  • adrenal hormones gonadal hormones and pancreatic hormones.
  • hormones derived from amino acids (thyroid hormones, hormones of the adrenal medulla), peptide and protein hormones (pancreatic hormones, GH, ACTH, prolactin, MSH, ADH, oxytocin ), steroid hormones (gonadal hormones, adrenal cortex hormones) and glycoprotein hormones (LH, FSH, TSH, hCG, eCG).
  • Glycoprotein hormones are characterized by the same structural organization: they are formed by the association of two subunits ⁇ and ⁇ .
  • the ⁇ subunit is identical for all glycoprotein hormones of the same animal species. Conversely, the ⁇ subunit is different from one hormone to another and confers specificity of action.
  • Peptide hormones similarly, have a structural relationship as well as polypeptide hormones (example: GH and prolactin).
  • these hormones are not secreted at constant rates but, on the contrary, exhibit variations in circulating concentration of low amplitude (micropulsatility) or, in certain cases, high amplitude (ex: peak secretion of FSH then LH in preovulatory period). It is therefore necessary to have assay methods which allow precise and specific measurement of the circulating level of these different hormones, in the blood or in any other possible biological fluid.
  • the detection and / or determination of gonadotropic hormones LH and FSH is particularly important in the study of the physiology of male and female reproduction in animals and humans.
  • the functioning of the ovary during the period of genital activity involves a succession of ovarian cycles during which the female gametes mature at regular intervals.
  • the ovarian cycle has two phases: the follicular phase (growth of the follicle and maturation of the oocyte) leading to ovulation, a period conducive to fertilization, and the luteal phase (formation of the corpus luteum).
  • FSH is responsible for the growth and maturation of the preovulatory follicle; LH intervenes more particularly in the terminal follicular growth of the latter and in the triggering of ovulation.
  • ovulation occurs at a very precise and constant time, for each species, after the LH peak (from 17 to 24 hours depending on the species).
  • CG choriogonadotropin
  • the assay methods currently used in human clinics for these different hormones are, on the one hand, radioimmunological methods (for example: “AMERLEX-M” system from AMERSHAM, “MAIAclone” system from SERONO for hLH, hFSH, hTSH, hCG, etc.) and on the other hand, enzymoimmunometric or immunometric methods (using a non-enzymatic marker: latex particles, europium chelate).
  • radioimmunological methods for example: "AMERLEX-M” system from AMERSHAM, “MAIAclone” system from SERONO for hLH, hFSH, hTSH, hCG, etc.
  • enzymoimmunometric or immunometric methods using a non-enzymatic marker: latex particles, europium chelate.
  • a fluorescent signal enzymomicroparticulate system "IMx” from ABBOTT; "STRATUS SYSTEM” from AMERICAN DADE for LH, FSH, hCG .
  • luminescent system “AMERLITE” from AMERSHAM for LH , TSH, FSH, hCG; "MAGIC LITE” system from CIBA CORNING for TSH, prolactin .
  • immunometric systems there may be mentioned in particular the "DELFIA” assay method of PHARMACIA using europium as fluorescent marker, for hLH, hFSH, hTSH, hCG, etc.
  • the LH assay methods include:
  • Gorilla (NM CZEKALA et al., J. Reprod. Fert., 1988, 82, 255-261), which uses two monoclonal antibodies, one of which is fixed on a microtiter plate and the other of which is coupled to alkaline phosphatase.
  • the total incubation time for this test is 4 hours (2 h: incubation of the sample on the fixed antibody; 1 h: incubation of the second coupled antibody; 30 to 50 min: enzymatic revelation).
  • the sensitivity of this assay is 0.5 ng / ml.
  • bovine plasma LH serum or culture medium
  • the first antibody (AC 1 ) binding to the LH of the sample or to the radioactive LH * added (incubation from 36 to 48 h).
  • the separation of the antibody-LH complex from the free LH * is carried out using the second antibody (AC 2 ) immobilized on the walls of a tube (incubation: 3 hours, with shaking at 37 ° C).
  • the sensitivity of this method is of the order of 1.5 ng / ml.
  • mice, rats, sheep and cattle an ELISA assay of the LH of mice, rats, sheep and cattle, applicable to serum, to tissue culture media and to buffers, (JL SPEAROW et al., Biol. Reprod., 1987, 3 7 , 595-605), which uses the principle of competition between an LH coupled to peroxidase and the LH of the sample, vis-à-vis an antibody (AC 1 ) which is either an anti-LH immune serum sheep made in rabbits, either a monoclonal anti-bovine LH ⁇ antibody, or an anti-sheep LH ⁇ immunsum made in chicken.
  • AC 1 an antibody which is either an anti-LH immune serum sheep made in rabbits, either a monoclonal anti-bovine LH ⁇ antibody, or an anti-sheep LH ⁇ immunsum made in chicken.
  • the AC 1- sample incubation is 16 to 24 h at 20 ° C with shaking; the addition of LH-peroxidase requires a new incubation from 16 to 24 h at 4oC.
  • the revelation is carried out using TMB (30 min to 2 h).
  • the sensitivity of the method is 79 pg / ml.
  • the first antibody (AC 1 ) is an anti-bovine rabbit LH IgG and the second antibody (AC 2 ) is the Fab 'fragment prepared from the first antibody, conjugated to peroxidase.
  • the detection threshold obtained with the short protocol is 260 pg / ml and that obtained with the long protocol is 70 pg / ml.
  • the duration of the assay is 4 h 30 and that the detection threshold is 420 pg / ml.
  • the methods for assaying FSH in animals are essentially radioimmunological, as are the other hormones.
  • This competitive type assay gives a detection threshold set at 0.6 ng / ml by applying a long protocol (24 hours).
  • a detection threshold of 70 pg / ml for bovine LH requires a protocol of 20 hours, a short 4-hour protocol giving only a detection threshold of 260 pg / ml.
  • a high detection threshold which results therefrom, varying from 100 pg to 1500 pg / ml in the case of animal LHs for example.
  • the subject of the present invention is a method increasing the sensitivity and the specificity of the detection and / or the immunological assay of human or animal hormones, in culture media or in biological fluids, using at least two identical antibodies or different, specific to the hormone to be assayed, which method is characterized in that at least one of said antibodies is preincubated in a medium containing plasma or serum devoid of the hormone (hormones) to be detected and / or assayed.
  • preincubated antibody is meant, within the meaning of the present invention, an "exhausted” antibody, - by contacting or passage through a suitable chromatography column -, by any substance which can induce non-hormonal and non-specific serum interference.
  • the biological fluid is advantageously serum, plasma, whole blood, milk or urine.
  • the medium containing serum or plasma, devoid of the hormone to be detected and / or to be assayed, is called INC medium.
  • said INC medium comprises a serum or a plasma from an animal having undergone the removal of an endocrine gland, suitable for the assay, and is optionally associated with a suitable buffer.
  • the INC medium is devoid of pituitary hormones and advantageously comprises a serum or a plasma of an appropriate hypophysectomized animal, possibly associated with an appropriate buffer.
  • a buffer at neutral pH associated with a surfactant and in particular a PBS-Tween-BSA buffer.
  • the INC medium comprises a serum or a plasma of hypophysectomy ram, associated with an appropriate buffer.
  • the plasma or serum of animals having undergone the removal of an appropriate endocrine gland and the appropriate buffer are in a 1: 1 ratio.
  • said method is advantageously an enzymo-immunometric test, highly specific and sensitive, for detecting at least one hormone.
  • the first antibody is fixed on an appropriate solid support and the second antibody preincubated in a medium containing a plasma or a serum devoid of the hormone to be detected and / or to be assayed (INC medium), and optionally coupled to an appropriate enzyme, are brought into contact with the biological fluid to be tested, after which the enzymatic activity linked to the solid and / or free phase is revealed by any appropriate means.
  • a medium containing a plasma or a serum devoid of the hormone to be detected and / or to be assayed IRC medium
  • the revelation of the reaction is then carried out by the introduction of a third antibody coupled to a appropriate enzyme, preincubated in said INC medium and binding specifically to the second antibody.
  • said medium INC is devoid of pituitary hormones.
  • the first and second antibodies are advantageously chosen from the group which comprises anti-FSH, anti-LH, anti-TSH, anti-GH, anti-ACTH, antiprolactin, anti-oxytocin, anti-monoclonal antibodies.
  • the anti-LH polyclonal antibodies are in particular obtained by immunization of an appropriate animal by a mixture of different isoforms of ovine LH, then by suitable purification of the immunserum obtained, which polyclonal antibodies have a percentage of reaction crossed with other glycoprotein hormones such as FSH, less than 4%, that is to say specificity with regard to LH, in that they exhibit a polyspecificity of recognition of LH of many animal species and in particular at least ovine, bovine, caprine, porcine, canine, camelina, murine and deer species and in that they have an affinity for ovine LH of the order of 10 9 M -1 , respectively in two different animal species.
  • FSH glycoprotein hormones
  • the first and second antibodies are advantageously chosen from the group which comprises rabbit anti-LH anti-polyclonal antibodies and polyclonal horse anti-ovine LH antibodies and the third antibody is advantageously chosen from the group which comprises horse antiIgG and rabbit anti-IgG coupled to an appropriate enzyme.
  • the first antibody is a rabbit polyclonal antibody to sheep LH
  • the second antibody is a horse polyclonal antibody to sheep LH
  • the third antibody is a horse IgG coupled to an appropriate enzyme and in particular to a peroxidase or to a ⁇ -galactosidase.
  • the mixture of different isoforms of ovine LH, used for immunization advantageously contains at least two isoforms of ovine LH.
  • the various ovine LH isoforms are preferably in equimolar amounts.
  • a suitable purification of said anti-LH polyclonal antibodies can be carried out, as the case may be, either by affinity chromatography or by ion exchange chromatography.
  • the solid support is saturated in an INC medium.
  • the immunological assay and more particularly the enzymo-immunometric assay of the hormones has both the characteristics of a quantitative assay by providing very good sensitivity as well as very good reproducibility, and d '' a qualitative mix by its ease of realization and interpretation.
  • this assay has both the characteristics of a quantitative assay by providing very good sensitivity (detection threshold: 60 pg / ml) as well as very good reproducibility, and of a qualitative assay by its ease of realization and interpretation. It can therefore be used both in the laboratory for very precise dosages (e.g. measurement of the micropulsatility of the secretion of LH) than in the field (detection of the preovulatory LH peak for the artificial insemination of synchronized females and / or superovulated females, embryo donors).
  • This LH assay usable in many species: bovine, ovine, caprine, porcine, camelina, canine, murine, cervidae, allows the precise detection of the preovulatory LH peak in the female and presents an obvious physiological and agronomic interest. It will also allow a good estimate of the optimal time chosen for artificial insemination in each species concerned. In fact, the interval between the LH peak and ovulation is constant for each species; on the other hand, the time interval separating the arrival in heat (benchmark used until now) and the peak of LH is very fluctuating according to the individuals of the same race.
  • the test in accordance with the invention therefore proves to be an essential tool for properly controlling this factor of variability which is important for the successful fertilization of oocytes and the collection of good quality embryos. Indeed, knowing the precise moment of ovulation, thanks to the detection of the LH peak, and of artificial insemination, we can deduce at what stage of development will be the embryos that we want to collect. This point is important insofar as embryos that are too young or too advanced cannot be marketed (eg with a broken film membrane).
  • this animal LH assay test is interesting in the context of the development of a new treatment (synchronization, superovulation) or the extension of these treatments to a breed, or even to a species whose preovulatory physiology is poorly known (e.g. cervids).
  • Human LH produced according to the process in accordance with the invention has both the characteristics of a quantitative assay by the very good sensitivity acquired by said method and a qualitative assay by its ease of implementation and interpretation also acquired by the method according to the invention. It can therefore be used in the laboratory or at home for individual use ("Home test"); in the latter case, it will serve as a kit for detecting the preovulatory LH peak, characterized by the appearance of an unambiguous green color, and making it possible to predict the time of ovulation in women.
  • the antibodies when it is desired to carry out an assay having a polyspecificity of species, the antibodies must have particular qualities; in this case, the choice of antibodies is important for an appropriate implementation of the method according to the invention. It is for this purpose that the Applicant has also developed antibodies which are particularly suitable for the process according to the invention.
  • the present invention also relates to anti-LH polyclonal antibodies, characterized in that they are obtained by immunization of an appropriate animal by a mixture of different isoforms of ovine LH, then by suitable purification of the immunserum obtained, in that said polyclonal antibodies have a percentage of cross-reactions with other glycoprotein hormones such as FSH, less than 4%, that is to say specificity with respect to LH, in that they exhibit a polyspecificity of recognition of LH of numerous animal species and in particular at least of the ovine, bovine, caprine, porcine, canine, camelina, murine species as well as the deer and in that they exhibit an affinity with respect to LH sheep of the order of 10 9 M -1 .
  • FSH glycoprotein hormones
  • the appropriate animal is the Rabbit; we ob thus holds polyclonal antibodies against ovine LH in rabbits.
  • the appropriate animal is the Horse; polyclonal anti-sheep LH antibodies are thus obtained in horses.
  • the mixture of different isoforms of ovine LH, used for immunization advantageously contains at least two isoforms of ovine LH.
  • the various isoforms of ovine LH are in equimolar amounts.
  • a suitable purification of said anti-LH polyclonal antibodies can be carried out, as the case may be, either by affinity chromatography or by ion exchange chromatography.
  • the present invention further relates to a reagent for the implementation of the method of detection and / or immunological assay of hormones in animals including humans, according to the invention, characterized in that 'It comprises an anti-hormone antibody suitable for being used as first, second and / or third antibody in said method, which antibody is preincubated in an INC medium.
  • the present invention further relates to a kit for the detection and / or diagnosis of hormones such as pituitary hormones (FSH, LH, TSH, GH, ACTH, prolactin, oxytocin , ADH, MSH), thyroid hormones, adrenal hormones, genital hormones and pancreatic hormones in humans or animals, hCG and eCG, or test implementation kit in accordance with the invention, characterized in that, in addition to useful quantities of buffers suitable for carrying out said detection: - appropriate doses of an antibody chosen from suitable anti-hormone antibodies, including anti-LH antibodies and reagents according to the invention;
  • hormones such as pituitary hormones (FSH, LH, TSH, GH, ACTH, prolactin, oxytocin , ADH, MSH
  • thyroid hormones such as pituitary hormones (FSH, LH, TSH, GH, ACTH, prolactin, oxytocin , ADH, MSH
  • said kit when it is used for the determination of LH, it comprises:
  • polyclonal antibody chosen from polyclonal rabbit anti-LH sheep antibodies, polyclonal horse antiLH sheep antibodies according to the invention and reagents according to the invention containing one of the anti-polyclonal antibodies LH ovine mentioned above;
  • the enzyme is chosen from the group which comprises peroxidases and ⁇ -galactosidase.
  • the peroxidase revealing substrates are advantageously OPD and ABTS; the substrate for revealing ⁇ -galactosidase is advantageously 4-methylumbelliferyl- ⁇ -D-galactopyranoside (MUG) and ortho-nitrophenyl- ⁇ -O-galactopyranoside (ONPG).
  • MUG 4-methylumbelliferyl- ⁇ -D-galactopyranoside
  • ONPG ortho-nitrophenyl- ⁇ -O-galactopyranoside
  • the solid support is advantageously chosen from known supports such as microtitration plates, sticks, strips, beads or membranes.
  • this kit it comprises:
  • this embodiment comprises:
  • the invention also comprises other arrangements which will emerge from the description which follows.
  • the antigen used for immunizations is an equimolar mixture of different purified fractions of ovine LH (oLH). These fractions have been listed as follows:
  • Each injection contains 1 mg of the oLH mixture specified above, dissolved in 2.5 ml of sterile physiological serum and prepared as an emulsion in 2.5 ml of complete Freund's adjuvant.
  • the immunization protocol consists of 6 injections followed by 8 boosters after each of which a bloodletting was carried out, 2 weeks later.
  • the exact sequence of injections is illustrated in diagram I below:
  • Each injection contains 0.1 mg of the oLH mixture, dissolved in 0.5 ml of sterile saline. The whole is prepared as an emulsion in 0.5 ml of complete Freund's adjuvant and injected at multiple points along the spine (intra-dermal injections).
  • the immunization protocol consisted of 4 injections performed every two weeks. Then followed a series of 12 reminders carried out according to the sequence illustrated below in diagram II:
  • Bleeding is carried out two weeks after the reminders indicated except for S 5 which was carried out four weeks after R 7 .
  • the immune serum (15 ml) is dialyzed overnight against a 0.025 M Tris-HCl buffer, 0.035 M NaCl, pH 8.8 at 4oC.
  • the column is balanced with this same buffer.
  • the eluted fraction obtained at the column outlet contains the serum IgGs and represents the antibody-enriched fraction which is used in the assay. Before use, this fraction is dialyzed against PBS pH 7.4 (0.01 M KH 2 PO 4 / K 2 HPO 4 , 0.15 M NaCl).
  • the purification is carried out by affinity chromatography on protein A.
  • the protein A- gel is used.
  • Sepharose CL-4B (PHARMACIA) poured into a column
  • the serum (5 ml) is dialyzed beforehand against 0.1 M phosphate buffer pH 8, filtered and passed through the column equilibrated with the same buffer (flow rate: 15 ml / h).
  • the immunoglobulins are desorbed using a pH gradient ranging from 6 to 4.5 and prepared with a citrate-citric acid buffer 0.1 M then with a pH 3 buffer (0.1 N acetic acid, 0.15 M NaCl) .
  • the eluted fractions are neutralized with 1 M phosphate buffer pH 8, and dialyzed against PBS before being concentrated by ultrafiltration (see above) and stored at -20 ° C in 50% bi-distilled glycerol.
  • the exact concentration of the purified fractions is evaluated by a measurement of the optical density at 280 nm considering that a d.o. of 1.4 corresponds approximately to an IgG solution at 1 mg / ml.
  • the percentage of cross-reaction is calculated in a conventional manner by comparing the dose-response curves obtained on the one hand, with a range of concentrations of each LH tested and, on the other hand, with a range of concentrations of ovine LH. From the "reference" curve obtained with ovine LH, let Y be the concentration giving 50% of the maximum optical signal (ED50). From the curve obtained with another LH, let X be the concentration corresponding to the same optical density as the one used to define Y:
  • the percentage of cross-reaction is equal to x 100
  • Ka The affinity constant (Ka) was measured according to the method described by B. FRIGUET et al. ((1985), J. Immunol. Methods, vol. 77, 305-319) and is calculated according to the representation of KLOTZ:
  • ELISA Enzyme-Linked- ImmunoSorbant-Assay
  • the solid phase used is, without limitation, a 96-well microtiter plate in Luxlon (hydrophobic plastic), but the assay can be carried out on other types of plates or other types of supports, in particular sticks, strips, beads or membranes.
  • the assay according to the invention uses two polyclonal antibodies as defined above, that is to say made from the same antigen, ovine LH, but produced in two species different animals (rabbit and pony):
  • the first antibody (API) is fixed to the bottom of the wells of a microtiter plate. This first antibody was produced in a rabbit;
  • the plate is optionally saturated with an appropriate medium added with serum or plasma devoid of LH.
  • This medium is hereafter called INC medium;
  • the sample to be assayed is incubated; a volume of 10 ⁇ l per well is necessary, that is to say that the assay can be done from a drop of plasma or blood.
  • the assay from blood is carried out in a modified medium containing heparin, hereinafter called medium S;
  • the enzymatic activity linked to the solid phase is revealed using a chromogenic or fluorogenic substrate specific for the enzyme used.
  • the intensity of the colored reaction or of the fluorescent signal obtained is proportional to the concentration of the LH contained in the assayed sample as shown by the curves in FIG. 1.
  • the reaction time required is 5 minutes for peak detection 15 minutes for a precise quantitative measurement of low circulating rates.
  • the dilution medium of the sample must be added with heparin to avoid coagulation.
  • the blood is therefore recovered in PBS-Tween-BSA supplemented with 0.2% heparin, ie 100 ⁇ l of heparin for 50 ml of PBS-Tween-BSA (see Example 3).
  • This medium is composed of at least 50% of serum or plasma of hypophysectomy ram diluted in PBS-Tween-BSA.
  • the animal is fasted 48 hours before the operation. This is done under anesthesia; the pituitary gland is removed through the floor of the mouth.
  • Plasma samples are taken daily to check for a drop in the circulating LH level from the hypophysectomy. When it is no longer detectable, the animal is anesthetized and bled white. The blood is collected under heparin to recover the plasma or is made to coagulate to separate the serum. Plasma and serum are stored at -20oC.
  • the animal is bled 5 to 7 days after the hypophysectomy.
  • Figure 3 reports the results obtained with a standard range prepared in dilution buffer (- ⁇ -) and those obtained with a range produced in the same buffer supplemented with 10% of hypophysectomized animal serum (- ⁇ -) (dosage AP3-peroxidase / OPD type, see Example 3).
  • a particularly annoying interference of LH- serum in the assay especially in the area of low concentrations of ovine LH (oLH), which masks all the real sensitivity of the assay.
  • the process according to the invention has the advantage of making it possible to eliminate this difficulty, thanks to the INC medium which has enabled the development of a very sensitive, reliable and rapid dosage.
  • This assay is not dependent on the enzyme used as a marker. Two enzymes have been used so far, peroxidase and ⁇ -galactosidase, the first with two chromogenic substrates, the second with a fluorogenic substrate.
  • OPD ortho-phenylenediamine
  • the OPD is prepared extemporaneously at 0.5 mg / ml in acetate buffer (0.1 M sodium acetate) pH 5.6, added with 0.2% hydrogen peroxide.
  • the optical density is measured at
  • the ABTS is prepared in 0.05 M citrate buffer pH 4: for 12 ml of citrate buffer, 60 ⁇ l of stock ABTS and 50 ⁇ l of 2% hydrogen peroxide are added, the optical density is measured at 405 nm.
  • Citrate buffer 2 volumes of citric acid ((5.3 g / l) C 6 H 8 O 7 , 1H 2 O) + one volume of sodium phosphate (Na 2 HPO 4 , 12 H 2 O) (17, 73 g / l).
  • the reaction can be stopped with 20 ⁇ l of 10% SDS, this having no obligatory character.
  • the fluorescence signal is read with a spectrofluorimeter for ELISA plates.
  • the excitation wavelength 360 nm
  • the emission wavelength 448 nm.
  • the anti-horse LH antibody is purified on ion exchange chromatography (DEAE) as well as the horse anti-IgG antibody (made in sheep).
  • PBS dilute a molar solution of mono- and bi-potassium potassium phosphate pH 7.4 100 times in a 0.15 M NaCl solution.
  • PBS-Tween add 0.1% (1 ml in 1 liter) of Tween 20 in PBS.
  • the API can be prepared at a different concentration: 10 ⁇ g / ml or 5 ⁇ g / ml; the extreme concentrations being 20 ⁇ g / ml and 2.5 ⁇ g / ml. * Overcoating or saturation of wells:
  • the wells are filled with 100 ⁇ l of INC medium and the plate is incubated for 30 minutes at 37oC.
  • the plate is either used for the continuation of the assay, or emptied, put to dry at 37oC then kept in a dry atmosphere, sealed under plastic.
  • the range of oLH (ovine LH) is prepared in PBS-Tween-BSA containing hypophysectomized animal serum diluted 1 / 10th. It includes the following concentrations: 60 pg / ml, 125 pg / ml, 250 pg / ml; 500 pg / ml, 1 ng / ml, 2 ng / ml, 4 ng / ml, 8 ng / ml and possibly 40 ng / ml of oLH. It is deposited in duplicate at the rate of 100 ⁇ l per well.
  • the plasmas to be assayed are diluted 10 times in PBS-Tween-BSA. They are deposited in double or triple, at a rate of 100 ⁇ l per well. (The dilution of 1 / 10th is not imperative and can be higher or lower if necessary). The whole is incubated for 1 hour at 37oC. After which, the plate is washed 5 times with PBS-Tween (300 ⁇ l / well) in the same way as above.
  • This antibody, AP2 is previously prepared in INC medium: it is diluted to a concentration of 5 ⁇ g / ml in the INC medium and incubated for 30 minutes at 37 ° C. before being deposited in the wells at the rate of 100 ⁇ l per well.
  • the plate is incubated for 1 hour at 37oC.
  • the concentration of 5 ⁇ g / ml for AP2 is not compulsory but it must in all cases be lower than that of APL. It can be between 15 ⁇ g / ml (if API is 20 ⁇ g / ml) to 2.5 ⁇ g / ml, or even 1 ⁇ g / ml (if AP1 is 2.5 ⁇ g / ml).
  • the plate is washed 5 times in the same way as previously with PBS-Tween.
  • the AP3 is also preincubated for 30 min at 37 ° C. in the INC medium at a dilution of 1 / 5000th (according to the manufacturer's indication) before being deposited in the wells (100 ⁇ l per well). Incubate for 1 hour at 37oC. The plate is then washed 5 times with PBS-Tween.
  • a first measurement of the optical density is carried out to provide a first indication of the development of the reaction. After which, the plate is again incubated for 15 minutes at 37 ° C., if the reaction needs to be continued, in particular in the case of samples with a low LH content. Then, we proceed to a final reading of the results.
  • the enzymatic reaction can be stopped by adding 20 ⁇ l of 10% SDS per well.
  • optical density is read using an automatic spectrophotometer for ELISA plates, fitted with a filter at 405 nm.
  • FIG. 4 presents the results of such an assay carried out in the presence of INC medium, with a range of concentrations of oLH made in PBS-BSA-Tween (- ⁇ -) and with a range carried out in LH- (serum d 'hypophysectomized animal) diluted 1/10 with PBS-BSA-Tween (- ⁇ -).
  • LH- serum d 'hypophysectomized animal
  • the effect of the INC medium is the same, whether it is composed of 50% plasma or hypophysectomized animal serum.
  • INC is not mandatory and can be increased. Below 50%, however, the non-specific interference described is no longer completely eliminated.
  • FIG. 5 illustrates the curve obtained, under these conditions, with a standard range prepared in the dilution medium indicated above.
  • Figure 5 was obtained under the same experimental conditions as the curve (- ⁇ -) of Figure 4.
  • the detection threshold for the assay is 60 pg / ml.
  • the protocol set out above is a non-limiting embodiment both for the antibody concentrations and for the substrate incubation times which can be varied.
  • the experimental conditions presented above represent a preferred embodiment for the development of a very sensitive and very reliable assay (little intra and inter-assay variability) while using the lowest possible reagent concentrations.
  • OPD peroxidase with OPD
  • 100 ⁇ l of substrate are distributed per well; the enzymatic development takes place at room temperature or at 4oC for 5 to 20 minutes; it is stopped with 50 ⁇ l of acid solution as specified above (C).
  • the optical density is read at 492 nm, using the same type of device.
  • the rabbit anti-LH antibody (AP1) is prepared at a concentration of 2.5 ⁇ g / ml in 0.1 M carbonate buffer, pH 9.6. It is distributed at the rate of 100 ⁇ l per well. The incubation is 1 hour at 37oC then 18 hours at 4oC.
  • INC are deposited in each well.
  • the incubation is 30 minutes at 37oC.
  • the plate is either stored in a dry environment or used directly.
  • the incubation time can vary from 1 h to 1 h 30,
  • the AP2- ⁇ -galactosidase is deposited at the rate of 100 ⁇ l per well. It was previously prepared in the INC medium at a dilution of 1 ⁇ g / ml and preincubated for 30 min at 37oC.
  • the incubation in the wells is 1 h at 37 ° C. after which the plate is washed 5 times with PBS-Tween.
  • Its excitation wavelength is 360 nm; it records at a wavelength of 448 nm.
  • the reagent concentrations were chosen so that the ratio of quantity of reagents used / quality of the assay is the most favorable. It is obvious that the concentrations can be modified while keeping the correct dosage.
  • EXAMPLE 5 Determination of animal LHs with the AP2-peroxidase system.
  • An LH assay can be carried out under the same conditions as those of Example 4, in which AP2 is coupled to a peroxidase.
  • EXAMPLE 6 Quantitative and qualitative colorimetric assay of the LH, carried out with the AP3-peroxidase system from the blood; development of an LH peak detection kit in animals, used in the laboratory or in the field:
  • the assay from blood can be used for both quantitative and qualitative purposes; "qualitative assay” is understood to mean a test allowing the detection of the preovulatory LH peak in the female, in the field, without a measuring device, which can simply be interpreted by the eye. This test likewise allows the detection of LH pulses in the female or in the male.
  • An assay carried out on plasma has a real charge insofar as it requires a centrifugation step, the pipetting of the plasma after centrifugation and its transfer into new tubes and a dilution step before use in the assay (i.e. pipetting, homogenization in the dilution buffer).
  • a new method of drawing blood from animals is applied in this test. It consists in placing a very fine needle in the jugular vein of the animal, allowing a drop of blood to bead, applying the end of a glass capillary, heparin, and calibrated to a very precise volume (10 or 25 ⁇ l ).
  • the capillary must be held horizontally, so that blood can migrate to the other end of the capillary.
  • a small plastic bulb adapted to the diameter of the capillary, the content thereof is recovered in a tube containing 225 ⁇ l of PBS-Tween-BSA heparin in the case of a capillary of 25 ⁇ l.
  • the blood is thus diluted 10 times and only has to be distributed in 2 times 100 ⁇ l in the wells provided on a plate.
  • This last step can be avoided by filling all the wells of the plate with 90 ⁇ l of PBS-BSA-Tween heparin. It then suffices to use capillaries of 10 ⁇ l in volume and to empty them each directly into a well of the microtitration plate. The sample to be assayed is thus directly diluted and deposited in the plate.
  • the AP1 is diluted to 7.5 ⁇ g / ml in 0.1 M carbonate buffer pH 9.6 and incubated for 1 hour at 37oC then 18 hours at 4oC.
  • the plates are then washed with PBS-Tween, 5 times, then filled with 100 ⁇ l per well of INC medium. They are incubated for 30 minutes at 37oC, emptied and dried and then sealed in plastic, or directly used.
  • Incubation is 1 hour or less at 37oC or at room temperature. During the incubation, the plate is shaken every 15 min, by tilting it manually in order to rehomogenize the red cells in the liquid phase. 5 washes are then carried out with PBS-Tween if it is in the laboratory, or with physiological saline (0.15 M NaCl) or with running tap water if it is in the field.
  • AP2 and AP3 will be supplied ready-made. After an incubation of 45 min at 37oC or at room temperature, the plate is washed as before and the enzymatic development is carried out.
  • the ABTS solution (prepared according to the indications above in C) and the 2% hydrogen peroxide are only mixed immediately before use, that is to say just before use. 100 ⁇ l of substrate are deposited per well.
  • the enzymatic reaction is instantaneous and takes place at room temperature. After 2 min, the appearance of a green color in the wells corresponding to a preovulatory LH peak is visible. After 5 min, a distinction is made between blood samples "carrying" a preovulatory LH peak compared to the others. whose substrate remains colorless.
  • the INC medium thus avoids having to distinguish a more or less clear green (case of a high non-specific signal, for example) from a dark green (high LH level) with all the risks of variability that this represents. Indeed, the all or nothing nature of this test has an important advantage compared to the enzyme immunoassays sold for human LH or for other animal hormones.
  • the value obtained for the correlation coefficient indicates that a very precise quantitative determination from blood is entirely possible with the protocol. indicated above.
  • the tests carried out gave a doseresponse curve of less good sensitivity than that obtained according to the protocol described above but sufficient for the detection of high concentrations of LH (from 15 ng / ml).
  • the incubation of the substrate must in return be longer 30 to 45 min if necessary for the detection of preovulatory peaks.
  • the example illustrated here was carried out on a herd of 20 synchronized goats for artificial insemination treatment.
  • the experimental protocol is the same as that set out in Example 3, with the difference that 100 ⁇ l of milk are deposited in each well. In this case there is no dilution to be made, the milk is used raw, undiluted, unlike plasma or blood.
  • the 100 ⁇ l of sample can be taken with a calibrated capillary, in the same way as in the case of blood.
  • the plate is washed with PBS-Tween or with tap water depending on where the assay is carried out.
  • Figure 8 shows the secretion profile of the LH peak in a goat, in the blood (curve - * -) and in milk (.. ⁇ ..). It is found that the concentrations of LH found in milk are minute compared to the plasma concentrations. For this reason, it is necessary to use a microtiter plate spectrophotometer. We observe that the appearance of the LH peak in milk is 4 hours later than blood, if the start of the peak is used as a point of comparison. Table I below reports the LH concentrations measured in blood and milk during 7 samples taken every 4 hours in the two media simultaneously. The comparison of the results shows that the appearance of the LH peak in milk is delayed by 4 or 8 hours compared to the blood, if the maximum of the peak is compared. The start of the peak, on the other hand, is always shifted by 4 hours in milk compared to blood, and this in a constant manner. Outside the preovulatory peak, LH concentrations in milk are not detectable.
  • the example illustrated here was carried out on a herd of 12 Lacaune dairy ewes chosen from the "good" dairy.
  • Table II below expresses the results in ng / ml, and shows a perfect difference of four hours between the LH peak in the blood and that detected in milk, in which, apart from the preovulatory peak, the LH concentrations are not detectable.
  • a milk test is less "stressful" than a blood test, and can be done when milking animals;
  • FIG. 16 represents the secretion profile of the LH peak in ng / ml, as a function of time, in a sheep, in the blood, (curve - * -) and in milk .
  • EXAMPLE 9 Field applications:
  • Figures 9 are photos of plates with 12 columns labeled 1 to 12 and 8 rows labeled A to H.
  • FIG. 9A gives the order for depositing the samples.
  • the samples of a female are deposited in column (columns 3 to 11); each sample is dosed in duplicate.
  • the LH peaks "appear” in dark green which in this figure and the following figures is shown in dark gray as seen in detail in Figure 9B, in which the concentration range is also deposited to the left of the plate on 2 columns (columns 1 and 2).
  • This assay was carried out using plasmas.
  • the development time was 15 min at room temperature.
  • FIG. 10 illustrates a profile of LH secretion obtained in a sheep (Example 3) by the ELISA assay (AP3-peroxidase / ABTS) and by RIA (radio immunoassay) from plasma.
  • ELISA assay AP3-peroxidase / ABTS
  • RIA radio immunoassay
  • This figure represents a photo of a plate of the same type as the previous one (columns 1 to 12, line A to H).
  • the assays were made from blood. The revelation was 10 min at room temperature.
  • column 2 shows, for example, a peak in the wells D 2 -E 2 then the end of the peak in F 2 .
  • the top of the peak is at D 2 .
  • the substrate remains colorless.
  • the maximum of a peak in D 6 -E 6 is also observed, then the end of the peak in F 6 .
  • Figure 13 shows the entire LH secretion profile in a cow treated with GnRH. We can see a superposition of the concentrations measured by ELISA and by RIA.
  • the assays were carried out in the plasma according to the protocol of Example 3. The samples were taken every 20 minutes. They are deposited by line (ram 1: lines C and D; lines E and F; ram 3: lines G and H) and dosed in duplicates (the duplicates are arranged vertically).
  • the revelation time is 30 minutes.
  • FIG. 15 illustrates a profile of LH secretion obtained in the ram with the ELISA and RIA assays.
  • the concentrations obtained in ELISA have lower absolute values than those in RIA, on the other hand, the profile is identical. This difference is due to the better sensitivity of the ELISA assay, which makes it possible to detect lower values than the RIA.
  • the RIA assay used is that published by J. PELLETIER et al., 1982.
  • X is the concentration of LH (ng / ml) measured by RIA.
  • FIG. 17 shows the profile of LH secretion in ng / ml as a function of time in a doe (doe n . 80). The results obtained in all of the females again show that the moment of the LH peak is very variable during the heat season: it generally takes place at the start of the heat.
  • the assays are carried out as described in Example 3, from daily blood samples taken from 2 bitches during the heat season.
  • the preovulatory LH peak extends over a longer period of time than in the other described species: the duration is 24 hours on average. Therefore, it can be detected by only taking a daily blood sample, which is an advantage for the customers of a veterinary practice.
  • the results obtained with the "DIXIE" dog illustrated in FIG. 18 clearly show this. The tests are read with the naked eye as for the other species.
  • FIG. 18 represents the secretion profile of LH, (- ⁇ -) and of progesterone (- * -) in ng / ml, obtained in the dog DIXIE.
  • the kit Given the length of the heat period, in the dog, the kit will allow to know precisely the moment of ovulation in the dog followed and will allow to practice insemination at the optimal time (fertilization takes place 48 hours after the ovulation, in the dog). Again, an insemination scheme can be established precisely, using the method according to the invention.
  • EXAMPLE 12 Detection of the LH peak in the sow
  • y is the LH concentration (ng / ml) measured by ELISA; and x is the concentration of LH (ng / ml) measured by RIA.
  • FIG. 19 illustrates a profile of LH secretion in ng / ml obtained with an assay according to the invention (- * -) and with an RIA assay (- ⁇ -).
  • EXAMPLE 13 Determination of 1a sheep FSH with the method according to the invention.
  • the first antibody (AC 1 ) is a monoclonal antibody specific for the ⁇ subunit of FSH of many species (bovine, ovine, equine, porcine, human, rat, rabbit, dog, ostrich). It was kindly provided by Professor Jacques LUSSIER for these experimental tests. This monoclonal antibody was produced by Doctor LUSSIER and his team (University of Montreal - Faculty of Veterinary Medicine - CRRA - CP 5000 - St Hyacinthe J297C6 - Quebec). It is a monoclonal antibody of the IgG1 type.
  • the second antibody (AC 2 ) is a polyclonal antibody specific for ovine FSH, which was made in rabbits. It has been produced and is available at the Reproduction Physiology station - INRA - 37380 NOUZILLY.
  • the third antibody (AC 3 ) is a polyclonal antibody marketed by Laboratoires
  • the first antibody is prepared in 0.1M carbonate buffer pH 9.6 at a concentration of 7.5 ⁇ g / ml. 100 ⁇ l are distributed per well. The incubation times for plate sensitization are the same: 1 hour at 37oC and 18 hours at 4oC.
  • Ovine FSH (standard NIH: oFSH-13-AFP-2846-C) was prepared in PBS-Tween-BSA containing animal serum hypophysectomized diluted 1/10. It includes the concentrations: 125 pg / ml, 250 pg / ml, 500 pg / ml, 1 ng / ml, 2 ng / ml, 4 ng / ml, 8 ng / ml and 40 ng / ml. It is deposited in duplicate at the rate of 100 ⁇ l per well. The plasmas to be assayed are diluted ten times in PBS-Tween-BSA. The duration of the incubation is one hour at 37oC.
  • Example 3 preparation and incubation of the second antibody (AC 2 ), anti-FSH ovine. It is prepared in the INC medium at a concentration of 5 ⁇ g / ml. Its preparation is carried out in the same way as in Example 3. The incubation is one hour at 37oC.
  • Figure 20 represents the results of such an assay carried out according to the INC protocol (curve B).
  • the detection threshold is 0.25 ng / ml and the sensitivity of the assay is considerably increased compared to curve A which was obtained without applying the INC method.
  • the buffer used for the overcoating, the incubation of AC 2 and AC 3 was simple PBS-BSA-Tween.
  • Only the standard range of oFSH was performed under the same conditions as for curve B, that is to say in PBS-BSA-Tween added with serum from the hypophysectomized animal diluted to 1/10 th .
  • the comparison of these two curves shows the importance of the INC method for obtaining a very good sensitivity in this assay of oFSH.
  • Y is the concentration of oFSH (ng / ml) measured by ELISA and X is the concentration of oFSH (ng / ml) measured by RIA.
  • the INC process gives the possibility of detecting low circulating levels (between 0.25 and 5 ng / ml), which is of obvious physiological interest.
  • the first antibody (AC 1 ) is a monoclonal antibody specific for human LH (hLH) marketed by the company Pierce - reference: 37110. It is a monoclonal antibody of the IgG 1 type, it comes from the clone ZMLHZ.
  • the second antibody (AC 2 ) is an anti-hLH polyclonal antibody, made in rabbits and marketed by the Company UCB - reference: 1504/001.
  • the third antibody (AC 3 ) is a polyclonal antibody marketed by Jackson laboratories - reference 111-035-003. It is a rabbit antiIgG antibody coupled to peroxidase, made in goats.
  • AC 1 is prepared in 0.1 M carbonate buffer pH 9.6 at a concentration of 10 ⁇ g / ml (or
  • the samples to be assayed are diluted 10 times (or 5 times) in PBS-BSA-Tween.
  • the hLH range is prepared in PBS-BSA-Tween supplemented with hypophysectomized animal serum diluted 10 times. It includes the following concentrations: 62.5 pg / ml, 125 pg / ml, 250 pg / ml, 500 pg / ml, 1 ng / ml, 2 ng / ml, 4 ng / ml, 8 ng / ml, 40 ng / ml.
  • AC 3 is prepared to 1/5000 th in the INC medium, as in Example 3
  • Figure 21 shows the results obtained with a standard range of hLH using the INC process according to the above protocol (curve B) and those obtained with the same standard range without applying the INC process (curve A).
  • the buffer used for overcoating, incubation of AC 2 and AC 3 was PBS-BSA-Tween alone.
  • the comparison of the two curves illustrates again, the interest and the impact of the INC process which brings a very clear improvement in the sensitivity of the assay and in its detection threshold, by neutralizing any non-specific signal due to non-serum interference. specific.
  • Y is the concentration of hLH (ng / ml) measured by ELISA and X is the concentration of hLH (IU / 1) measured by the IMX Abbott system).

Abstract

Méthode de détection et/ou de dosage des hormones y compris les hormones placentaires et des anticorps utilisables dans ladite méthode de détection. Cette méthode, augmentant la sensibilité et la spécificité de la détection et/ou du dosage immunologique d'hormones humaines ou animales, dans des milieux de culture ou dans des fluides biologiques, mettant en ÷uvre au moins deux anticorps identiques ou différents, spécifiques de l'hormone à doser, est caractérisée en ce qu'au moins l'un desdits anticorps est préincubé dans un milieu contenant du plasma ou du sérum dépourvu de l'hormone à détecter et/ou à doser (milieu INC).

Description

METHODE DE DETECTION ET/OU DE DOSAGE DES HORMONES ET ANTICORPS UTILISABLES DANS LADITE METHODE DE DETECTION.
La présente invention est relative à une méthode de détection et/ou de dosage des hormones y compris les hormones placentaires, ainsi qu'à des anticorps utilisables dans ladite méthode de détection.
On entend par hormones, les substances élaborées par les différentes glandes endocrines humaines et animales et notamment, les hormones hypophysaires (FSH, LH, TSH, GH, ACTH, prolactine, ocytocine, MSH, ADH), les hormones placentaires apparentées [choriogonadotropines humaines (hCG) et équines (eCG), choriosomatomammotropine (CS), GH placentaire], les hormones thyroïdiennes, les hormones surrénaliennes, les hormones gonadiques et les hormones pancréatiques.
Selon leur structure chimique, ces hormones appartiennent à différentes catégories : les hormones dérivées d'amino-acides (hormones thyroïdiennes, hormones de la médullosurrénale), les hormones peptidiques et protidiques (hormones pancréatiques, GH, ACTH, prolactine, MSH, ADH, ocytocine), les hormones stéroidiennes (hormones gonadiques, hormones de la corticosurrénale) et les hormones glycoprotéiques (LH, FSH, TSH, hCG, eCG).
Les hormones glycoprotéiques sont caractérisées par une même organisation structurale : elles sont formées par l'association de deux sous-unités α et β. La sous-unité α est identique pour toutes les hormones glycoprotéiques d'une même espèce animale. A l'inverse, la sous-unité β est différente d'une hormone à l'autre et confère la spécificité d'action. Les hormones peptidiques, de même, présentent une parenté structurale ainsi que les hormones polypeptidiques (exemple : GH et prolactine).
De manière générale, ces hormones ne sont pas sécrétées à des taux constants mais présentent au contraire des variations de concentration circulante de faible amplitude (micropulsatilité) ou, dans certains cas, de forte amplitude (ex : pic de sécrétion de la FSH puis de la LH en période préovulatoire). Il est donc nécessaire de disposer de méthodes de dosage qui permettent de mesurer de façon précise et spécifique le taux circulant de ces différentes hormones , dans le sang ou dans tout autre fluide biologique possible.
Ces méthodes de dosages doivent être, de plus, très sensibles, dans la mesure où les concentrations basales de ces différentes hormones sont relativement faibles (pour les hormones hypophysaires par exemple, de 0,1 ng/ml à quelques ng/ml), en dehors de tous cas pathologiques.
A titre d'exemple, la détection et/ou le dosage des hormones gonadotropes LH et FSH est particulièrement importante dans l'étude de la physiologie de la reproduction mâle et femelle chez les animaux et l'Homme. Chez les mammifères, par exemple, le fonctionnement de l'ovaire comporte pendant la période d'activité génitale (continue ou saisonnière selon les espèces) une succession de cycles ovariens au cours desquels les gamètes femelles mûrissent à intervalles réguliers.
Le cycle ovarien comporte deux phases : la phase folliculaire (croissance du follicule et maturation de l'ovocyte) aboutissant à l'ovulation, période propice à la fécondation, et la phase lutéale (formation du corps jaune). La FSH est responsable de la croissance et de la maturation du follicule préovulatoire ; la LH intervient plus particulièrement dans la croissance folliculaire terminale de ce dernier et dans le déclenchement de l'ovulation. En effet, l'ovulation intervient à un moment très précis et constant, pour chaque espèce, après le pic de LH (de 17 à 24 heures selon les espèces). Il apparaît donc utile et important de pouvoir disposer, aussi bien au laboratoire pour des dosages très précis que sur le terrain ou à domicile pour la détection du pic préovu latoire de LH (pour prévoir le meilleur moment pour une insémination artificielle, par exemple), d'outils de détection spécifiques de la LH, chez différents animaux et chez l'Homme.
De même, la possibilité de détecter des niveaux circulants très bas de la choriogonadotropine (CG) est particulièrement importante pour la mise au point de kits de diagnostics de gestation les plus précoces possibles, spécialement chez la femme.
Chez l'Homme, un certain nombre de tests réalisables à domicile à partir de l'urine ont été développés et commercialisés pour la LH et la hCG.
En ce qui concerne la LH, un certain nombre de kits sont maintenant disponibles et permettent de déterminer de façon précise la date de l'ovulation. Ces tests utilisent des anticorps monoclonaux et sont basés soit sur une réaction d'agglutination ( "DISCRETEST", CHEFARO pour ORGANON ; "HI GONADO TEST", MOSHIDA) soit sur une réaction immunoenzymatique ( "OVUSTICK" , MONOCLONALANTIBODIES ; "OVUTEST" , CLONATEC ; "FIRST REPONSE" "REVELATEST O", ARLEY-DIAGNOSTIC).
En ce qui concerne la hCG, plusieurs tests de grossesse sont disponibles et sont réalisés à partir d'anticorps polyclonaux ou, le plus fréquemment, d'anticorps monoclonaux. On peut distinguer selon leur principe :
- les tests d'hémagglutination (ou tests à anneaux) ("PRIMOTEST RAPIDE" de FUMOUZE ; "BETA-TEST 100 UI" de SOEKAMI-LEFRANCQ ; "G-TEST" de THERANOL ; "ELLE-TEST BETA" de DEGLAUDE) ;
- les tests d'agglutination de particules d'or ("PREDICTOR COLOR" de NICHOLAS) ;
- les tests immunoenzymatiques à lecture indirecte (apparition d'une couleur bleue sur bandelette : "BLUE TEST" de CLONATEC) ou à lecture directe [apparition d'un signe particulier (point, barre ou signe +) : "BLUE POINT" de CLONATEC ; "G-TEST LOGIC" de THERANOL ; "PREVISION" de PEARMYGIENE) ;
- les tests associant anticorps monoclonaux et migration sur membrane, sans enzyme de révélation : "CLEAR BLUE EVIDENCE" de POLIVE-TRICOSTERIL ; "PRIMOTEST MINUTE" de FUMOUZE ; "G-TEST PRO" de THERANOL ; "FIRST RESPONSE" de TALCO ; "TEST PACK PLUS hCG" de ABBOTT). Ils sont caractérisés par l'apparition d'un signe coloré (bandes roses, barre bleue, etc...).
De manière générale, les méthodes de dosages, actuellement utilisées en clinique humaine, pour ces différentes hormones sont d'une part des méthodes radioimmunologiques (par exemple : système "AMERLEX-M" d'AMERSHAM, système "MAIAclone" de SERONO pour hLH, hFSH, hTSH, hCG, etc..) et d'autre part, des méthodes enzymoimmunométriques ou immunometriques (utilisant un marqueur non-enzymatique : particules de latex, chélate d'europium). Parmi les systèmes enzymo-immunométriques, certains utilisent un signal fluorescent (système enzymomicroparticulaire "IMx" de ABBOTT ; "STRATUS SYSTEM" de AMERICAN DADE pour LH, FSH, hCG...) ou luminescent (système "AMERLITE" d'AMERSHAM pour LH, TSH, FSH, hCG ; système "MAGIC LITE" de CIBA CORNING pour TSH, prolactine...). Parmi les systèmes immunometriques, on peut citer notamment le procédé de dosage "DELFIA" de PHARMACIA utilisant l'europium comme marqueur fluorescent, pour hLH, hFSH, hTSH, hCG, etc..
Chez les animaux, les méthodes de dosage de la LH sont notamment :
- le dosage de la LH dans l'urine chez le
Gorille (N.M. CZEKALA et al., J. Reprod. Fert., 1988, 82, 255-261), qui utilise deux anticorps monoclonaux dont l'un est fixé sur une plaque de microtitration et dont l'autre est couplé à de la phosphatase alcaline. Le temps d'incubation total de ce test est de 4 heures (2 h : incubation de l'échantillon sur l'anticorps fixé ; 1 h : incubation du deuxième anticorps couplé ; 30 à 50 mn : révélation enzymatique). La sensibilité de ce dosage est de 0,5 ng/ml.
- le dosage de la LH bovine plasmatique (sérum ou milieu de culture), par une méthode radioimmunologique
(R. HOIER et al., Theriogenology., 1988, 30, 235-243). Ce dosage est réalisé en présence de deux anticorps (AC1 : anti-LH fait chez le lapin, AC2 : anti-IgG de lapin) et de LH radioactive (marquée à l'iode 125).
II s'agit d'une méthode par compétition, le premier anticorps (AC1) se liant à la LH de l'échantillon ou à la LH* radioactive ajoutée (incubation de 36 à 48 h). La séparation du complexe anticorps-LH, de la LH* libre est réalisée en utilisant le deuxième anticorps (AC2) immobilisé sur les parois d'un tube (incubation : 3 heures, sous agitation à 37ºC).
La sensibilité de cette méthode est de l'ordre, de 1,5 ng/ml.
- un dosage ELISA de la LH de souris, de rat, d'ovins et de bovins, applicable au sérum, aux milieux de culture de tissus et aux tampons, (J.L. SPEAROW et al., Biol. Reprod., 1987, 3 7, 595-605), qui utilise le principe de la compétition entre une LH couplée à de la peroxydase et la LH de l'échantillon, vis-à-vis d'un anticorps (AC1) qui est soit un immunserum anti-LH ovine fait chez le lapin, soit un anticorps monoclonal anti-LHβ bovine, soit un immunserum anti-LHβ ovine fait chez le poulet.
Pour l'anticorps préparé chez le lapin, l'incubation AC1-échantillon est de 16 à 24 h à 20ºC sous agitation ; l'ajout de la LH-peroxydase nécessite une nouvelle incubation de 16 à 24 h à 4ºC. La révélation est réalisée à l'aide de TMB (30 mn à 2 h).
Dans ces conditions, la sensibilité de la méthode est de 79 pg/ml.
- une méthode de dosage ELISA de la LH bovine plasmatique (W.G. ABDUL-AHAD et al., J. Reprod. Fert., 1987, 80 , 1-9). Il s'agit d'une méthode sandwich sur plaques de microtitration. Le premier anticorps (AC1) est une IgG anti-LH bovine de lapin et le deuxième anticorps (AC2) est le fragment Fab' préparé à partir du premier anticorps, conjugué à la peroxydase.
Ils présentent un protocole court (4 heures) et un protocole long (20 heures). Le seuil de détection obtenu avec le protocole court est de 260 pg/ml et celui obtenu avec le protocole long est de 70 pg/ml.
La révélation de la peroxydase se fait avec l'OPD.
Une autre publication des mêmes Auteurs (620th Meeting Dublin, Biochem. Soc. Transactions, 1985, 15, 277-278) relate le même procédé de dosage, utilisant comme AC2 un conjugué Fab'-β lactamase.
Dans cet Article, il est spécifié que la durée du dosage est de 4 h 30 et que le seuil de détection est de 420 pg/ml.
- il faut également citer le dosage de la LH chez le singe Rhésus par un RIA qui utilise de la LH ovine marquée et un anti-sérum anti-LH ovine qui réagit avec les LH de nombreuses espèces.
Les méthodes de dosage de la FSH chez les animaux sont de type radioimmunologique essentiellement, de même pour les autres hormones.
Un dosage immunoenzymatique de la prolactine de rat a été décrit (A. P. SIGNORELLA et al., Anal.
Biochem., 1984, 136, 372-381). Ce dosage, de type compétitif, donne un seuil de détection fixé à 0,6 ng/ml en appliquant un protocole long (24 heures).
Cependant, de manière générale, pour le dosage des hormones, tant chez l'Homme que chez l'animal, malgré la diversité des méthodes de dosages proposées et appliquées, de nombreux travaux mentionnent le problème d'interférences non-spécifiques dans les dosages, entraî nant l'obtention de résultats erronés (cas des "faux positifs" ou des "faux négatifs") [J.P. GOSLING, Clin. Chem., 1990, 36, 1408-1427 ; K.A. BRENSING, Horm. Metabol. Res., 1989, 21, 697-698 ; P.E. G-ARRETT, J. Clin. Immunoassay, 1989, 12, 18-19]. Ce problème d'interférences non-spécifiques conduit à une perte dans la sensibilité et le seuil de détection du dosage. On peut notamment citer le cas d'un dosage immunoenzymatique de hCG (B. LONGHI et al., 1986, J. Immun. Meth., 92, 89- 95) pour lequel le seuil de détection a été évalué à 2,2 UI/1 dans un milieu sans sérum et à 10,4 UI/1 dans un milieu contenant 20 % de sérum humain "hCG négatif".
Un certain nombre de solutions à ce problème d'interférence, ont été proposées, mais celles-ci aboutissent dans tous les cas, à une perte de sensibilité du dosage. Il s'agit notamment :
- de supprimer la partie Fc du deuxième anticorps et de coupler directement l'enzyme sur un fragment Fab' [W.G. ABDUL-AHAD et al., J. Reprod. Fert., 1987, 80, 1-9]. Il faut, dans ce cas, appliquer des temps d'incubation et de révélation enzymatique plus longs pour pallier la perte de sensibilité due au traitement du deuxième anticorps : un seuil de détection de 70 pg/ml pour la LH bovine exige un protocole de 20 heures, un protocole court de 4 heures ne donnant qu'un seuil de détection a 260 pg/ml.
- d'appliquer un test permettant de mesurer le niveau des signaux non-spécifiques dépendants de l'échantillon ; pour cela, l'anticorps spécifique non- marqué (AC1) est substitué par un autre anticorps similaire à AC1 mais d'une toute autre spécificité (P. KASPAR et al., J. Immun. Meth., 1988, 108, 61-69). Ceci permet de déterminer la valeur du signal non-spécifique, intrinsèque à chaque échantillon, et d'en tenir compte pour la calibration du dosage mais cela ne supprime en rien ce problème. - de saturer l'anticorps spécifique avec de l'avidine, dans le cas d'un dosage ELISA de l'oestradiol¬
17β, de type compétitif utilisant le complexe avidinebiotine (D.M. BODMER et L.X. TIEFENAUER, 1990, J. Immunoassay, 11, 139-145).
Ainsi, l'ensemble des méthodes précitées présentent un certain nombre d'inconvénients :
. des temps d'incubation longs, notamment dans le cas des LHs animales, non adaptés au dosage ou à la détection sur le terrain (4 h à plus de 24 h) ;
. des dosages qui parfois, ne peuvent pas être réalisés sur le sang total ;
. l'absence de polyspécificité d'espèces de ces dosages ;
. l'existence de signaux non-spécifiques importants, lors de la lecture des résultats, qui peuvent notamment entraîner des difficultés d'interprétation de ces derniers ;
. un seuil de détection élevé, qui en résulte, variant de 100 pg à 1500 pg/ml dans le cas des LHs animales par exemple.
C'est pourquoi la Demanderesse s'est donné pour but de pourvoir à un procédé de dosage des hormones élaborées par les différentes glandes endocrines, applicables à de nombreuses espèces animales, y compris l'homme, qui répond mieux aux besoins de la pratique que les procédés de l'Art antérieur, notamment :
- en ce qu'il peut être réalisé en moins de 3 heures, selon un protocole simple dans des conditions qui peuvent être qualifiées de rustiques,
- en ce qu'il offre une lecture non-ambiguë du résultat, de type "tout ou rien", par l'obtention d'une couleur dans le cas de la détection d'un pic de sécrétion aiguë d'une hormone (exemple : pic préovulatoire de LH), alors que les tests de l'Art antérieur, lorsqu'ils sont basés sur une réaction colorimétrique, nécessitent une interprétation des résultats bien délicate pour une personne non-expérimentée (par exemple la distinction d'un bleu pâle ou foncé ou tout autre nuance de couleur, lesquelles nuances de couleur peuvent de plus, être directement dépendantes de la température, ce qui introduit un facteur supplémentaire d'erreur),
- en ce qu'il peut être semi-quantitatif sans besoin d'aucun appareil de lecture, si une gamme étalon de l'hormone à doser est déposée, en plus des échantilIons à tester, notamment pour distinguer, pour un même animal, le prélèvement contenant, pour la LH par exemple, le début du pic de LH, celui contenant le sommet du pic (valeur maximale) et celui contenant la fin du pic (valeur descendante) ; dans le cas de la LH un tel procédé permet ainsi de synchroniser l'insémination artificielle par rapport au début du pic ou par rapport au sommet du pic et permet également de distinguer les puises de sécrétion de la LH chez le mâle ou la femelle après une incubation du substrat de 15 à 30 mn si nécessaire, pour une étude de la micropulsatilité,
- en ce qu'il présente à la fois une polyspécificité d'espèce et une spécificité de substance,
- en ce qu'il est reproductible,
- en ce qu'il est réalisable sur le terrain (lecture à l'oeil nu) et
- en ce qu'il peut être parfaitement quantitatif en augmentant de façon importante la sensibilité du dosage et en abaissant le seuil de détection.
La présente invention a pour objet un procédé augmentant la sensibilité et la spécificité de la détection et/ou du dosage immunologique d'hormones humaines ou animales, dans des milieux de culture ou dans des fluides biologiques, mettant en oeuvre au moins deux anticorps identiques ou différents, spécifiques de l'hormone à doser, lequel procédé est caractérisé en ce qu'au moins l'un desdits anticorps est préincubé dans un milieu contenant du plasma ou du sérum dépourvu de l'hormone (des hormones) à détecter et/ou à doser.
On entend par anticorps préincubé, au sens de la présente invention, un anticorps "épuisé", -par mise en contact ou passage sur colonne de chromatographie convenable-, par toute substance pouvant induire une interférence sérique non hormonale et non spécifique.
Conformément à l'invention, le fluide biologique est avantageusement du sérum, du plasma, du sang total, du lait ou de l'urine.
Dans la suite de la présente Demande, le milieu contenant du sérum ou du plasma, dépourvu de l'hormone à détecter et/ou à doser est dénommé milieu INC.
Selon un mode de mise en oeuvre avantageux de ce procédé, ledit milieu INC comprend un sérum ou un plasma d'un animal ayant subi l'ablation d'une glande endocrine, appropriée au dosage, et est éventuellement associé à un tampon convenable.
Selon une disposition avantageuse de ce mode de mise en oeuvre, le milieu INC est dépourvu en hormones hypophysaires et comprend avantageusement un sérum ou un plasma d'un animal hypophysectomise approprié, éventuellement associé à un tampon approprié.
On peut notamment citer comme tampon approprié un tampon à pH neutre associé à un agent surfactant et notamment un tampon PBS-Tween-BSA.
Selon une modalité avantageuse de cette disposition, le milieu INC comprend un sérum ou un plasma de bélier hypophysectomise, associé à un tampon approprié.
Selon une autre disposition avantageuse de ce mode de mise en oeuvre, le plasma ou sérum d'animal ayant subi l'ablation d'une glande endocrine appropriée et le tampon approprié sont dans un rapport 1:1.
Conformément à l'invention, ledit procédé est avantageusement un test enzymo-immunométrique, hautement spécifique et sensible, de détection d'au moins une hormone.
Selon un mode de mise en oeuvre avantageux dudit test enzymo-immunométrique, le premier anticorps est fixé sur un support solide approprié et le deuxième anticorps préincubé dans un milieu contenant un plasma ou un sérum dépourvu de l'hormone à détecter et/ou à doser (milieu INC), et éventuellement couplé à une enzyme appropriée, sont mis en contact avec le fluide biologique à tester, après quoi l'activité enzymatique liée à la phase solide et/ou libre est révélée par tout moyen approprié.
Selon une disposition avantageuse de ce mode de mise en oeuvre, lorsque le deuxième anticorps préincubé dans ledit milieu INC n'est pas couplé à une enzyme, la révélation de la réaction est alors réalisée par l'introduction d'un troisième anticorps couplé à une enzyme appropriée, préincubé dans ledit milieu INC et se liant spécifiquement au deuxième anticorps.
Selon une autre disposition avantageuse de ce mode de mise en oeuvre, ledit milieu INC est dépourvu d'hormones hypophysaires.
Conformément à cette dernière disposition, les premier et deuxième anticorps sont avantageusement choisis dans le groupe qui comprend les anticorps monoclonaux anti-FSH, anti-LH, anti-TSH, anti-GH, anti-ACTH, antiprolactine, anti-ocytocine, anti-ADH, anti-MSH, anti-hCG et anti-eCG et les anticorps polyclonaux anti-FSH, antiLH, anti-TSH, anti-GH, anti-ACTH, anti-prolactine, antiocytocine, anti-ADH, anti-MSH, anti-hCG et anti-eCG.
Selon une modalité avantageuse de cette disposition, les anticorps polyclonaux anti-LH sont notamment obtenus par immunisation d'un animal approprié par un mélange de différentes isoformes de LH ovine, puis par purification convenable de l'immunserum obtenu, lesquels anticorps polyclonaux présentent un pourcentage de réac tions croisées avec les autres hormones glycoprotéiques telles que la FSH, inférieur à 4 %, c'est-à-dire une spécificité vis-à-vis de la LH, en ce qu'ils présentent une polyspécificité de reconnaissance de la LH de nombreuses espèces animales et notamment au moins des espèces ovines, bovines, caprines, porcines, canines, camelines, murines ainsi que les cervidés et en ce qu'ils présentent une affinité vis-à-vis de la LH ovine de l'ordre du 109M-1 , respectivement dans deux espèces animales différentes.
Conformément à cette modalité avantageuse, les premier et deuxième anticorps sont avantageusement choisis dans le groupe qui comprend des anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine et des anticorps polyclonaux de Cheval anti-LH ovine et le troisième anticorps est avantageusement choisi dans le groupe qui comprend les antiIgG de Cheval et les anti-IgG de Lapin couplés à une enzyme appropriée.
Egalement conformément à cette modalité avantageuse, le premier anticorps est un anticorps polyclonal de Lapin anti-LH ovine, le deuxième anticorps est un anticorps polyclonal de Cheval anti-LH ovine et le troisième anticorps est un anti-IgG de Cheval couplé à une enzyme appropriée et notamment à une peroxydase ou à une β-galactosidase.
Egalement conformément à cette modalité avantageuse, le mélange de différentes isoformes de LH ovines, mis en oeuvre pour l'immunisation contient avantageusement au moins deux isoformes de LH ovines.
Les différentes isoformes de LH ovines sont de préférence en quantités équimolaires.
Une purification convenable desdits anticorps polyclonaux anti-LH peut être réalisée, selon le cas, soit par chromatographie d'affinité, soit par chromatographie d'échange d'ions.
Selon un autre mode de mise en oeuvre dudit test enzymo-immunométrique, préalablement à l'introduction du deuxième anticorps, le support solide est saturé en milieu INC.
En effet, de manière inattendue, la préincuba- tion avec le milieu INC, tel que défini ci-dessus, permet :
- d'éliminer les problèmes de signal non-spécifique habituellement rencontrés dans ce type de dosage, en neutralisant toute interférence sérique non spécifique pouvant conduire à une diminution de la sensibilité d'un dosage,
- d'augmenter considérablement, de ce fait, la sensibilité de ce type de dosage, particulièrement importante dans le cas des hormones à faible taux circulant,
- de doser ainsi l'ensemble des hormones et notamment des hormones hypophysaires et placentaires appropriées, en obtenant des résultats correctement et aisément interprétables.
En conséquence, le dosage immunologique et plus particulièrement le dosage enzymo-immunométrique des hormones, conforme à l'invention, présente à la fois les caractéristiques d'un dosage quantitatif en apportant une très bonne sensibilité ainsi qu'une très bonne reproductibilité, et d'un dosage qualitatif par sa facilité de réalisation et d'interprétation.
L'efficacité et les avantages du procédé conforme à l'invention décrit ci-dessus est illustrée en particulier par le dosage enzymo-immunométrique de l'hormone lutéinisante (LH). En effet, ce dosage présente à la fois les caractéristiques d'un dosage quantitatif en apportant une très bonne sensibilité (seuil de détection : 60 pg/ml) ainsi qu'une très bonne reproductibilité, et d'un dosage qualitatif par sa facilité de réalisation et d'interprétation. Il peut donc être utilisé aussi bien au laboratoire pour des dosages très précis (ex : mesure de la micropulsatilité de la sécrétion de LH) que sur le terrain (détection du pic préovulatoire de LH pour l'insémination artificielle de femelles synchronisées et/ou de femelles superovulées, donneuses d'embryons).
Ce dosage de la LH, utilisable chez de nombreuses espèces : bovine, ovine, caprine, porcine, cameline, canine, murine, cervidés, permet la détection précise du pic préovulatoire de LH chez la femelle et présente un intérêt physiologique et agronomique évident. II va, de plus, permettre une bonne estimation du moment optimal choisi pour l'insémination artificielle dans chaque espèce concernée. En effet, l'intervalle entre le pic de LH et l'ovulation est constant pour chaque espèce ; par contre, l'intervalle de temps séparant la venue en chaleurs (repère utilisé jusqu'à présent) et le pic de LH est très fluctuant selon les individus d'une même race.
Le test conforme à l'invention s'avère donc un outil indispensable pour bien maîtriser ce facteur de variabilité important pour la réussite de la fécondation des ovocytes et de la collecte d'embryons de bonne qualité. En effet, connaissant le moment précis de l'ovulation, grâce à la détection du pic de LH, et de l'insémination artificielle, on peut en déduire à quel stade de développement seront les embryons que l'on veut collecter. Ce point est important dans la mesure où des embryons trop jeunes ou trop avancés ne sont pas commercialisables (ex : avec membrane pellucide rompue).
Enfin, ce test de dosage de la LH animale est intéressant dans le cadre de la mise au point d'un nouveau traitement (synchronisation, superovulation) ou de l'extension de ces traitements à une race, voire à une espèce dont la physiologie préovulatoire est mal connue (ex : cervidés).
De même, le dosage enzymo-immunométrique de la
LH humaine, réalisé selon le procédé conforme à l'invention, présente à la fois les caractéristiques d'un dosage quantitatif par la très bonne sensibilité acquise grâce audit procédé et d'un dosage qualitatif par sa facilité de réalisation et d'interprétation acquise également par le procédé selon l'invention. Il peut donc être utilisé en laboratoire ou à domicile pour un usage individuel ("Home test") ; il servira, dans ce dernier cas, de kit de détection du pic préovulatoire de LH, caractérisé par l'apparition d'une couleur verte non- ambiguë, et permettant de prévoir le moment de l'ovulation chez la femme.
Par ailleurs, lorsque l'on désire réaliser un dosage présentant une polyspécificité d'espèce, les anti- corps doivent présenter des qualités particulières ; en ce cas, le choix des anticorps est important pour une mise en oeuvre appropriée du procédé conforme à l'invention. C'est dans ce but que la Demanderesse a également mis au point des anticorps particulièrement adaptés au procédé conforme à l'invention.
La présente invention a également pour objet des anticorps polyclonaux anti-LH, caractérisés en ce qu'ils sont obtenus par immunisation d'un animal approprié par un mélange de différentes isoformes de LH ovine, puis par purification convenable de l'immunserum obtenu, en ce que lesdits anticorps polyclonaux présentent un pourcentage de réactions croisées avec les autres hormones glycoprotéiques telles que la FSH, inférieur à 4 %, c'est-à-dire une spécificité vis-à-vis de la LH, en ce qu'ils présentent une polyspécificité de reconnaissance de la LH de nombreuses espèces animales et notamment au moins des espèces ovines, bovines, caprines, porcines, canines, camelines, murines ainsi que les cervidés et en ce qu'ils présentent une affinité vis-à-vis de la LH ovine de l'ordre du 109M-1.
Selon un mode de réalisation avantageux desdits anticorps, l'animal approprié est le Lapin ; on ob tient ainsi des anticorps polyclonaux anti-LH ovine chez le Lapin.
Selon un autre mode de réalisation avantageux desdits anticorps, l'animal approprié est le Cheval ; on obtient ainsi des anticorps polyclonaux anti-LH ovine chez le Cheval.
Selon un autre mode de réalisation avantageux desdits anticorps, le mélange de différentes isoformes de LH ovine, mis en oeuvre pour l'immunisation, contient avantageusement au moins deux isoformes de LH ovine.
Selon une disposition avantageuse de ce dernier mode de réalisation, les différentes isoformes de LH ovine sont en quantités équimolaires.
Une purification convenable desdits anticorps polyclonaux anti-LH peut être réalisée, selon le cas, soit par chromatographie d'affinité, soit par chromatographie d'échange d'ions.
La présente invention a, de plus, pour objet un réactif pour la mise en oeuvre du procédé de détection et/ou de dosage immunologique d'hormones chez l'animal y compris l'homme, conforme à l'invention, caractérisé en ce qu'il comprend un anticorps anti-hormone propre à être utilisé comme premier, deuxième et/ou troisième anticorps dans ledit procédé, lequel anticorps est préincubé dans un milieu INC.
La présente invention a, de plus, pour objet une trousse de détection et/ou de diagnostic d'hormones telles que les hormones hypophysaires (la FSH, la LH, la TSH, la GH, l'ACTH, la prolactine, l'ocytocine, l'ADH, la MSH), les hormones thyroïdiennes, les hormones surrénales, les hormones génitales et les hormones pancréatiques chez l'homme ou l'animal, l'hCG et l'eCG, ou kit pour la mise en oeuvre du test conforme à l'invention, caractérisé en ce qu'il comprend outre des quantités utiles de tampons appropriés pour la mise en oeuvre de ladite détection : - des doses appropriées d'un anticorps choisi parmi les anticorps anti-hormone convenable, y compris les anticorps anti-LH et les réactifs conformes à l'invention ;
- des doses appropriées de conjugués enzyme appropriée et anticorps, lequel anticorps est choisi dans le groupe qui comprend les anticorps anti-hormone convenable y compris les anticorps anti-LH et les réactifs conformes à l'invention, ou dans le groupe qui comprend les anti-IgG convenables, lesquels conjugués sont préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ;
- des quantités ou doses appropriées d'un substrat de révélation de l'enzyme ;
- un support solide approprié si nécessaire ; et
- des quantités ou doses appropriées d'un milieu INC,
Selon un mode de réalisation avantageux dudit kit, lorsqu'il est mis en oeuvre pour le dosage de la LH, il comprend :
- des doses appropriées d'un anticorps polyclonal choisi parmi les anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine, les anticorps polyclonaux de Cheval antiLH ovine conformes à l'invention et les réactifs conformes à l'invention contenant l'un des anticorps polyclonaux anti-LH ovine précités ;
- des doses appropriées de conjugués enzyme appropriée et anticorps, lequel anticorps est choisi dans le groupe qui comprend les anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine, les anticorps polyclonaux de Cheval antiLH ovine conformes à l'invention ou dans le groupe qui comprend les anti-IgG de Cheval et les anti-IgG de Lapin, lesquels conjugués sont préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ;
- des quantités ou doses appropriées d'un sub strat de révélation de l'enzyme ;
- un support solide approprié, si nécessaire ;
- un capillaire de prélèvement ; et
- éventuellement, des quantités ou doses appropriées d'un milieu INC.
Selon un autre mode de réalisation avantageux de ce kit, l'enzyme est choisie dans le groupe qui comprend les peroxydases et la β-galactosidase.
Les substrats de révélation de la peroxydase sont avantageusement l'OPD et l'ABTS ; le substrat de révélation de la β-galactosidase est avantageusement le 4- méthylumbelliféryl-β-D-galactopyranoside (MUG) et l'or- tho-nitrophényl-β-O-galactopyranoside (ONPG).
Le support solide est avantageusement choisi parmi les supports connus tels que les plaques de microtitration, les sticks, les bandelettes, les billes ou les membranes.
Selon un autre mode de réalisation avantageux de ce kit, il comprend :
- une série de supports solides convenables revêtus d'un anticorps choisi parmi les anticorps antihormone convenable, y compris les anticorps anti-LH et les réactifs conformes à l'invention, lesquels supports solides sont éventuellement saturés en milieu INC ;
- des doses appropriées d'un anticorps choisi dans le groupe qui comprend les anticorps anti-FSH, anti-LH, y compris les anticorps anti-LH conformes à l'invention, anti-TSH, anti-GH, anti-ACTH, antiprolactine, anti-ocytocine, anti-ADH, anti-hCG, anti-eCG et anti-PMSG, différents du premier anticorps et les réactifs conformes à l'invention ;
- des doses appropriées de conjugués peroxydase-anti-IgG convenables, préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ; et
- des quantités appropriées d'un substrat de révélation de la peroxydase. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, il comprend :
- une série de supports solides convenables revêtus d'un anticorps choisi dans le groupe qui comprend les anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine conformes à l'invention et les réactifs conformes à l'invention contenant l'anticorps polyclonal de Lapin précité, lesquels supports solides sont éventuellement saturés en milieu INC ;
- des doses appropriées d'un anticorps choisi dans le groupe qui comprend les anticorps polyclonaux de Cheval anti-LH ovine et les réactifs conformes à l'invention contenant l'anticorps polyclonal de Cheval précité ;
- des doses appropriées de conjugués peroxy- dase-anti-IgG de Cheval préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ;
- des quantités appropriées d'un substrat de révélation de la peroxydase ; et
- un capillaire de prélèvement.
Selon une autre disposition avantageuse de ce mode de réalisation, il comprend :
- une série de supports solides convenables revêtus d'un anticorps choisi dans le groupe qui comprend les anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine conformes à l'invention et les réactifs conformes à l'invention contenant l'anticorps polyclonal de Lapin précité, lesquels supports solides sont éventuellement saturés en milieu INC ;
- des doses appropriées de conjugués β-galac- tosidase-anticorps polyclonaux de Cheval anti-LH ovine préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ;
- des quantités appropriées d'un substrat de révélation de la β-galactosidase ; et
- un capillaire de prélèvement. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions qui ressortiront de la description qui va suivre.
L'invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de réalisation des anticorps polyclonaux conformes à l'invention et des exemples de mise en oeuvre du test conformes à l'invention.
Il doit être bien entendu, toutefois, que ces exemples et dessins sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation.
EXEMPLE 1 : Préparation des anticorps polyclonaux antiLHs animales conformes à l'invention.
1) Caractéristique de l'immunogène :
L'antigène utilisé pour les immunisations est un mélange équimolaire de différentes fractions purifiées de LH ovine (oLH). Ces fractions ont été répertoriées ainsi :
oLH 1051 1083
1055 1085
1072 1086
2 ) Procédé d ' obtention des anticorps polyclonaux anti-LH :
a.2) anticorps fait chez le cheval (poney MW5)
Chaque injection contient 1 mg du mélange oLH précisé ci-dessus, dissous dans 2,5 ml de sérum physiologique stérile et préparé en émulsion dans 2,5 ml d'adjuvant de Freund complet.
Le protocole d'immunisation consiste en 6 injections suivies de 8 rappels après chacun desquels a été réalisée une saignée, 2 semaines plus tard. La séquence exacte des injections est illustrée sur le schéma I ciaprès :
Figure imgf000023_0002
2 semaines mois mois mois mois mois mois mois mois
1/2
pas de
Figure imgf000023_0003
une saignée 2 semaines après chaque
saignée rappel
Schéma I
b.2) anticorps fait chez le lapin :
Chaque injection contient 0,1 mg du mélange oLH, dissous dans 0,5 ml de sérum physiologique stérile. Le tout est préparé en emulsion dans 0,5 ml d'adjuvant de Freund complet et injecté en multiples points le long de la colonne vertébrale (injections intra-dermiques).
Le protocole d'immunisation a consisté en 4 injections réalisées toutes les deux semaines. Puis, a suivi une série de 12 rappels effectués selon la séquence illustrée ci-après dans le schéma II :
Figure imgf000023_0001
Schéma II
Les saignées sont réalisées deux semaines après les rappels indiqués à l'exception de S5 qui a été réalisée quatre semaines après R7.
Trois lapins ont été immunisés : deux ont reçu les 12 rappels, un n'a reçu que 6 rappels.
3) Procédés de purification des anticorps polyclonaux anti-LH :
a.3) Purification de l'immunsérum de cheval :
Cette purification se fait par chromatographie d'échanges d'ions sur DEAE-Trisacryl (IBF-FRANCE) en colonne K26/40 de PHARMACIA.
L'immunserum (15 ml) est dialyse une nuit contre un tampon Tris-HCl 0,025 M, NaCl 0,035 M, pH 8,8 à 4ºC. Parallèlement, la colonne est équilibrée avec ce même tampon. Après filtration du sérum dialyse, celui-ci est passé sur la colonne avec un débit de 50 ml/heure. La fraction éluée obtenue à la sortie de colonne, contient les IgG du sérum et représente la fraction enrichie en anticorps que l'on utilise dans le dosage. Avant utilisation, cette fraction est dialysée contre du PBS pH 7,4 (0,01 M de KH2PO4/K2HPO4, NaCl 0,15 M). Elle est ensuite concentrée par ultrafiltration sur support MINI- CON (AMICON, Irlande) jusqu'à obtenir une concentration comprise entre 5 et 10 ng/ml. Elle est stockée sous forme d'aliquots à -20ºC, diluée dans 50 % de glycérol bi-dis- tillé.
b.3) Purification de l'immunsérum de lapin :
La purification se fait par chromatographie d'affinité sur protéine A. On utilise le gel Protéine A-
Sépharose CL-4B (PHARMACIA) coulé dans une colonne
2 X 10 cm (PHARMACIA) . Le sérum (5 ml) est préalablement dialyse contre du tampon phosphate 0,1 M pH 8, filtré et passé sur la colonne équilibrée avec le même tampon (débit : 15 ml/h).
Les immunoglobulines sont désorbées en utilisant un gradient de pH allant de 6 à 4,5 et préparé avec un tampon citrate-acide citrique 0,1 M puis avec un tampon pH 3 (acide acétique 0,1 N, NaCl 0,15 M).
Les fractions éluées sont neutralisées avec du tampon phosphate 1 M pH 8, et dialysées contre du PBS avant d'être concentrées par ultrafiltration (cf ci-dessus) et stockées à -20ºC dans 50 % de glycérol bi-dis- tillé.
Les protocoles expérimentaux utilisés en 3 a) et b) ont été réalisés selon les indications données par les fournisseurs et complétées avec "Techniques immunoenzymatiques" Th. TERNYNCK et S. AVRAMEAS, éditions IN- SERM, 1987.
Dans tous les cas, la concentration exacte des fractions purifiées est évaluée par une mesure de la densité optique à 280 nm en considérant qu'une d.o. de 1,4 correspond approximativement à une solution d'IgG à 1 mg/ml.
4) Caractéristiques et spécificité des anticorps anti-LH conformes à l'invention :
. réactions croisées :
Compte-tenu de la parenté structurale avec d'autres hormones glycoprotéiques, il est indispensable pour obtenir un dosage fiable, de disposer d'anticorps ne reconnaissant que la LH et ne présentant aucune réaction croisée avec la FSH et la TSH dans les espèces animales étudiées. En conséquence, diverses FSH et TSH ont été testées dans le dosage pour en évaluer le pourcentage de réaction croisée.
De la même façon, des LH de différentes espèces animales ont été testées dans le dosage et leur pourcentage de réaction croisée a été calculé.
Le pourcentage de réaction croisée est calculé de façon classique en comparant les courbes dose-réponse obtenues d'une part, avec une gamme de concentrations de chaque LH testée et, d'autre part, avec une gamme de concentrations de LH ovine. A partir de la courbe "référence" obtenue avec la LH ovine, soit Y la concentration donnant 50 % du signal optique maximal (E.D.50). A partir de la courbe obtenue avec une autre LH, soit X la concentration correspondante à la même densité optique que celle utilisée pour définir Y :
Le pourcentage de réaction croisée est égal à x 100
Figure imgf000026_0001
a) Réactions croisées obtenues avec les diffé
Figure imgf000026_0003
b) Réactions croisées obtenues avec les FSH et TSH des espèces animales pour lesquelles la LH est reconnue par les deux anticorps (AP1 et AP2) spécifiques du
Figure imgf000026_0002
II faut remarquer que le pourcentage de réaction croisée avec la TSH ovine est élevé (8 %) et est peut être dû à une contamination élevée dans la préparation hormonale utilisée.
. Affinité des anticorps anti-LH (anticorps lapin et cheval) utilisés dans le dosage :
La constante d'affinité (Ka) a été mesurée selon la méthode décrite par B. FRIGUET et al. ((1985), J. Immunol. Methods, vol. 77, 305-319) et est calculée selon la représentation de KLOTZ :
. anticorps de Lapin anti-LH ovine,
Ka = 1,87.109M-1
. anticorps de Cheval anti-LH ovine,
Ka = 2.109M-1. EXEMPLE 2 : Test immunoenzymométrique conforme à l'invention : dosage de LHs animales.
A - Principe du dosage :
Il s'agit d'un dosage ELISA (Enzyme-Linked- ImmunoSorbant-Assay) c'est-à-dire que l'ensemble des réactifs sont liés à une phase solide. La phase solide utilisée est, de manière non limitative, une plaque de microtitration à 96 puits en Luxlon (plastique hydrophobe), mais le dosage peut être réalisé sur d'autres types de plaques ou d'autres types de supports, notamment des sticks, des bandelettes, des billes ou des membranes.
Le dosage conforme à l'invention, de type "sandwich", utilise deux anticorps polyclonaux tels que définis ci-dessus, c'est-à-dire fabriqués à partir d'un même antigène, la LH ovïhe, mais produits chez deux espèces animales différentes (le lapin et le poney) :
- le premier anticorps (API) est fixé sur le fond des puits d'une plaque de microtitration. Ce premier anticorps a été produit chez un lapin ;
- après lavages de la plaque, on sature éventuellement la plaque avec un milieu approprié additionné de sérum ou de plasma dépourvu de LH. Ce milieu est ciaprès dénommé milieu INC ;
- l'échantillon à doser est incubé ; un volume de 10 μl par puits est nécessaire c'est-à-dire que le dosage peut se faire à partir d'une goutte de plasma ou de sang. Le dosage à partir du sang se fait dans un milieu modifié contenant de l'héparine, ci-après dénommé milieu S ;
- lavages de la plaque, incubation du deuxième anticorps préalablement dilué dans le milieu INC. Ce deuxième anticorps a été produit chez un poney ;
- lavages de la plaque, incubation d'un troisième anticorps couplé à une enzyme (anticorps de chèvreanti-IgG de cheval couplé à la peroxydase ou à la βgalactosidase). Avant son dépôt, l'anticorps est préala blement dilué dans le milieu INC ;
- après lavages, l'activité enzymatique liée à la phase solide est révélée à l'aide d'un substrat chromogène ou fluorogène spécifique de l'enzyme utilisée. L'intensité de la réaction colorée ou du signal fluorescent obtenus est proportionnelle à la concentration de la LH contenue dans l'échantillon dosé comme le montrent les courbes de la figure 1. Le temps de réaction nécessaire est de 5 minutes pour une détection de pic préovulatoire et de 15 minutes pour une mesure quantitative précise de taux circulants bas.
Le rôle de l'ordre d'utilisation des deux anticorps spécifiques a été déterminé en comparant les deux combinaisons possibles :
. courbe (-■-) : AP1 Lapin
AP2 Cheval et
. courbe (-■-) : AP1 Cheval
AP2 Lapin.
Les résultats, présentés sur la figure 1, ont été obtenus à partir d'une gamme de dilutions de la LH ovine réalisée dans du tampon phosphate (gamme standard).
Comme on le distingue très nettement, la combinaison AP1
Lapin/AP2 Cheval (-■-) donne de meilleurs résultats tant d'un point de vue seuil de détection que sensibilité du dosage.
Le fait d'avoir utilisé deux anticorps faits chez deux espèces animales distinctes est crucial pour l'obtention de la sensibilité améliorée du test conforme à l'invention, par rapport aux tests de l'Art antérieur. Cette sélection particulière d'anticorps polyclonaux donne plus de probabilités à la molécule de LH d'être reconnue par des épitopes différents par chacun des immunsérums par rapport à des immunsérums faits chez la même espèce. La figure 2 montre la diminution de la sensibilité du dosage lorsqu'on utilise deux anticorps
(AP1 et AP2) faits chez la même espèce (Cheval, par exemple : AP1 = AP Cheval à 10 μg/ml et AP2 = AP Cheval-β- galactosidase à 5 μg/ml).
L'utilisation d'un même anticorps comme AP1 et comme AP2 (courbe -*-) aboutit à une perte considérable de la sensibilité du dosage comme en témoignent les courbes de la figure 2. On observe, pour la concentration de oLH donnant 50 % de liaison, une sensibilité de 250 pg/ml dans le cas d'un protocole conforme à l'invention (AP1 Lapin, AP2 Cheval, AP3 anti Cheval-per- oxydase ; courbe (..♢..) contre 1,8 ng/ml dans le cas d'un protocole à deux anticorps identiques (courbe -*-), comme précisés ci-dessus. Ce dernier chiffre correspond à une efficacité résiduelle de 15 %, par rapport au dosage réalisé dans les conditions optimales (conformes à l'invention, voir notamment exemple 3 ci-après). Le pourcentage de liaison a été calculé selon la formule B-NS/T, dans laquelle B est la densité optique mesurée pour chaque point de la gamme, NS est la densité optique mesurée pour le point zéro de la gamme et T représente la densité optique mesurée pour le point le plus haut de la gamme.
B - Caractéristiques des milieux d'incubation conformes à l'invention :
1) Milieu de dilution du sang :
Dans le cas d'un dosage réalisé directement à partir du sang, le milieu de dilution du prélèvement doit être additionné d'héparine pour éviter la coagulation. Le sang est donc récupéré dans du PBS-Tween-BSA additionné de 0,2 % d'héparine, soit 100 μl d'héparine pour 50 ml de PBS-Tween-BSA (voir Exemple 3).
2) Milieu INC :
2. a) composition du milieu INC :
Ce milieu est composé d'au moins 50 % de sérum ou de plasma de bélier hypophysectomise dilué dans du PBS-Tween-BSA.
2.b) obtention du sérum de bélier hypophysec tomisé :
L'animal est mis à jeun 48 heures avant l'opération. Celle-ci est réalisée sous anesthésie ; l'ablation de l'hypophyse se fait par le plancher buccal.
Des prélèvements de sang sont effectués tous les jours afin de contrôler la chute du taux de LH circulante à partir de l'hypophysectomie. Lorsque celui-ci n'est plus détectable, l'animal est anesthésie et saigné à blanc. Le sang est collecté sous héparine pour récupérer le plasma ou est mis à coaguler pour en séparer le sérum. Plasma et sérum sont conservés à -20ºC.
L'animal est saigné entre 5 et 7 jours après l'hypophysectomie.
2.c) Intérêt du milieu INC dans le dosage : II est indispensable, dans un dosage plasmatique, de réaliser la gamme standard dans un milieu de dilution contenant la même proportion de plasma que les préparations d'échantillons à doser. Si ceux-ci sont dilués dix fois, la gamme standard sera réalisée avec du sérum d'animal hypophysectomise (LH-) dilué dix fois dans du tampon de dilution normal (PBS-BSA-Tween). La figure 3 rapporte les résultats obtenus avec une gamme standard préparée dans du tampon de dilution (-■-) et ceux obtenus avec une gamme réalisée dans ce même tampon additionné de 10 % de sérum d'animal hypophysectomise (-■-) (dosage de type AP3-peroxydase/OPD, voir Exemple 3). On observe une interférence, particulièrement gênante, du sérum LH- dans le dosage, surtout dans la zone des faibles concentrations de LH ovine (oLH), qui masque toute la sensibilité réelle du dosage.
En conséquence, les deux immunsérums anti-LH ont été épuisés sur des IgG de mouton afin d ' éliminer toute interférence entre IgG provenant d'espèces animales différentes (ovine d'une part, lapine et équine d'autre part). Les résultats obtenus n'ont montré qu'une faible diminution du signal non-spécifique important, observé sans épuisement préalable.
Il semblerait qu'une autre source d'interférence puisse intervenir, due par exemple à une substance immunologiquement proche de la LH et reconnue comme telle.
Des résultats semblables ont été décrits dans un dosage radioimmunologique de la LH chez le singe Rhésus (NEILL et al., 1977, PECKHAM et al., 1977). En utilisant de la LH ovine comme traceur iodé et un anticorps anti-LH ovine, les Auteurs ont observé une interférence non spécifique très importante pour les faibles concentrations de gamme ; à l'inverse ils n'observaient pas d'interférence en utilisant de la LH de singe iodée et un anticorps anti-LH de singe. Cette substance "LH- like" n'a pas été purifiée et son effet interférant n'a pas été contourné par les Auteurs.
Le procédé conforme à l'invention a pour sa part, l'avantage de permettre d'éliminer cette difficulté, grâce au milieu INC qui a permis la mise au point d'un dosage très sensible, fiable et rapide.
C - Substrats et conjugués enzymatiques :
Ce dosage n'est pas dépendant de l'enzyme utilisée comme marqueur. Deux enzymes ont été utilisées jusqu'à présent, la peroxydase et la β-galactosidase, la première avec deux substrats chromogènes, la deuxième avec un substrat fluorogène.
1) Substrats utilisés :
* pour la peroxydase :
. l'OPD (ortho-phénylènediamine)
. l'.ABTS (2-2'-azino-bis(3-éthylbenz- thiazoline-6-sulfonique acide).
- l'OPD est préparé extemporanément à 0,5 mg /ml dans du tampon acétate (0,1 M d'acétate de sodium) pH 5,6, additionné d'eau oxygénée à 0,2 %.
La mesure de la densité optique se fait à
492 nm ; la réaction se traduit par l'apparition d'une couleur orange à brune et est arrêtée avec 50 μl d'acide sulfurique 2N.
- l'ABTS est préparé dans du tampon citrate 0,05 M pH 4 : pour 12 ml de tampon citrate on rajoute 60 μl d'ABTS stock et 50 μl d'eau oxygénée à 2 %, la mesure de la densité optique se fait à 405 nm.
Sous l'action de la peroxydase, l'ABTS incolore devient vert.
. Tampon citrate : 2 volumes d'acide citrique ((5,3 g/l) C6H8O7, 1H2O) + un volume de phosphate de sodium (Na2HPO4, 12 H2O) (17,73 g/l). La réaction peut être arrêtée avec 20 μl de SDS 10 %, ceci n'ayant aucun caractère obligatoire.
* Pour la β-galactosidase :
- le 4-méthylumbelliféryl-β-D-galactopyranoside (MUG), produit commercial (SIGMA M 1633) :
2,5 mg sont dissous dans 12,5 ml de tampon phosphate 0,1 M, pH 7,4 (voir composition dans Exemple 3). La réaction est arrêtée avec 50 μl de carbonate de sodium 2 M.
La lecture du signal fluorescence se fait avec un spectrofluorimètre pour plaques ELISA.
La longueur d'onde d'excitation = 360 nm, la longueur d'onde d'émission = 448 nm.
2) Conjugués enzymatiques :
* l'anticorps conjugué à la peroxydase (AP3 : anticorps-anti-IgG de cheval couplé à la peroxydase est disponible dans le commerce : Jackson Immunoresearch Laboratories Inc., code nº 108-035-003.
* l'anticorps conjugué à la β-galactosidase a été réalisé selon deux optiques :
- soit l'anticorps anti-LH de cheval est couplé directement à la β-galactosidase (AP2-β-gaiactosidase),
- soit un anticorps anti-IgG de cheval est couplé à la β-galactosidase (AP3-β-galactosidase). * réalisation du couplage :
Elle a été conduite selon le procédé de couplage au glutaraldéhyde en deux temps (Techniques Immunoenzymatiques, Th. TERNYNCK et S. AVRAMEAS., Editions INSERM, 1987, pages 33-34).
L'anticorps anti-LH de cheval est purifié sur chromatographie d'échanges d'ions (DEAE) ainsi que l'anticorps anti-IgG de cheval (fait chez le mouton).
D - Tampons :
* Tampon carbonate 0,1M pH 9,6 : diluer 10 fois une solution molaire de carbonate-bicarbonate de sodium dans de l'eau distillée.
* PBS : diluer 100 fois une solution molaire de phosphate de potassium mono- et bi-potassique pH 7,4 dans une solution à 0,15 M de NaCl.
* PBS-Tween : ajouter 0,1 % (1 ml dans 1 litre) de Tween 20 dans le PBS.
* PBS-Tween-BSA : ajouter 0,2 % de BSA dans le PBS-Tween.
EXEMPLE 3 : Dosage colorimétrique quantitatif avec le système AP3-peroxydase : dosage de LHs animales
l.a) Système AP3-peroxydase/substrat ABTS :
* sensibilisation des plaques ou coating :
100 μl de l'anticorps anti-LH ovine de lapin (AP1) préparé dans du tampon carbonate 0,1 M pH 9,6 à la concentration de 7,5 μg/ml sont distribués par puits. La plaque est incubée 1 heure à 37ºC puis une nuit à 4ºC. Ensuite, la plaque est lavée avec du PBS-Tween 5 fois à raison de 300 μl par puits, soit manuellement, soit avec un laveur automatique pour plaque ELISA.
L'API peut être préparé à une concentration différente : 10 μg/ml ou 5 μg/ml ; les concentrations extrêmes étant de 20 μg/ml et de 2,5 μg/ml. * Surcoating ou saturation des puits :
Après lavage, les puits sont remplis de 100 μl de milieu INC et la plaque est incubée 30 minutes à 37ºC.
A cette étape, la plaque est soit utilisée pour la suite du dosage, soit vidée, mise à sécher à 37ºC puis gardée dans une atmosphère sèche, scellée sous plastique.
* incubation des échantillons et de la gamme : La gamme de oLH (LH ovine) est préparée dans du PBS-Tween-BSA contenant du sérum d'animal hypophysectomisé dilué au 1/10e. Elle comprend les concentrations suivantes : 60 pg/ml, 125 pg/ml, 250 pg/ml; 500 pg/ml, 1 ng/ml, 2 ng/ml, 4 ng/ml, 8 ng/ml et éventuellement 40 ng/ml de oLH. Elle est déposée en double à raison de 100 μl par puits.
Les plasmas à doser sont dilués 10 fois dans du PBS-Tween-BSA. Ils sont déposés en double ou en triple, à raison de 100 μl par puits. (La dilution de 1/10e n'est pas impérative et pourra être supérieure ou inférieure si cela est nécessaire). Le tout est mis à incuber 1 heure à 37ºC. Après quoi, la plaque est lavée 5 fois avec du PBS-Tween (300 μl/puits) de la même façon que ci-dessus.
* incubation du deuxième anticorps anti-LH (cheval) :
Cet anticorps, AP2, est préalablement préparé dans du milieu INC : il est dilué à la concentration de 5 μg/ml dans le milieu INC et mis à incuber 30 minutes à 37ºC avant d'être déposé dans les puits à raison de 100 μl par puits.
LΑP2 une fois distribué, la plaque est mise à incuber 1 heure à 37ºC. Comme dans le cas de l'APl de lapin, la concentration de 5 μg/ml pour l'AP2 n'est pas obligatoire mais elle doit dans tous les cas être inférieure à celle de l'APl. Elle peut être comprise entre 15 μg/ml (si API est à 20 μg/ml) à 2,5 μg/ml, voire 1 μg/ml (si AP1 est à 2,5 μg/ml). Après l'incubation, la plaque est lavée 5 fois de la même façon que précédemment avec du PBS-Tween.
* incubation du troisième anticorps anti-IgG de cheval couplé à la peroxydase :
L'AP3 est également préincubé 30 mn à 37ºC dans le milieu INC à la dilution de 1/5000e (selon l'indication du fabricant) avant d'être déposé dans les puits (100 μl par puits). On laisse incuber 1 heure à 37ºC. La plaque est ensuite lavée 5 fois avec du PBS- Tween.
* dépôt du substrat de la peroxydase :
On dépose 100 μl d'ABTS préparé comme précisé ci-dessus (C) ; au bout de 5 minutes, les puits corres- pondant à une forte concentration de oLH, sont colorés en vert.
Après 15 minutes d'incubation à 37ºC, une première mesure de la densité optique est effectuée pour fournir une première indication de développement de la réaction. Après quoi, la plaque est à nouveau mise à incuber 15 minutes à 37ºC, si la réaction nécessite d'être poursuivie, notamment dans le cas d'échantillons à faible teneur en LH. Puis, on procède à une lecture définitive des résultats. On peut arrêter la réaction enzymatique en ajoutant 20 μl de SDS à 10 % par puits.
La lecture de la densité optique se fait à l'aide d'un spectrophotomètre automatique pour plaques ELISA, muni d'un filtre à 405 nm.
La figure 4 présente les résultats d'un tel dosage réalisé en présence de milieu INC, avec une gamme de concentrations de oLH faite dans du PBS-BSA-Tween (-■-) et avec une gamme réalisée dans du LH- (sérum d'animal hypophysectomise) dilué au 1/10e avec du PBS- BSA-Tween (-■-). La superposition parfaite des deux courbes indique que l'interférence non-spécifique décrite ci-dessus est totalement éliminée. On constate également une amélioration de la sensibilité du dosage par rapport à la courbe ( -■-) de la figure 3.
L'effet du milieu INC est le même, qu'il soit composé de 50 % de plasma ou de sérum d'animal hypophysectomise.
La proportion de 50 % de LH- dans le milieu
INC n'est pas impérative et peut être augmentée. En dessous de 50 % cependant, l'interférence non-spécifique décrite n'est plus totalement éliminée.
La figure 5 illustre la courbe obtenue, dans ces conditions, avec une gamme standard préparée dans le milieu de dilution indiqué ci-dessus. (La figure 5 a été obtenue dans les mêmes conditions e.xpérimentales que la courbe (--■--) de la figure 4. Le seuil de détection du dosage est de 60 pg/ml. Le coefficient de variation intra-dosage est de 2,5 % (n = 10), le coefficient de variation inter-dosage est de 6 % (n = 8).
Le protocole exposé ci-dessus est un mode de réalisation non limitatif tant pour les concentrations d'anticorps que pour les temps d'incubation du substrat que l'on peut varier. Les conditions expérimentales présentées ci-dessus représentent' un mode de réalisation préféré pour le développement d'un dosage très sensible et très fiable (peu de variabilité intra et inter-dosage) tout en utilisant les plus faibles concentrations en réactifs possibles.
1.b) Révélation de la peroxydase avec l'OPD : L'OPD peut être utilisé comme substrat, avec le même protocole expérimental. On distribue 100 μl de substrat par puits ; la révélation enzymatique se fait à température ambiante ou à 4ºC pendant 5 à 20 mn ; elle est arrêtée avec 50 μl de solution acide comme précisé ci-dessus (C). La lecture de la densité optique se fait à 492 nm, à l'aide du même type d'appareil.
Ce dosage est également utilisable dans les milieux de culture de cellules et le lait notamment. EXEMPLE 4 : Dosage fluorimétrique quantitatif avec le système AP2-β-galactosidase : dosage de LHs animales
* Sensibilisation des plaques (coating) :
L'anticorps anti-LH lapin (AP1) est préparé à la concentration de 2,5 μg/ml dans du tampon carbonate 0,1 M, pH 9,6. Il est distribué à raison de 100 μl par puits. L'incubation est de 1 heure à 37ºC puis 18 heures à 4ºC.
* surcoating ou saturation des puits :
Après 5 lavages au PBS-Tween, 100 μl de milieu
INC sont déposés dans chaque puits . L'incubation est de 30 mn à 37ºC. La plaque est, soit conservée en milieu sec, soit directement utilisée.
* Incubation des échantillons :
Elle se fait de la même façon que dans le protocole exposé, à l'Exemple 3. La durée d'incubation peut varier de 1 h à 1 h 30,
* Incubation du deuxième anticorps (anti-LH de cheval couplé à la β-galactosidase, AP2) :
Après lavages de la plaque, 1 ' AP2-β-galactosi- dase est déposé à raison de 100 μl par puits. Il a été préalablement préparé dans le milieu INC à la dilution de 1 μg/ml et préincubé 30 mn à 37ºC.
L'incubation dans les puits est de 1 h à 37ºC après quoi la plaque est lavée 5 fois avec du PBS-Tween.
* Révélation de la β-galactosidase avec un substrat fluorogénique (4-MUG) :
200 μl de MUG préparé selon les indications données ci-dessus en C sont déposés dans chaque puits. La plaque est incubée à 42ºC pendant 1 à 2 heures. La mesure de la fluorescence se fait avec un fluorimètre automatique pour plaques ELISA ("Microfluor" de DYNATECH - USA).
Sa longueur d'onde d'excitation est de 360 nm ; il enregistre à une longueur d'onde de 448 nm.
Les résultats obtenus avec une gamme standard réalisée dans le milieu PBS-BSA-Tween-LH- 1/10e sont rapportés sur la figure 6. Le MUG a été incubé pendant 1 heure ; on observe que le seuil de détection est moins bon que dans le protocole de l'Exemple 3 (entre 250 et 500 pg/ml). D'autre part, les coefficients de variation intra et inter-dosage sont plus élevés dans ce cas. L'intérêt de ce protocole est de permettre de réaliser le dosage en un temps plus court.
Les concentrations de réactifs ont été choisies de sorte que le rapport quantité de réactifs utilisés/qualité du dosage soit le plus favorable. Il est évident que les concentrations peuvent être modifiées tout en gardant un dosage correct.
EXEMPLE 5 : Dosage de LHs animales avec le système AP2-peroxydase.
On peut réaliser dans les mêmes conditions que celles de l'Exemple 4, un dosage de LH, dans lequel AP2 est couplé à une peroxydase.
EXEMPLE 6 : Dosage colorimétrique quantitatif et qualitatlf de 1a LH, réalisé avec le système AP3-peroxydase à partir du sang ; développement d'un kit de détection du pic de LH chez les animaux, utilisé en laboratoire ou sur le terrain :
Le dosage à partir du sang peut être utilisé dans un but tant quantitatif que qualitatif ; on entend par "dosage qualitatif", un test permettant la détection du pic préovulatoire de LH chez la femelle, sur le terrain, sans appareil de mesure, simplement interprétable à l'oeil. Ce test permet de même la détection de puises de LH chez la femelle ou chez le mâle.
a) Procédé de collecte du sang :
Un dosage réalisé sur du plasma présente une véritable charge dans la mesure où il nécessite une étape de centrifugation, le pipetage du plasma après centrifugation et son transfert dans de nouveaux tubes et une étape de dilution avant l'utilisation dans le dosage (c'est-à-dire pipetage, homogénéisation dans le tampon de dilution).
Afin d'éliminer ce problème, on applique dans ce test, un procédé nouveau de prélèvement de sang sur les animaux. Il consiste à placer une aiguille très fine dans la veine jugulaire de l'animal, laisser perler une goutte de sang, y appliquer l'extrémité d'un capillaire en verre, héparine, et calibré à un volume bien précis (10 ou 25 μl). Le capillaire doit être tenu horizontalement, afin que le sang puisse migrer jusqu'à l'autre extrémité du capillaire. A l'aide d'une petite poire en plastique, adaptée au diamètre du capillaire, le contenu de celui-ci est récupéré dans un tube contenant 225 μl de PBS-Tween-BSA héparine dans le cas d'un capillaire de 25 μl. Le sang est ainsi dilué 10 fois et n'a plus qu'à être distribué en 2 fois 100 μl dans les puits prévus d'une plaque.
On peut éviter cette dernière étape, en remplissant tous les puits de la plaque avec 90 μl de PBS- BSA-Tween héparine. Il suffit alors d'utiliser des capillaires de 10 μl de volume et de les vider chacun directement dans un puits de la plaque de microtitration. L'échantillon à doser est ainsi directement dilué et déposé dans la plaque.
b) Protocole :
* Sensibilisation des plaques :
L'AP1 est dilué à 7,5 μg/ml dans du tampon carbonate 0,1 M pH 9,6 et incubé 1 h à 37ºC puis 18 h à 4ºC. Les plaques sont ensuite lavées au PBS-Tween, 5 fois, puis remplies de 100 μl par puits de milieu INC. Elles sont incubées 30 mn à 37ºC, vidées et séchées puis scellées sous plastique, ou directement utilisées.
* Dépôt des échantillons :
- soit les 10 μl de sang sont déposés directement dans le puits correspondant à l'échantillon après avoir préalablement rempli tous les puits de 90 μl de PBS-BSA-Tween héparine ;
- soit on dépose 100 μl par puits des 25 μl de sang dilués dans 225 μl de PBS-BSA-Tween héparine.
L'incubation est de 1 heure ou moins à 37ºC ou à la température ambiante. Pendant l'incubation, on agite la plaque toutes les 15 mn, en la basculant manuellement afin de réhomogénéiser les hématies dans la phase liquide. On effectue ensuite 5 lavages au PBS-Tween si on est en laboratoire, ou au sérum physiologique (NaCl 0,15 M) ou à l'eau courante du robinet si on est sur le terrain.
* Dépôt du deuxième anticorps :
100 μl d'AP2 préparé dans le milieu INC à 5 μg/ml sont déposés dans chaque puits. L'incubation est de 45 mn à 37ºC ou à la température ambiante. La plaque est ensuite lavée selon les indications précédentes.
* Dépôt du troisième anticorps :
100 μl d'AP3-peroxydase sont déposés par puits ; l'A P3 a été préparé dans le milieu INC à la dilution 1/5000e selon les indications de l'Exemple 3.
Dans le kit notamment, AP2 et AP3 seront fournis tout préparés. Après une incubation de 45 mn à 37ºC ou à température ambiante, la plaque est lavée comme précédemment et on procède à la révélation enzymatique.
c) Lecture du dosage à l'oeil nu, interprétation des observations :
La solution d'ABTS (préparée selon les indications ci-dessus en C) et l'eau oxygénée à 2 % ne sont mélangées qu'extemporanément c'est-à-dire juste avant utilisation. 100 μl de substrat sont déposés par puits.
La réaction enzymatique est instantanée et se fait à température ambiante. Au bout de 2 mn, l'apparition d'une couleur verte dans les puits correspondant à un pic préovulatoire de LH est visible. Au bout de 5 mn, on distingue les prélèvements de sang "porteurs" d'un pic préovulatoire de LH comparativement aux autres dont le substrat reste incolore.
* Ce test de type "tout ou rien" est possible grâce à la combinaison AP1-AP2 et milieu INC, qui neutralise tout signal non-spécifique, c'est-à-dire que les échantillons à faible teneur en LH, préparés dans ce protocole, n'entraînent aucune coloration du substrat contrairement à ceux de forte teneur en LH qui provoquent l'apparition instantanée d'une couleur verte.
Le milieu INC évite ainsi d'avoir à distinguer un vert plus ou moins clair (cas d'un signal non spécifique élevé, par exemple) d'un vert foncé (niveau de LH élevé) avec tous les risques de variabilité que cela représente. En effet, le caractère de tout ou rien de ce test présente un avantage important par rapport aux kits immunoenzymatiques vendus pour la LH humaine ou pour d'autres hormones animales.
d) Dosage quantitatif de LH à partir du sang : Le dosage réalisé à partir du sang peut être à la fois qualitatif mais aussi quantitatif. Il suffit d'appliquer le protocole expérimental optimisé du dosage, exposé ci-dessus à l'Exemple 3 et de prendre la précaution d' "agiter" la plaque pendant l'incubation du sang.
Le calcul du coefficient de corrélation entre la .mesure de la concentration de LH dans le sang et dans le plasma provenant du même prélèvement, a été réalisé en comparant les résultats obtenus à partir des deux
"milieux biologiques" (voir figure 7).
Le coefficient de corrélation = 0,9788 (n=40), l'équation de la droite de régression : y = 1,14 x + 0,889 où Y est la concentration de LH (ng/ml) mesurée dans le sang et X est la concentration de LH (ng/ml) mesurée dans le plasma selon le protocole exposé à l'Exemple 3.
La valeur obtenue pour le coefficient de correlation indique qu'un dosage quantitatif très précis à partir du sang est tout à fait possible avec le protocole indiqué ci-dessus.
EXEMPLE 7 : Autres variantes du test de détection de LHs animales conforme à l'invention :
L'incubation simultanée d'AP2 et d 'AP3-peroxydase (1 h) diminue la durée totale du dosage.
Les essais réalisés ont donné une courbe doseréponse de moins bonne sensibilité que celle obtenue selon le protocole exposé ci-dessus mais suffisante pour la détection de fortes concentrations en LH (à partir de 15 ng/ml). L'incubation du substrat doit en contre-partie être plus longue 30 à 45 mn si nécessaire pour la détection de pics préovulatoires.
EXEMPLE 8 : Détection du pic de LH dans le lait chez la chèvre et la brebis :
1) chez la chèvre:
L'exemple illustré ici a été réalisé sur un troupeau de 20 chèvres synchronisées pour traitement d'insémination artificielle.
Le protocole expérimental est le même que celui exposé dans l'exemple 3, à la différence que 100 μl de lait sont déposés dans chaque puits. Il n'y a dans ce cas aucune dilution à faire, le lait est utilisé brut, non dilué, contrairement au plasma ou au sang.
Après avoir éliminé les premiers jets du lait, les 100 μl d'échantillon peuvent être prélevés avec un capillaire calibré, de la même façon que dans le cas du sang. De même, la plaque est lavée au PBS-Tween ou à l'eau du robinet selon l'endroit de la réalisation du dosage.
La figure 8 présente le profil de sécrétion du pic de LH chez une chèvre, dans le sang (courbe -*-) et dans le lait (..♢..). On constate que les concentrations de LH trouvées dans le lait sont infimes par rapport aux concentrations plasmatiques. Pour cette raison, il est nécessaire d'utiliser un spectrophotometre de plaques de microtitration. On constate que l'apparition du pic de LH dans le lait est décalée de 4 heures par rapport au sang, si on utilise le début du pic comme point de comparaison. Le Tableau I ci-dessous rapporte les concentrations de LH mesurées dans le sang et le lait au cours de 7 prélèvements effectués toutes les 4 heures dans les deux milieux simultanément. La comparaison des résultats montre que l'apparition du pic de LH dans le lait est décalée de 4 ou 8 heures par rapport au sang, si on compare le maximum du pic. Le début du pic, par contre, est toujours décalé de 4 heures dans le lait par rapport au sang, et ce de façon constante. En dehors du pic préovulatoire, les concentrations de LH dans le lait ne sont pas détectables.
Figure imgf000044_0001
Ce Tableau I illustre bien l'importance de la mise en oeuvre du procédé conforme à l'invention dans la conduite de la reproduction à l'intérieur des troupeaux caprins mais également et ce de manière plus générale pour toutes les espèces pour lesquelles il est utilisable (bovins, ovins, etc...). Il permet d'éliminer les femelles n'ayant pas eu de pic préovulatoire (donc n'ayant pas ovulé) et de féconder à un moment optimum les femelles ayant présenté un pic préovulatoire précoce. Ceci permet l'établissement de schémas d'insémination tels que le schéma III ci-dessous, très utile notamment pour rentabiliser au mieux les campagnes d'insémination artificielle menées dans les différentes espèces animales concernées.
Figure imgf000045_0001
SCHEMA III
2 ) Chez la brebis :
L'exemple illustré ici a été réalisé sur un troupeau de 12 brebis laitières Lacaune choisies parmi les "bonnes" laitières.
Ces femelles ont reçu un traitement de synchronisation (acétate de fluorogestone), pendant 14 jours, après quoi elles ont reçu une injection de 500 U.I. d'eCG (hormone stimulant l'ovaire).
Les prélèvements de sang et de lait ont été faits toutes les quatre heures, à partir de la détection du comportement d'oestrus. Chaque femelle a été ainsi prélevée neuf fois, pendant 32 heures. La mesure de la concentration de LH s'est faite dans les deux milieux, sang et lait, selon le protocole expérimental exposé dans l'exemple 3 ci-dessus.
Le tableau II ci-après exprime les résultats en ng/ml, et montre un parfait décalage de quatre heures entre le pic de LH dans le sang et celui détecté dans le lait, dans lequel, en dehors du pic préovulatoire, les concentrations en LH ne sont pas détectables.
Figure imgf000047_0001
plusieurs avantages :
. sa durée est plus importante que dans le sang (20 à 24 heures contre 8 à 12 heures dans le sang), ce qui nécessite moins de prélèvements à faire, l'intervalle entre chaque prélèvement pouvant être plus important (par exemple toutes les huit heures) ;
. une prise de lait est moins "stressante" qu'une prise de sang, et peut se faire au moment de la traite des animaux ;
. de plus, chez la brebis, la lecture du test dans le lait peut se fait à l'oeil nu.
La figure 16 représente le profil de sécrétion du pic de LH en ng/ml, en fonction du temps, chez une brebis, dans le sang, (courbe -*-) et dans le lait
Figure imgf000048_0001
. EXEMPLE 9 : Applications sur le terrain :
Ces exemples sont illustrés par des planches et appuyés par une étude de la corrélation entre les concentrations obtenues par le dosage ELISA et celles obtenues par un dosage radioimmunologique réalisé dans le plasma.
a) Détection de pics préovulatoires de LH chez des brebis superovulées (figures 9A et B) :
Les figures 9 sont des photos de plaques comportant 12 colonnes dénommées 1 à 12 et 8 lignes dénommées A à H.
Les colonnes 1 et 2 correspondent à la gamme étalon des concentrations et les colonnes 3 à 11 correspondent aux prélèvements réalisés chez huit brebis.
La figure 9A donne l'ordre de dépôt des échantillons. Les prélèvements d'une femelle sont déposés en colonne (colonnes 3 à 11) ; chaque prélèvement est dosé en double. Les pics de LH "apparaissent" en vert foncé ce qui dans cette figure et les figures suivantes est représenté en gris foncé comme on le voit en détail sur la figure 9B, dans laquelle la gamme de concentrations est également déposée à gauche de la plaque sur 2 colonnes (colonnes 1 et 2).
Les prélèvements ont été réalisés toutes les 4 heures à partir du début des chaleurs. Pour la brebis 1 (colonne 3), on observe un pic sur les deux premiers prélèvements (puits A3-B3 et C3-D3).
Ce dosage a été réalisé à partir de plasmas. Le temps de révélation a été de 15 mn à température ambiante.
La figure 10 illustre un profil de sécrétion de LH obtenu chez une brebis (Exemple 3) par le dosage ELISA (AP3-peroxydase/ABTS) et par RIA (radio immunoassay) à partir du plasma.
b) Détection de pics préovulatoires chez des chèvres superovulées (figure 11) :
Cette figure représente une photo d'une plaque du même type que la précédente (colonnes 1 à 12, ligne A à H).
Des prélèvements ont été réalisés toutes les 4 heures après le début des chaleurs.
Les dosages ont été faits à partir du sang. La révélation a été de 10 mn à température ambiante.
Les prélèvements par animaux ont été déposés en colonne : la colonne 2 montre, par exemple, un pic dans les puits D2-E2 puis la fin du pic en F2. Le sommet du pic est en D2. En dehors des pics, le substrat reste incolore. Dans la colonne 6, on observe de même le maximum d'un pic en D6-E6 puis la fin du pic en F6.
c) Détection de pics préovulatoires chez des vaches (figure 12) :
Après injection de GnRH, on prélève les animaux toutes les 30 minutes. Les prélèvements sont dosés en double et déposés en colonne (vache 1 ; colonnes 2 et 3 ; vache 2 : colonnes 4 et 5 ; vache 3 : colonnes 6 et 7 ; vache 4 : colonnes 8 et 9. La gamme standard est déposée dans les deux premières lignes A et B (figure 12A). Le dosage est fait à partir du sang. Le temps de révélation est de 5 mn en figure 12A et de 15 mn en figure 12B à température ambiante. On constate l'absence de pic de LH chez la vache 2, un début de pic de LH au 4e et 5e prélèvement (F2-F3/G2-G3) pour la vache n. 1. Chez les deux animaux suivants, le pic est apparu plus rapidement : au 2e prélèvement (D6-D7 ) pour la vache n. 3 et dès le 1er prélèvement (C8-C9) pour la vache n. 4. On observe très bien la retombée du pic pour cette dernière.
La figure 13 donne l'intégralité du profil de sécrétion de la LH chez une vache traitée au GnRH. On peut constater une superposition des concentrations mesurées par ELISA et par RIA.
d) Etude de la micropulsatilité chez des béliers (figure 14) :
Les dosages ont été réalisés dans le plasma selon le protocole de l'Exemple 3. Les prélèvements ont eu lieu toutes les 20 minutes. Ils sont déposés par ligne (bélier 1 : lignes C et D ; lignes E et F ; bélier 3 : lignes G et H) et dosés en duplicates (les duplicates sont disposés verticalement).
Le temps de révélation est de 30 minutes. On observe un puise en C9-D9 pour le bélier n. 1, en E4-F4 et E10- F10 pour le bélier n. 2, et un très léger en G4-H4 pour le bélier n. 3 de même en E9-F9 pour l'animal n. 2.
La figure 15 illustre un profil de sécrétion de LH obtenu chez le bélier avec les dosages ELISA et RIA. Les concentrations obtenues en ELISA ont des valeurs absolues plus basses que celles en RIA, par contre, le profil est identique. Cette différence est due à la meilleure sensibilité du dosage ELISA qui permet de détecter des valeurs plus faibles que le RIA. e) Calcul du coefficient de corrélation obtenu entre dosages réalisés par ELISA et dosages par RIA :
Le dosage RIA utilisé est celui publié par J. PELLETIER et al., 1982.
1) Corrélation chez les bovins : (n = 60)
. coefficient de corrélation : r : 0,9705 . équation de la droite de régression :
y = 1,09x - 0,971.
2) Corrélation chez les caprins : (n = 60) . coefficient de corrélation : r = 0,9759
. équation de la droite de régression :
y = 1,031x - 0,978.
3) Corrélation chez les ovins (n = 67)
. coefficient de corrélation : r = 0,9808 . équation de la droite de régression :
y = 1,0745x - 2,45
où Y est la concentration de LH (ng/ml) mesurée par ELISA,
X est la concentration de LH (ng/ml) mesurée par RIA.
EXEMPLE 10 : Détection du pic de LH chez la biche.
Des dosages ont été fait à partir de prélèvements de sang réalisés toutes les deux heures pendant toute la période des chaleurs, chez la biche Rusa de Nouvelle-Calédonie. Les prélèvements ont été faits sur sept biches et les dosages ont été réalisés comme décrit à l'exemple 3. Les tests sont lus à l'oeil nu comme pour les autres espèces. La figure 17 montre le profil de sécrétion de LH en ng/ml en fonction du temps chez une biche (biche n. 80). Les résultats obtenus chez l'ensemble des femelles montrent là encore, que le moment du pic de LH est très variable pendant la période des chaleurs : il a lieu, en général, au début des chaleurs.
Ceci illustre bien l'importance du procédé conforme à l'invention pour pouvoir établir la précision du moment d'insémination, étant donné la variabilité dans l'apparition du pic de LH.
On peut, en particulier, noter l'intérêt de ce procédé dans l'insémination artificielle, de femelles donneuses d'embryons, chez des races de la famille des cervidés en voie de disparition.
EXEMPLE 11 : Détection du pic de LH chez la chienne
Les dosages sont réalisés comme décrit à l'exemple 3, à partir des prélèvements de sang journaliers faits sur 2 chiennes pendant la période des chaleurs. Chez la chienne, le pic préovulatoire de LH s'étend sur un laps de temps plus important que chez les autres espèces décrites : la durée est de 24 heures en moyenne. De ce fait, il peut être détecté en ne faisant qu'un prélèvement de sang journalier, ce qui présente un avantage pour la clientèle d'un cabinet vétérinaire. Les résultats obtenus avec la chienne "DIXIE" illustrés sur la figure 18 le montrent clairement. Les tests sont lus à l'oeil nu comme pour les autres espèces.
La figure 18 représente le profil de sécrétion de LH, (-♢-) et de progestérone (-*-) en ng/ml, obtenus chez la chienne DIXIE.
On observe qu'au delà de 48 heures après le pic préovulatoire (3.9.90), la teneur en progestérone a considérablement augmenté (>50 ng/ml). Ceci témoigne de la présence d'un corps jaune (responsable de la forte sécrétion en progestérone) qui résulte d'une ovulation.
Etant donné la longueur de la période des chaleurs, chez la chienne, le kit permettra de connaître avec précision le moment de l'ovulation chez la chienne suivie et permettra de pratiquer l'insémination au moment optimal (la fécondation a lieu 48 heures après l'ovulation, chez la chienne). Là encore, un schéma d'insémination pourra être établi précisément, à l'aide du procédé conforme à l'invention. EXEMPLE 12 : Détection du pic de LH chez la truie
Une corrélation a été établie entre les valeurs de concentration en LH établies par un dosage radioimmunologique et celles obtenues avec le procédé conforme à l'invention, réalisé selon le protocole de l'exemple 3. Les dosages ont été faits sur des plasmas de truies.
. le coefficient de corrélation n = 0,943 . l'équation de la droite de régression :
y = 0,1719x + 0,069 (n = 20), où :
y est la concentration de LH (ng/ml) mesurée par ELISA ; et x est la concentration de LH (ng/ml) mesurée par RIA.
La figure 19 illustre un profil de sécrétion de LH en ng/ml obtenu avec un dosage conforme à l'invention (-*-) et avec un dosage RIA (-♢-).
EXEMPLE 13 : Dosage de 1a FSH ovine avec le procédé conforme à l'invention.
a- Anticorps utilisés pour le dosage :
- le premier anticorps (AC1) est un anticorps monoclonal spécifique de la sous-unité β de la FSH de nombreuses espèces (bovine, ovine, équine, porcine, humaine, rat, lapin, chien, autruche). Il a été gracieusement fourni par Monsieur le Professeur Jacques LUSSIER pour ces essais expérimentaux. Cet anticorps monoclonal a été produit par le Docteur LUSSIER et son équipe (Université de Montréal - Faculté de médecine vétérinaire - CRRA - CP 5000 - St Hyacinthe J297C6 - Québec). Il s'agit d'un anticorps monoclonal de type IgG1.
- le deuxième anticorps (AC2) est un anticorps polyclonal spécifique de la FSH ovine, qui a été fait chez le lapin. Il a été produit et est disponible à la station de Physiologie de la reproduction - INRA - 37380 NOUZILLY.
- le troisième anticorps (AC3) est un anticorps polyclonal commercialisé par les Laboratoires
Jackson (USA). Il s'agit d'un anticorps anti-IgG de lapin couplé à la peroxydase et fait chez la chèvre - référence 111-035-003.
b- Protocole expérimental
Le protocole utilisé est celui présenté dans l'exemple 3 :
(1) le premier anticorps est préparé dans du tampon carbonate 0,1M pH 9,6 à la concentration de 7,5 μg/ml. 100 μl sont distribués par puits. Les temps d'incubation pour la sensibilisation des plaques sont les mêmes : 1 heure à 37ºC et 18 heures à 4ºC.
(2) les lavages et la saturation des puits ( "surcoating") sont réalisés de la même façon que dans l'exemple 3.
(3 ) l ' incubation des échantillons et de la gamme : même procédé que dans l'exemple 3 , la gamme de
FSH ovine (standard du NIH : oFSH-13-AFP-2846-C) est préparée dans du PBS-Tween-BSA contenant du sérum d'animal hypophysectomise dilué au 1/10ème. Elle comprend les concentrations : 125 pg/ml, 250 pg/ml, 500 pg/ml, 1 ng/ml, 2 ng/ml, 4 ng/ml, 8 ng/ml et 40 ng/ml. Elle est déposée en double à raison de 100 μl par puits. Les plasmas à doser sont dilués dix fois dans du PBS-Tween-BSA. La durée de l'incubation est de une heure à 37ºC.
(4) lavages identiques à ceux de l'exemple 3 (5) préparation et incubation du deuxième anticorps (AC2), anti-FSH ovine. Il est préparé dans le milieu INC à la concentration de 5 μg/ml. Sa préparation est réalisée de la même façon que dans l'exemple 3. L'incubation est de une heure à 37ºC.
(6) lavages identiques à ceux de l'exemple 3,
(7) préparation et incubation du troisième anticorps (AC3) anti-IgG de lapin couplé à la peroxydase. Il est préparé selon le protocole de l'exemple 3 à la dilution de 1/5000ème (selon les indications du fabricant). Incubation de une heure à 37ºC.
(8) lavages identiques à ceux de l'exemple 3, (9) dépôt du substrat de la peroxydase et lecture de la densité optique,
c- Résultats :
* la figure 20 représente les résultats d'un tel dosage réalisé selon le protocole INC (courbe B). Le seuil de détection est à 0,25 ng/ml et la sensibilité du dosage est considérablement augmentée comparativement à la courbe A qui a été obtenue sans appliquer le procédé INC. En effet, dans le cas de la courbe A, le tampon utilise pour le surcoating, l'incubation de AC2 et AC3 a été du PBS-BSA-Tween simple. Seule la gamme standard de la oFSH a été réalisée dans les mêmes conditions que pour la courbe B, c'est-à-dire dans du PBS-BSA-Tween additionné de sérum de l'animal hypophysectomise dilué au 1/10ème. La comparaison de ces deux courbes montre l'importance du procédé INC pour l'obtention d'une très bonne sensibilité dans ce dosage de la oFSH. Ces résultats démontrent également que l'efficacité du procédé INC n'est pas restreinte au dosage de LHs animales par les AP1 et AP2 cidessus définis mais qu'elle s'applique également au dosage d'une autre hormone hypophysaire, la FSH faisant intervenir d'autres anticorps. L'utilisation du milieu INC a permis, comme dans le dosage de LHs animales et de la hLH, de neutraliser toutes interférences sériques non spécifiques et d'améliorer ainsi considérablement le seuil de détection et la sensibilité du dosage de la oFSH.
* 53 plasmas de brebis ont été dosés pour la FSH selon le procédé INC. Les résultats obtenus par cette technique ont été corrélés à ceux obtenus par un dosage radioimmunologique :
. le coefficient de corrélation est de 0,9759 . l'équation de la droite de régression est Y = 0,5856X -0,845
où Y est la concentration de oFSH (ng/ml) mesurée par ELISA et X est la concentration de oFSH (ng/ml) mesurée par RIA.
Il est à noter enfin, que des concentrations plasmatiques élevées (15 à 20 ng/ml) en oFSH sont tout-à- fait détectables à l'oeil, sans besoin d'appareil de lecture, et se distinguent nettement des taux plasmatiques bas (0,5 à 2 ng/ml). Ceci peut permettre de détecter et mesurer le pic de FSH sécrété avant l'ovulation dans des conditions tout-à-fait rustiques, hors du laboratoire.
Par le seuil de détection qu'il permet dans le dosage, le procédé INC donne la possibilité de détecter des niveaux circulants bas (entre 0,25 et 5 ng/ml), ce qui présente un intérêt physiologique évident.
EXEMPLE 14 : Dosage de la LH humaine
a- Anticorps utilisés pour le dosage :
* le premier anticorps (AC1) est un anticorps monoclonal spécifique de la LH humaine (hLH) commercialisé par la Société Pierce - référence : 37110. Il s'agit d'un anticorps monoclonal de type IgG1, il provient du clone ZMLHZ.
* le deuxième anticorps (AC2) est un anticorps polyclonal anti-hLH, fait chez le lapin et commercialisé par la Société UCB - référence : 1504/001.
* le troisième anticorps (AC3) est un anticorps polyclonal commercialisé par les laboratoires Jackson - référence 111-035-003. C'est un anticorps antiIgG de lapin couplé à la peroxydase, fait chez la chèvre.
b- Protocole expérimental :
le protocole appliqué est celui de l'exemple 3 :
(1) AC1 est préparé dans du tampon carbonate 0,1 M pH 9,6 à la concentration de 10 μg/ml (ou
7,5 μg/ml). 100 μl sont distribués par puits. L'incubation est de une heure à 37ºC et 18 heures à 4ºC.
(2) lavages et surcoating (of exemple 3)
(3) incubation des échantillons et de la gamme : of exemple 3. Les échantillons à doser sont dilues 10 fois (ou 5 fois) dans du PBS-BSA-Tween. La gamme de hLH est préparée dans du PBS-BSA-Tween additionné de sérum d'animal hypophysectomise dilué 10 fois. Elle comprend les concentrations suivantes : 62,5 pg/ml, 125 pg/ml, 250 pg/ml, 500 pg/ml, 1 ng/ml, 2 ng/ml, 4 ng/ml, 8 ng/ml, 40 ng/ml.
(4) lavages - of exemple 3
(5) AC2 est préparé à 2,5 μg/ml et préincubé dans le milieu INC de la même façon que dans l'exemple 3
(6) lavages
(7) AC3 est préparé au 1/5000ème dans le milieu INC, comme dans l'exemple 3
(8) lavages
(9) dépôt du substrat (ABTS) et lecture des résultats au bout d'une heure.
c- Résultats
* la figure 21 montre les résultats obtenus avec une gamme standard de hLH en utilisant le procédé INC selon le protocole ci-dessus (courbe B) et ceux obtenus avec une même gamme standard sans appliquer le procédé INC (courbe A). Dans ce dernier cas, le tampon utilisé pour le surcoating, l'incubation de AC2 et AC3 a été du PBS-BSA-Tween seul. La comparaison des deux courbes illustre là encore, l'intérêt et l'impact du procédé INC qui apporte une très nette amélioration dans la sensibiité du dosage et dans son seuil de détection, en neutralisant tout signal non-spécifique dû aux interférences sériques non-spécifiques.
* 20 plasmas de femmes ont été dosés en hLH selon le procédé ci-dessus présenté. Les résultats obtenus par cette technique ELISA ont été corrélés avec ceux obtenus par le kit de dosage de hLH fabriqué par Abbott (système immuno-enzymo-micro-particulaire - IMX Abbott) : . le coefficient de corrélation est de 0,8808 . l'équation de la droite de régression est Y = 0,0483X +0,0986
où Y est la concentration de hLH (ng/ml) mesurée par ELISA et X est la concentration de hLH (UI/1) mesurée par le système IMX Abbott).
* Etant donné l'absence de tout signal non- spécifique et la grande sensibilité du dosage, il sera possible de discriminer les valeurs hautes (pic préovulatoire de LH) donnant une couleur verte, des valeurs basses restant incolores. Cette interprétation "à l'oeil nu" permettra d'utiliser ce procédé pour la mise au point d'un kit de détection du pic préovulaire de LH chez la femme, à domicile. Il pourra être utilisé aussi pour un dosage quantitatif fiable dans les laboratoires. Ces résultats démontrent que l'efficacité du procédé INC n'est pas restreinte à l'utilisation des anticorps polyclonaux AP1 et AP2 définis ci-dessus dans le doage de LHs animales, mais qu'elle contribue également à l'amélioration du dosage d'une autre LH (1a LH humaine) faisant intervenir d'autres anticorps (AG monoclonal anti-hLH, PIERCE ; AC2 polyclonal anti-hLH fait chez le lapin-UCB).
Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite ; elle en embrasse au contraire toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée, de la présente invention.

Claims

REVENDICATIONS
1. Procédé augmentant la sensibilité et la spécificité de la détection et/ou du dosage immunologique d'hormones humaines ou animales, dans des milieux de culture ou dans des fluides biologiques, mettant en oeuvre au moins deux anticorps identiques ou différents, spécifiques de l'hormone à doser, lequel procédé est caractérisé en ce qu'au moins l'un desdits anticorps est préincubé dans un milieu contenant du plasma ou du sérum dépourvu de l'hormone à détecter et/ou à doser (milieu INC).
2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que ledit milieu INC comprend avantageusement un sérum ou un plasma d'un animal ayant subi l'ablation d'une glande endocrine, appropriée au dosage, et est éventuellement associé à un tampon convenable.
3. Procédé selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce que le milieu INC est dépourvu en hormones hypophysaires et comprend avantageusement un sérum ou un plasma d'un animal hypophysectomise approprié, éventuellement associé à un tampon approprié.
4. Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que le milieu INC comprend un sérum ou un plasma de bélier hypophysectomise, associé à un tampon approprié.
5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que le plasma ou sérum d'animal ayant subi l'ablation d'une glande endocrine appropriée et le tampon approprié sont dans un rapport 1:1.
6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'il est avantageusement un test enzymo-immunométrique, hautement spécifique et sensible, de détection d'au moins une hormone.
7. Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que le premier anticorps est fixé sur un sup port solide approprié et le deuxième anticorps préincubé dans un milieu contenant un plasma ou un sérum dépourvu de l'hormone à détecter et/ou à doser (milieu INC), et éventuellement couplé à une enzyme appropriée, sont mis en contact avec le fluide biologique à tester, après quoi l'activité enzymatique liée à la phase solide et/ou libre est révélée par tout moyen approprié.
8. Procédé selon la revendication 6 ou la revendication 7, caractérisé en ce que lorsque le deuxième anticorps préincubé dans ledit milieu INC n'est pas couplé à une enzyme, la révélation de la réaction est alors réalisée par l'introduction d'un troisième anticorps couplé à une enzyme appropriée, préincubé dans ledit milieu INC et se liant spécifiquement au deuxième anticorps.
9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 8, caractérisé en ce que ledit milieu INC est dépourvu d'hormones hypophysaires.
10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 9, caractérisé en ce que les premier et deuxième anticorps sont avantageusement choisis dans le groupe qui comprend les anticorps monoclonaux anti-FSH, anti-LH, anti-TSH, anti-GH, anti-ACTH, anti-prolactine, anti-ocytocine, anti-ADH, anti-MSH, anti-hCG et anti-eCG et les anticorps polyclonaux anti-FSH, anti-LH, anti-TSH, anti-GH, anti-ACTH, anti-prolactine, anti-ocytocine, anti-ADH, anti-MSH, anti-hCG et anti-eCG.
11. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 10, caractérisé en ce que les anticorps polyclonaux anti-LH sont notamment obtenus par immunisation d'un animal approprié par un mélange de différentes isoformes de LH ovine, puis par purification convenable de l'immunserum obtenu, lesquels anticorps polyclonaux présentent un pourcentage de réactions croisées avec les autres hormones glycoprotéiques telles que la FSH, inférieur à 4 %, c'est-à-dire une spécificité vis-à-vis de la LH, en ce qu'ils présentent une polyspécificité de reconnaissance de la LH de nombreuses espèces animales et notamment au moins des espèces ovines, bovines, caprines, porcines, canines, camelines, murines ainsi que les cervidés et en ce qu'ils présentent une affinité vis-à-vis de la LH ovine de l'ordre du 109M-1 , respectivement dans deux espèces animales différentes.
12. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 11, caractérisé en ce que les premier et deuxième anticorps sont avantageusement choisis dans le groupe qui comprend des anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine et des anticorps polyclonaux de Cheval anti-LH ovine et le troisième anticorps est avantageusement choisi dans le groupe qui comprend les anti-IgG de Cheval et les anti-IgG de Lapin couplés à une enzyme appropriée.
13. Procédé selon l'une quelconque des reven- dications 6 à 12, caractérisé en ce que le premier anticorps est un anticorps polyclonal de Lapin anti-LH ovine, le deuxième anticorps est un anticorps polyclonal de Cheval anti-LH ovine et le troisième anticorps est un anti-IgG de Cheval couplé à une enzyme appropriée et notamment à une peroxydase ou à une β-galactosidase.
14. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 12, caractérisé en ce que le mélange de différentes isoformes de LH ovines, mis en oeuvre pour l'immunisation contient avantageusement au moins deux isoformes de LH ovines.
15. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 14, caractérisé en ce que préalablement à l'introduction du deuxième anticorps, le support solide est saturé en milieu INC.
16. Anticorps polyclonaux anti-LH, caractérisés en ce qu'ils sont obtenus par immunisation d'un animal approprié par un mélange de différentes isoformes de LH ovine, puis par purification convenable de l'immunserum obtenu, en ce que lesdits anticorps polyclonaux présentent un pourcentage de réactions croisées avec les autres hormones glycoprotéiques telles que la FSH, inférieur à 4 %, c'est-à-dire une spécificité vis-à-vis de la LH, en ce qu'ils présentent une polyspécificité de reconnaissance de la LH de nombreuses espèces animales et notamment au moins des espèces ovines, bovines, caprines, porcines, canines, camelines, murines ainsi que les cervidés et en ce qu'ils présentent une affinité vis-à-vis de la LH ovine de l'ordre du 109M-1.
17. Anticorps polyclonaux selon la revendication 16, caractérisés en ce que l'animal approprié est le Lapin et en ce qu'on obtient ainsi des anticorps polyclonaux anti-LH ovine chez le Lapin.
18. Anticorps polyclonaux selon la revendication 16, caractérisés en ce que l'animal approprié est le Cheval et en ce qu'on obtient ainsi des anticorps polyclonaux anti-LH ovine chez le Cheval.
19. Anticorps polyclonaux selon l'une quelconque des revendications 16 à 18, caractérisés en ce que le mélange de différentes isoformes de LH ovine, mis en oeuvre pour l'immunisation, contient avantageusement au moins deux isoformes de LH ovine.
20. Anticorps polyclonaux selon la revendication 19, caractérisés en ce que les différentes isoformes de LH ovine sont en quantités équimolaires.
21. Réactif pour la mise en oeuvre du procédé de détection et/ou de dosage immunologique d'hormones chez l'animal y compris l'homme, selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé en ce qu'il comprend un anticorps anti-hormone propre à être utilisé comme premier, deuxième et/ou troisième anticorps dans ledit procédé, lequel anticorps est préincubé dans un milieu INC.
22. Trousse de détection et/ou de diagnostic d'hormones telles que les hormones hypophysaires (1a FSH, la LH, la TSH, 1a GH, l'ACTH, la prolactine, l'o cytocine, l'ADH, la MSH), les hormones thyroïdiennes, les hormones surrénales, les hormones génitales et les hormones pancréatiques chez l'homme ou l'animal, l'hCG et l'eCG, ou kit pour la mise en oeuvre du test selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé en ce qu'il comprend outre des quantités utiles de tampons appropriés pour la mise en oeuvre de ladite détection :
- des doses appropriées d'un anticorps choisi parmi les anticorps anti-hormone convenable, y compris les anticorps anti-LH selon l'une quelconque des revendications 16 à 20 et les réactifs selon la revendication 21 ;
- des doses appropriées de conjugués enzyme appropriée et anticorps, "lequel anticorps est choisi dans le groupe qui comprend les anticorps anti-hormone convenable y compris les anticorps anti-LH selon l'une quelconque des revendications 16 à 20 et les réactifs selon la revendication 21, ou dans le groupe qui comprend les anti-IgG convenables, lesquels conjugués sont préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit cidessus ;
- des quantités ou doses appropriées d'un substrat de révélation de l'enzyme ;
- un support solide approprié si nécessaire ; et
- des quantités ou doses appropriées d'un mi- lieu INC.
23. Trousse selon la revendication 22, caractérisée en ce que lorsqu'elle est mise en oeuvre pour le dosage de la LH, elle comprend :
- des doses appropriées d'un anticorps polyclonal choisi parmi les anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine, les anticorps polyclonaux de Cheval antiLH ovine selon l'une quelconque des revendications 16 à 20 et les réactifs selon la revendication 21 contenant l'un des anticorps polyclonaux anti-LH ovine précités ;
- des doses appropriées de conjugués enzyme appropriée et anticorps, lequel anticorps est choisi dans le groupe qui comprend les anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine, les anticorps polyclonaux de Cheval antiLH ovine selon l'une quelconque des revendications 16 à 20 ou dans le groupe qui comprend les anti-IgG de Cheval et les anti-IgG de Lapin, lesquels conjugués sont préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ;
- des quantités ou doses appropriées d'un substrat de révélation de l'enzyme ;
- un support solide approprié, si nécessaire ;
- un capillaire de prélèvement ; et - éventuellement, des quantités ou doses appropriées d'un milieu INC.
24. Trousse selon la revendication 23, caractérisée en ce que l'enzyme est choisie dans le groupe qui comprend les peroxydases et la β-galactosidase.
25. Trousse selon la revendication 22, caractérisée en ce qu'elle comprend :
- une série de supports solides convenables revêtus .d'un anticorps choisi parmi les anticorps antihormone convenable, y compris les anticorps anti-LH selon l'une quelconque des revendications 16 à 20 et les réactifs selon la revendication 21, lesquels supports solides sont éventuellement saturés en milieu INC ;
- des doses appropriées d'un anticorps choisi dans le groupe qui comprend les anticorps anti-FSH, anti-LH, y compris les anticorps anti-LH selon l'une quelconque des revendications 16 à 20, anti-TSH, anti-GH, anti-ACTH, anti-prolactine, anti-ocytocine, anti-ADH, anti-hCG, anti-eCG et anti-PMSG, différents du premier anticorps et les réactifs selon la revendication 21 ;
- des doses appropriées de conjugués peroxy- dase-anti-IgG convenables, préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ; et
- des quantités appropriées d'un substrat de révélation de la peroxydase.
26. Trousse selon la revendication 25, caractérisée en ce qu'elle comprend :
- une série de supports solides convenables revêtus d'un anticorps choisi dans le groupe qui comprend les anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine selon l'une quelconque des revendications 16 à 20 et les réactifs selon la revendication 21 contenant l'anticorps polyclonal de Lapin précité, lesquels supports solides sont éventuellement saturés en milieu INC ;
- des doses appropriées d'un anticorps choisidans le groupe qui comprend les anticorps polyclonaux de Cheval anti-LH ovine et les réactifs selon la revendication 21 contenant l'anticorps polyclonal de Cheval précité ;
- des doses appropriées de conjugués peroxy- dase-anti-IgG de Cheval préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ;
- des quantités appropriées d'un substrat de révélation de la peroxydase ; et
- un capillaire de prélèvement.
27. Trousse selon la revendication 25 ou la revendication 26, caractérisée en ce qu'elle comprend :
- une série de supports solides convenables revêtus d'un anticorps choisi dans le groupe qui comprend les anticorps polyclonaux de Lapin anti-LH ovine selon l'une quelconque des revendications 16 à 20 et les réactifs selon la revendication 21 contenant l ' anticorps polyclonal de Lapin précité, lesquels supports solides sont éventuellement saturés en milieu INC ;
- des doses appropriées de conjugués β-galac- tosidase-anticorps polyclonaux de Cheval anti-LH ovine préincubés dans un milieu INC, conformément au réactif décrit ci-dessus ; - des quantités appropriées d'un substrat de révélation de la β-galactosidase ; et
- un capillaire de prélèvement.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1998048273A1 (fr) * 1997-04-23 1998-10-29 Harrison Richard J Procede de detection de fecondite

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP3479100B2 (ja) * 1993-06-02 2003-12-15 帝国臓器製薬株式会社 免疫化学的簡易半定量方法および装置
US20010023070A1 (en) * 1998-05-29 2001-09-20 Reinhard Ebner Interleukins-21 and 22
EP1143250A3 (fr) * 2000-04-03 2004-11-17 Inverness Medical Switzerland GmbH Méthodes d'essai et dispositifs pour les isoformes d'un analyte
EP1143249B1 (fr) * 2000-04-03 2014-01-15 Alere Switzerland GmbH Méthodes d'essai et dispositifs pour les isoformes d'un analyte
JP2001349892A (ja) * 2000-04-03 2001-12-21 Unilever Nv 検査方法及びデバイス
CA2406607C (fr) * 2000-04-26 2011-08-02 Land O'lakes, Inc. Procede de traitement de proteines du soja et produit a base de proteines du soja obtenu selon ledit procede
US8592219B2 (en) * 2005-01-17 2013-11-26 Gyros Patent Ab Protecting agent
WO2006076371A2 (fr) * 2005-01-10 2006-07-20 Baylor College Of Medicine Methode d'immunohistochimie quantitative et d'hybridation in situ
WO2006075965A1 (fr) * 2005-01-17 2006-07-20 Gyros Patent Ab Procede de detection d'une substance a analyser au moins bivalente au moyen de deux reactifs d'affinite
WO2010005738A1 (fr) 2008-06-16 2010-01-14 Duke University Capteurs chimiques et leurs procédés de fabrication et d’utilisation
US9958442B2 (en) * 2009-02-11 2018-05-01 Duke University Sensors incorporating antibodies and methods of making and using the same
CN102297966A (zh) * 2011-05-27 2011-12-28 天津农学院 一种半定量检测孕酮胶体金试纸条及其制备方法
WO2013153291A1 (fr) 2012-04-12 2013-10-17 Repropharm Procede et trousse de detection du pic preovulatoire de lh
WO2015127288A1 (fr) 2014-02-20 2015-08-27 Alder Biopharmaceuticals, Inc. Anticorps anti-acth et leur utilisation
WO2015187227A2 (fr) 2014-03-13 2015-12-10 Duke University Plate-forme électronique pour la détection et la commande de réactions électrochimiques
CN105445256A (zh) * 2014-09-02 2016-03-30 江苏泽成生物技术有限公司 促黄体生成素lh定量测定试剂盒及其制备方法与检测方法
CN105424937B (zh) * 2015-10-05 2017-11-21 华中农业大学 一种猴早期妊娠检测的孕酮胶体金免疫层析试纸条
JP6959883B2 (ja) * 2018-02-28 2021-11-05 株式会社あすか製薬メディカル オキシトシンの定量方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3991174A (en) 1970-07-20 1976-11-09 Rafa Laboratories Ltd. Method of determining concentration of luteinizing hormone in body fluid
EP0098590A2 (fr) 1982-07-05 1984-01-18 Roche Diagnostics GmbH Procédé d'essai immunologique
EP0193881A2 (fr) 1985-03-06 1986-09-10 Roche Diagnostics GmbH Méthode et réactif pour la détermination de l'hormone lutéinisante ainsi que l'anticorps monoclonal approprié

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4002532A (en) * 1974-10-21 1977-01-11 Weltman Joel K Enzyme conjugates
SE432485B (sv) * 1974-11-11 1984-04-02 Carter Wallace Sett att bestemma prolaktin och medel herfor
US4559145A (en) * 1982-06-16 1985-12-17 Amf Incorporated Process for preparing a zero standard serum
US4935147A (en) * 1985-12-20 1990-06-19 Syntex (U.S.A.) Inc. Particle separation method

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3991174A (en) 1970-07-20 1976-11-09 Rafa Laboratories Ltd. Method of determining concentration of luteinizing hormone in body fluid
EP0098590A2 (fr) 1982-07-05 1984-01-18 Roche Diagnostics GmbH Procédé d'essai immunologique
EP0193881A2 (fr) 1985-03-06 1986-09-10 Roche Diagnostics GmbH Méthode et réactif pour la détermination de l'hormone lutéinisante ainsi que l'anticorps monoclonal approprié

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
D.M. BODMER; L.X. TIEFENAUER, J. IMMUNOASSAY, vol. 11, 1990, pages 139 - 145

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1998048273A1 (fr) * 1997-04-23 1998-10-29 Harrison Richard J Procede de detection de fecondite

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Publication number Publication date
AU7958091A (en) 1991-12-31
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