WO1998034114A1 - Verfahren zur immunologischen bestimmung eines analyten - Google Patents

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Definitions

  • the present invention has for its object to avoid the disadvantages described in immunological methods that work with magnetic particles, and a very simple and reliable
  • the present invention relates to a method for the immunological determination of an analyte in a sample with the aid of magnetic particles coated with the analyte to be determined or analyte-specific binding partners and directly detectable non-magnetic particles or with an indirectly detectable layer coated with analyte-specific binding partners or the analyte to be determined
  • Non-magnetic substance and incubation of the reaction mixture which is characterized in that the magnetic particles are then separated from the reaction mixture with a magnetic test strip and the analyte concentration is determined directly
  • the analyte is primarily understood to mean the diagnostically relevant constituents of body fluids, ie haptens or antigens; the analyte-specific binding partners are to be understood as monoclonal and polyclonal antibodies
  • the magnetic test strips according to the invention can, for example, be produced from suitable magnetizable pigments in a manner similar to diskettes, audio or video tapes. Very flat ones are preferably suitable
  • Suitable particles are inorganic and organic particles, e.g. magnetic
  • the method according to the invention is particularly suitable for the detection of analytes for which specific binding partners exist. It is carried out, for example, using the known methods of sandwich immunoassays or competitive immunoassays. After the incubation, the magnetic particles are separated using the magnetic test strip, so that the directly detectable non-magnetic particles or the indirectly detectable non-magnetic substance remain in the reaction mixture, provided that they are not bound to the magnetic particles.
  • the detection is done on the surface of the test strip either directly optically, for example by the presence or absence non-magnetic particles of a different color, or indirectly, for example if the non-magnetic substance is an enzyme, after developing a color reaction on the test strip. If the non-magnetic substance is an enzyme, the detection on the magnetic test strip can also be carried out electrochemically.
  • test strip is then a magnetic electrode.
  • the direct immunological determination of an analyte with colored non-magnetic particles using the sandwich method is e.g. so that a monoreagent is incubated with the sample solution.
  • the mono-reagent consists of magnetic particles which are coated with alaly-specific, preferably monoclonal, antibodies and non-magnetic particles of a different color, which are also coated with, preferably, monoclonal antibodies, these antibodies being directed against another epitope of the analyte.
  • the particles are suspended in a suitable buffer solution. If the analyte is present in the sample solution, the differently colored non-magnetic particles can bind to the magnetic particles. After a sufficient reaction time has elapsed, the magnetic particles are separated from the reaction mixture using a magnetic test strip. The to the
  • Magnetic particles bound to the surface of the test strip are evaluated directly visually using a color scale or a reflectometer.
  • the color change on the test strip depends directly on the number of non-magnetic particles of different colors bound and is proportional to the analyte concentration. Two wavelength measurements can also compensate for inhomogeneities when the magnetic particles are drawn onto the test strip.
  • the immunological determination using the competitive assay method is carried out, for example, with a bireagent.
  • Reagent 1 contains magnetic particles in a suitable buffer solution, which are coated with analyte-specific (monoclonal or polyclonal) antibodies.
  • Reagent 2 contains differently colored non-magnetic particles in the same buffer solution, which are coated with the analyte to be determined.
  • the sample solution is first incubated with reagent 1. Is in If the analyte is present in the sample solution, binding sites of the analyte-specific antibodies on the magnetic particles are saturated in accordance with the concentration of the analyte in the sample. After a suitable incubation period, the reagent 2 is added to the reaction mixture.
  • the non-magnetic particles coated with the analyte can bind to the magnetic particles unless the binding sites of the antibodies are already blocked by the analyte.
  • the magnetic particles are separated from the reaction mixture using the magnetic test strip according to the invention.
  • the magnetic particles bound to the surface of the test strip are evaluated directly visually using a color scale or with a reflectometer.
  • the color change on the test strip depends directly on the number of non-magnetic particles of different colors bound and is inversely proportional to the analyte concentration. Two wavelength measurements can also compensate for inhomogeneities when the magnetic particles are drawn onto the test strip.
  • the bireagent can also be composed such that the magnetic particles are coated with the analyte and the non-magnetic particles with the antibody; the principle of detection is unchanged.
  • Indirect immunological determination of an analyte with a non-magnetic substance, for example an enzyme, according to the sandwich method can be carried out as follows.
  • a monoreagent which contains magnetic particles in a buffer solution which are coated with an analyte-specific, preferably monoclonal antibody, and a non-magnetic substance, preferably an enzyme, which is coupled to preferably monoclonal antibodies, but which contains an antibody which is against a different epitope of the analyte is directed than the antibodies on the magnetic particles.
  • This monoreagent is incubated with the sample solution. If analyte is present in the sample, the non-magnetic substance binds to the magnetic particles.
  • the magnetic particles are separated from the reaction mixture with a magnetic test strip. Then a chemical is placed on the test strip Reaction to detect the non-magnetic substance was carried out. If the non-magnetic substance is an enzyme, then for example a leuco dye fixed on the test strip can be enzymatically converted into a dye. The color change on the test strip can be evaluated directly visually using a color scale or with a reflectometer. It is proportional to the analyte concentration.
  • Suitable buffer solutions are those which are able to maintain a pH range from 5 to 9, such as phosphate buffer, tris, borate,
  • Reagent 1 50 mM phosphate buffer solution with suspended magnetic particles coated with anti-cortisol antibodies.
  • Reagent 2 50 mM phosphate buffer solution with cortisol coupled to alkaline phosphatase.
  • sample solution (serum) are pre-incubated with 150 ⁇ l reagent 1 for 3 minutes and then incubated with 150 ⁇ l reagent 2 for a further 3 minutes.
  • the suspended magnetic particles are bound to the surface of the test strip by briefly immersing the magnetic test strip in the reaction solution (1 minute).
  • the test strip is then immersed in the substrate solution (para-nitrophenyl phosphate solution) for 1 minute. After a reaction time of approx. 5 minutes the
  • Analyte concentration determined qualitatively by color comparison with a reference test strip.
  • Reagent 2 0.2 M T ⁇ s buffer solution with ferritin coupled to alkaline phosphatase
  • the ferrin concentration is determined qualitatively by color comparison of the magnetic test strip with reference test strips.
  • TNT antibodies (IgG 1, Lot 103726 from SDI) are coated (reagent 1), and a buffered competition solution (TNT-alkaline phosphatase conjugate, Lot 103881, SDI, diluted 1:80 in 50 mM TRIS buffer, pH 8.0, 0.15 M NaCI, 1 mM MgCl 2 6 H 2 0, 0.1 mM ZnCI 2 , 2.5% BSA, 5% sucrose, 0 1% NaN 3 (reagent 2)

Abstract

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur immunologischen Bestimmung eines Analyten in einer Probe mit Hilfe von mit dem zu bestimmenden Analyten oder analytspezifischen Bindungspartnern beschichteten magnetischen Partikeln und mit analytspezifischen Bindungspartnern oder dem zu bestimmenden Analyten beschichteten, direkt nachweisbaren nicht-magnetischen Partikeln oder einer indirekt nach weisbaren nicht-magentischen Substanz und Inkubation des Reaktionsgemisches. Das Verfahren ist dadurch gekennzeichnet, daß die magnetischen Partikel anschließend mit einem magnetischen Teststreifen aus dem Reaktionsgemisch abgetrennt und die Analytkonzentration direkt bestimmt wird.

Description

Verfahren zur immunologischen Bestimmung eines Analyten
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur immunologischen Bestimmung eines Analyten in einer Probelösung mit Hilfe von magnetischen und nichtmagnetischen Partikeln.
Immunologische Methoden zur Bestimmung von Analyten mit magnetischen und nicht-magnetischen Partikeln sind z.B. aus WO 95/04279 bekannt. Dabei werden nach der Inkubation die magnetischen Partikel durch ein magnetisches Feld in der Reaktionslösung niedergeschlagen; im Überstand wird dann der Analyt photometrisch bestimmt. In JP 05-52849 ist ein chromatographisches System beschrieben, das mit einem Magneten versehen ist. Das kapillare Medium erfüllt dabei die Aufgabe eines Filters. Die treibende Kraft, die den Analyten durch das Filter bzw. die
Kapillare zwingt, ist die magnetische Kraft.
Die bekannten Verfahren haben eine Reihe von Nachteilen. Die magnetische Trennung der Partikel durch Niederschlagung in der Reaktions- lösung hat den Nachteil, daß ein direkter photometrischer, fluorimetrischer oder elektrochemischer Nachweis des Analyten nicht ohne weitere Wasch- oder Trennschritte möglich ist. Ein Mangel der Filtrationssysteme besteht darin, daß die Filter bzw. Kapillaren leicht verstopfen, Viskositätsprobleme auftreten und der Analyt vorzeitig auf dem chromatographischen Material, d.h. vor der Bindungsreaktion, adsorbiert wird, so daß nur ausgewähltes Probengut zuverlässig analysiert werden kann.
Der vorliegenden Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, die geschilderten Nachteile bei immunologischen Verfahren, die mit magnetischen Partikeln arbeiten, zu vermeiden und ein ganz einfaches und zuverlässiges
Verfahren zur Verfügung zu stellen. Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Verfahren zur immunologischen Bestimmung eines Analyten in einer Probe mit Hilfe von mit dem zu bestimmenden Analyten oder analytspezifischen Bindungspartnern beschichteten magnetischen Partikeln und mit analytspezifischen Bindungspartnern oder dem zu bestimmenden Analyten beschichteten, direkt nachweisbaren nicht-magnetischen Partikeln oder einer indirekt nachweisbaren nicht-magnetischen Substanz und Inkubation des Reaktionsgemisches, das dadurch gekennzeichnet ist, daß die magnetischen Partikel anschließend mit einem magnetischen Teststreifen aus dem Reaktionsgemisch abgetrennt und die Analytkonzentration direkt bestimmt wird
Vorzugsweise wird die Analytkonzentration direkt auf dem magnetischen Teststreifen visuell oder reflektrometrisch bestimmt Die Bestimmung kann auch indirekt nach Entwickeln einer Farbreaktion oder elektrochemisch auf dem Teststreifen erfolgen
Unter Analyt werden vor allem die diagnostisch relevanten Inhaltsstoffe von Korperflussigkeiten, d h Haptene oder Antigene verstanden, unter den analytspezifischen Bindungspartnern sind monoklonale und poly- klonale Antikörper zu verstehen
Die magnetischen Teststreifen nach der Erfindung können z B ähnlich wie Disketten, Ton- oder Videobander aus geeigneten magnetisierbaren Pigmenten hergestellt werden Vorzugsweise eignen sich sehr flache
Permanentmagnete Die Verwendung von Seltene-Erden-Metallegie- rungen erlaubt die Herstellung von Permanentmagneten mit besonders hoher Remanenz Im einfachsten Fall kann für das erfindungsgemaße Verfahren ein flacher Dauermagnet verwendet werden, der vollständig mit weißem, glatten Karton umhüllt und mit Kunststoffklebstreifen an den
Randern verklebt wird Der magnetische Teststreifen kann durch Abwischen der magnetischen Partikel von der glatten Oberflache nach der Testdurchfuhrung mehrfach verwendet werden Ein großer Vorteil der Magnetstreifentechnologie im Vergleich zur direkten klassischen Kopplung von Antikörpern an die Oberfläche von Teststreifen ist darin zu sehen, daß die Reaktion mit dem Analyten zunächst homogen bzw. quasi-homogen abläuft. Diffusionsprobleme, die den unteren Detek- tionsbereich bei heterogenen Reaktionen zwischen Teststreifen und Analyten einschränken, spielen im homogenen Milieu praktisch keine Rolle.
Umgekehrt werden bei heterogenen Reaktionen, die oft diffusionslimitiert sind, verschiedene Maßnahmen unternommen, den Stoffaustausch zwischen Reaktionsoberfläche und Analytlösung zu verbessern (Filtration des Analyten durch die Teststreifenoberfläche). Die mit diesen Maßnahmen erzielbaren Vorteile können jedoch nicht den Vorteil der quasihomogenen Reaktion zwischen Analyten und kleinen suspendierten Partikeln mit hoher Oberfläche kompensieren (Probleme infolge von Porendiffusion, Clogging-Effekte).
Als Partikel können im Prinzip alle im Handel erhältlichen magnetischen und nicht-magnetischen Partikel, die auch farbig sein können, verwendet werden, sofern sie eine Größe von 30 nm bis 800 μm haben. Geeignete Partikel sind anorganische und organische Partikel, z.B. magnetische
Partikel aus Eisen, Nickel, Cobalt, Mangan, Elementen der Lanthaniden- reihe wie Neodym, Erbium usw, Partikel aus magnetischen Legierungen wie Aluminium-, Nickel-, Cobalt-, Kupferlegierungen, Oxide wie Fe304 Cr02, CoO, Ni02, Mn203 usw., Kompositmaterialien wie Ferrite und organische Polymere wie Polystyrol.
Als erfindungsgemäße Verfahren ist vor allem zum Nachweis von Analyten geeignet, für die spezifischer Bindungspartner existiert. Die Durchführung erfolgt z.B. nach den bekannten Verfahren der Sandwich-Immunoassays oder der kompetitiven Immunoassays. Nach der Inkubation werden die magnetischen Partikel mit Hilfe des magnetischen Teststreifens abgetrennt, so daß die direkt nachweisbaren nicht-magnetischen Partikel bzw. die indirekt nachweisbare nicht-magnetische Substanz in der Reaktionsmischung zurückbleiben, sofern sie nicht an die magnetischen Partikel gebunden werden. Der Nachweis erfolgt auf der Oberfläche des Teststreifens entweder direkt optisch, z.B. durch die An- oder Abwesenheit andersfarbiger nicht-magnetischer Partikel, oder indirekt , z.B. wenn die nicht-magnetische Substanz ein Enzym ist, nach dem Entwickeln einer Farbreaktion auf dem Teststreifen. Handelt es sich bei der nichtmagnetischen Substanz um ein Enzym, so kann der Nachweis auf dem magnetischen Teststreifen auch elektrochemisch erfolgen. Bei dem
Teststreifen handelt es sich dann um eine magnetische Elektrode.
Die direkte immunologische Bestimmung eines Analyten mit farbigen nicht-magnetischen Partikeln nach der Sandwich-Methode erfolgt z.B. so, daß ein Monoreagenz mit der Probelösung inkubiert wird. Das Mono- reagenz besteht aus magnetischen Partikeln, die mit alalytspezifischen vorzugsweise monoklonalen Antikörpern beschichtet sind und andersfarbigen nicht-magnetischen Partikeln, die ebenfalls mit vorzugsweise monoklonalen Antikörpern beschichtet sind, wobei diese Antikörper gegen ein anderes Epitop des Analyten gerichtet sind. Die Partikel sind in einer geeigneten Pufferlösung suspendiert. Ist in der Probelösung der Analyt zugegen, so können die andersfarbigen nicht-magnetischen Partikel an die magnetischen Partikel binden. Nach Ablauf einer hinreichenden Reaktionszeit werden die magnetischen Partikel aus der Reaktions- mischung mit einem magnetischen Teststreifen abgetrennt. Die an die
Oberfläche des Teststreifens gebundenen magnetischen Partikel werden direkt visuell mittels einer Farbskala oder mit einem Reflektometer ausgewertet. Die Farbänderung auf dem Teststreifen hängt direkt von der Anzahl der gebundenen nicht-magnetischen andersfarbigen Partikel ab und ist proportional zur Analytkonzentration. Zwei Wellenlängenmessungen können darüber hinaus Inhomogenitäten beim Aufziehen der magnetischen Partikel auf den Teststreifen ausgleichen.
Die immunologische Bestimmung nach der Methode des kompetitiven Assays wird z.B. mit einem Bireagenz durchgeführt. Reagenz 1 enthält in einer geeigneten Pufferlösung magnetische Partikel, die mit analytspezifischen (monoklonalen oder poiyklonalen) Antikörpern beschichtet sind. Reagenz 2 enthält in der gleichen Pufferlösung andersfarbige nichtmagnetische Partikel, die mit dem zu bestimmenden Analyt beschichtet sind. Die Probelösung wird zunächst mit dem Reagenz 1 inkubiert. Ist in der Probelösung der Analyt vorhanden, so werden Bindungsstellen der analytspezifischen Antikörper auf den magnetischen Partikeln entsprechend der Konzentration des Analyten in der Probe abgesättigt. Nach einer geeigneten Inkubationszeit wird das Reagenz 2 zur Reaktions- mischung gegeben. Die mit dem Analyten beschichteten andersfarbigen nicht-magnetischen Partikel können an die magnetischen Partikeln binden, sofern nicht die Bindungsstellen der Antikörper durch den Analyten bereits blockiert sind. Nach Ablauf einer bestimmten Reaktionszeit werden die magnetischen Partikel aus der Reaktionsmischung mit dem erfindungsgemäßen magnetischen Teststreifen abgetrennt. Die an die Oberfläche des Teststreifens gebundenen magnetischen Partikel werden direkt visuell mittels einer Farbskala oder mit einem Reflektometer ausgewertet. Die Farbänderung auf dem Teststreifen hängt direkt von der Anzahl der gebundenen nicht-magnetischen andersfarbigen Partikel ab und ist umgekehrt proportional zur Analytkonzentration. Zwei Wellenlängenmessungen können darüber hinaus Inhomogenitäten bei dem Aufziehen der magnetischen Partikel auf den Teststreifen ausgleichen. Das Bireagenz kann auch so zusammengesetzt sein, daß die magnetischen Partikel mit dem Analyten beschichtet sind, und die nicht-magneti- sehen Partikel mit dem Antikörper; das Nachweisprinzip ist unverändert.
Eine indirekte immunologische Bestimmung eines Analyten mit einer nichtmagnetischen Substanz, z.B. einem Enzym, nach der Sandwich-Methode kann wie folgt durchgeführt werden. Ein Monoreagenz, das in einer Puffer- lösung magnetische Partikel enthält, die mit einem analytspezifischen, vorzugsweise monoklonalen Antikörpern beschichtet sind, sowie eine nicht-magnetische Substanz, vorzugsweise ein Enzym, das mit vorzugsweise monoklonalen Antikörpern gekoppelt ist, jedoch einen Antikörper enthält, der gegen ein anderes Epitop des Analyten gerichtet als die Antikörper auf den magnetischen Partikeln. Dieses Monoreagenz wird mit der Probelösung inkubiert. Ist Analyt in der Probe vorhanden, so bindet die nicht-magnetischen Substanz an die magnetischen Partikel. Nach Ablauf einer bestimmten Reaktionszeit werden die magnetischen Partikel aus der Reaktionsmischung mit einem magnetischen Teststreifen abgetrennt. Anschließend wird auf dem Teststreifen eine chemische Reaktion zum Nachweis der nicht-magnetischen Substanz durchgeführt. Handelt es sich bei der nicht-magnetischen Substanz um ein Enzym, so kann beispielsweise ein auf dem Teststreifen fixierter Leukofarbstoff enzymatisch in einen Farbstoff umgewandelt werden. Die Farbänderung auf dem Teststreifen kann direkt visuell mittels einer Farbskala oder mit einem Reflektometer ausgewertet werden. Sie ist proportional zur Analytkonzentration.
Geeignete Pufferlösungen sind solche, die in der Lage sind, einen pH- Bereich von 5 bis 9 aufrechtzuerholen, wie Phosphatpuffer, Tris-, Borat-,
HEPES-, PIPES-Puffer usw.
Beispiel 1
Bestimmung von Cortisol nach dem kompetitiven Assay
Reagenz 1 : 50 mM Phosphatpufferlösung mit suspendierten magnetischen Partikeln, die mit anti-Cortisol-Antikörpern beschichtet sind.
Reagenz 2: 50 mM Phosphatpufferlösung mit an alkalische Phosphatase gekoppeltem Cortisol.
30 μl Probelösung (Serum) werden mit 150 μl Reagenz 1 3 Minuten vorinkubiert und anschließend weitere 3 Minuten mit 150 μl Reagenz 2 inkubiert. Durch kurzes Eintauchen des magnetischen Teststreifens in die Reaktionslösung (1 Minute) werden die suspendierten magnetischen Partikel an die Oberfläche des Teststreifens gebunden. Der Teststreifen wird anschließend für 1 Minute in die Substratlösung (para-Nitrophenyl- phosphatlösung) eingetaucht. Nach ca. 5 Minuten Reaktionszeit wird die
Analytkonzentration qualitativ durch Farbvergleich mit einem Referenzteststreifen bestimmt.
Bei der Reaktion tritt ein Verdrängungswettbewerb zwischen dem gesamten Cortisol des Serums und dem mit alkalischer Phosphatase- markierten Cortisol ein. Die Menge an markiertem Cortisol, das auf den Partikeln gebunden wird ist um so hoher, je geringer die Menge an gesamtem Cortisol im Serum ist Der Farbumschlag auf dem Teststreifen ist umgekehrt proportional zur Analytkonzentration.
Beispiel 2
Bestimmung von Ferritin
Reagenz 1 0,2 M Tπs-Pufferlosung mit suspendierten magnetischen Partikeln, die mit anti-Ferπtin-Antikorpern beschichtet sind
Reagenz 2 0,2 M Tπs-Pufferlosung mit an alkalische Phosphatase gekoppeltem Ferritin
Die Bestimmung wird analog Beispiel 1 mit para-Nitrophenylphosphat als
Substratlosung durchgeführt Nach 4 Minuten Reaktionszeit wird die Ferπtinkonzentration qualitativ durch Farbvergleich des magnetischen Teststreifens mit Referenzteststreifen bestimmt.
Beispiel 3
Bestimmung von TNT in Wasserproben
Das TNT-Reagenz besteht aus einer 50 mM Phosphatpufferlosung vom pH 7,4 mit suspendierten magnetischen Partikeln (100 μg/ml), die mit anti-
TNT-Antikorpern (lgG 1 , Lot 103726 von Fa SDI) beschichtet sind (Reagenz 1 ), sowie einer gepufferten Kompetitionslosung (TNT-alkalische Phosphatase-Konjugat, Lot 103881 , Fa SDI, 1 :80 verdünnt in 50 mM TRIS-Puffer, pH 8,0, 0, 15 M NaCI, 1 mM MgCI2 6 H20, 0,1 mM ZnCI2, 2,5 % BSA, 5 % Saccharose, 0 1 % NaN3 (Reagenz 2)
100 μl Probe (TNT-Losung in 40 mM HEPES-Puffer werden mit 150 μl Reagenz 1 2 Minuten vorinkubiert und anschließend weitere 2 Minuten mit 150 μl Reagenz 2 inkubiert Durch Eintauchen des magnetischen Test- Streifens in die Reaktionslosung (1 Minute) werden die suspendierten Magnetpartikel an die Oberfläche des Teststreifens gebunden. Der Teststreifen wird anschließend für 1 Minute in eine Substratlösung (para- Nitrophenylsulfatlösung) eingetaucht. Nach weiteren 4 Minuten Reaktionszeit wird die Analytkonzentration qualitativ durch Farbvergleich mit dem Referenzteststreifen bestimmt. Die Gesamtanalysezeit beträgt ca.
10 Minuten.
Bei der Reaktion tritt ein Verdrängungswettbewerb zwischen dem TNT der Wasserprobe und dem AP-markierten TNT ein. Die Menge an markiertem TNT, das auf den Partikeln gebunden wird, ist um so höher, je geringer der TNT-Gehalt der Wasserprobe ist. Nach der Reaktion werden die magnetischen Partikel auf dem Teststreifen gebunden und in der Substratlösung inkubiert. Der Farbumschlag auf dem Teststreifen ist umgekehrt proportional zur Analytkonzentration.

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zur immunologischen Bestimmung eines Analyten in einer Probe mit Hilfe von mit dem zu bestimmenden Analyten oder analytspezifischen Bindungspartnern beschichteten magnetischen
Partikeln und mit analytspezifischen Bindungspartnern oder dem zu bestimmenden Analyten beschichteten, direkt nachweisbaren nichtmagnetischen Partikeln oder einer indirekt nachweisbaren nichtmagnetischen Substanz und Inkubation des Reaktionsgemisches, dadurch gekennzeichnet, daß die magnetischen Partikel anschließend mit einem magnetischen Teststreifen aus dem Reaktionsgemisch abgetrennt und die Analytkonzentration direkt bestimmt wird.
2. Verfahren zur immunologischen Bestimmung eines Analyten nach
Anspruch 1 , dadurch gekennzeichnet, daß die Analytkonzentration direkt auf dem magnetischen Teststreifen bestimmt wird.
3. Verfahren zur immunologischen Bestimmung eines Analyten nach den Ansprüchen 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß die
Analytkonzentration indirekt nach Entwickeln einer Farbreaktion oder elektrochemisch bestimmt wird.
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